不同保存介质对人少突胶质前体细胞生物学特性的影响
发布时间:2021-12-15 20:23
背景:保存介质直接影响干细胞活性以及细胞功能,目前国内外缺乏对人少突胶质前体细胞保存介质方面的研究。目的:评价临床常用的保存介质对人少突胶质前体细胞活率的影响。方法:在4℃条件下,将处于对数生长期的人少突胶质前体细胞分别在少突细胞完全培养基、含有1%白蛋白的生理盐水、生理盐水中放置24 h,比较不同保存介质中的细胞活性以及继续培养后的细胞增殖能力。结果与结论:①细胞冷藏24h进行锥虫蓝染色,少突细胞完全培养基组、含有1%白蛋白的生理盐水组、生理盐水组细胞活率分别为83%,68%和51%,少突细胞完全培养基组细胞活率最高,单纯生理盐水组细胞活率最低;②细胞冷藏后继续培养1代,3种保存介质中少突胶质前体细胞的扩增能力有逐渐降低的趋势,少突细胞完全培养基组细胞增殖能力最高,其次是含有1%白蛋白的生理盐水组,单纯生理盐水中保存的细胞无法继续增殖。
【文章来源】:中国组织工程研究. 2019,23(29)北大核心
【文章页数】:5 页
【文章目录】:
文章快速阅读:
文题释义:
0引言Introduction
1 材料和方法Materials and methods
1.1 设计
1.2 时间及地点
1.3 材料
1.4 实验方法
1.4.1 少突胶质前体细胞培养
1.4.2 少突胶质前体细胞鉴定
1.4.3 少突胶质前体细胞分组冷藏保存
1.4.4少突胶质前体细胞冷藏后继续培养
1.5 主要观察指标
1.6 统计学分析
2 结果Results
2.1 少突胶质前体细胞形态学变化
2.2 少突胶质前体细胞免疫荧光染色鉴定结果
2.3 冷藏后不同保存介质中的细胞活率及损失率
2.4细胞冷藏后再培养的增殖能力比较
3 讨论Discussion
【参考文献】:
期刊论文
[1]Combination of mild therapeutic hypothermia and adipose-derived stem cells for ischemic brain injury[J]. Kai Zhao,Rui Li,Sheng Bi,Yu Li,Long Liu,Yu-Long Jia,Peng Han,Chang-Cong Gu,Xi-Ze Guo,Wan-Ping Zhang,Chun Wang,Chun-Ying Pei,Lin-Lu Tian,Li-Xian Li. Neural Regeneration Research. 2018(10)
[2]Stem cells:a promising candidate to treat neurological disorders[J]. Chang-Geng Song,Yi-Zhe Zhang,Hai-Ning Wu,Xiu-Li Cao,Chen-Jun Guo,Yong-Qiang Li,Min-Hua Zheng,Hua Han. Neural Regeneration Research. 2018(07)
[3]干细胞临床研究政策回顾和展望[J]. 陈海丹. 自然辩证法通讯. 2018(03)
[4]神经修复临床细胞治疗现状与展望[J]. 黄红云,毛更生,陈琳. 中华细胞与干细胞杂志(电子版). 2017(03)
[5]干细胞制剂制备质量管理自律规范[J]. 中国医药生物技术. 2016(06)
[6]Protective effects of carnosine on white matter damage induced by chronic cerebral hypoperfusion[J]. Jing Ma,Shu-hong Bo,Xiao-tong Lu,A-jing Xu,Jian Zhang. Neural Regeneration Research. 2016(09)
本文编号:3537087
【文章来源】:中国组织工程研究. 2019,23(29)北大核心
【文章页数】:5 页
【文章目录】:
文章快速阅读:
文题释义:
0引言Introduction
1 材料和方法Materials and methods
1.1 设计
1.2 时间及地点
1.3 材料
1.4 实验方法
1.4.1 少突胶质前体细胞培养
1.4.2 少突胶质前体细胞鉴定
1.4.3 少突胶质前体细胞分组冷藏保存
1.4.4少突胶质前体细胞冷藏后继续培养
1.5 主要观察指标
1.6 统计学分析
2 结果Results
2.1 少突胶质前体细胞形态学变化
2.2 少突胶质前体细胞免疫荧光染色鉴定结果
2.3 冷藏后不同保存介质中的细胞活率及损失率
2.4细胞冷藏后再培养的增殖能力比较
3 讨论Discussion
【参考文献】:
期刊论文
[1]Combination of mild therapeutic hypothermia and adipose-derived stem cells for ischemic brain injury[J]. Kai Zhao,Rui Li,Sheng Bi,Yu Li,Long Liu,Yu-Long Jia,Peng Han,Chang-Cong Gu,Xi-Ze Guo,Wan-Ping Zhang,Chun Wang,Chun-Ying Pei,Lin-Lu Tian,Li-Xian Li. Neural Regeneration Research. 2018(10)
[2]Stem cells:a promising candidate to treat neurological disorders[J]. Chang-Geng Song,Yi-Zhe Zhang,Hai-Ning Wu,Xiu-Li Cao,Chen-Jun Guo,Yong-Qiang Li,Min-Hua Zheng,Hua Han. Neural Regeneration Research. 2018(07)
[3]干细胞临床研究政策回顾和展望[J]. 陈海丹. 自然辩证法通讯. 2018(03)
[4]神经修复临床细胞治疗现状与展望[J]. 黄红云,毛更生,陈琳. 中华细胞与干细胞杂志(电子版). 2017(03)
[5]干细胞制剂制备质量管理自律规范[J]. 中国医药生物技术. 2016(06)
[6]Protective effects of carnosine on white matter damage induced by chronic cerebral hypoperfusion[J]. Jing Ma,Shu-hong Bo,Xiao-tong Lu,A-jing Xu,Jian Zhang. Neural Regeneration Research. 2016(09)
本文编号:3537087
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/shiyanyixue/3537087.html
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