重组人脂肪因子chemerin对巨噬细胞凋亡影响及其机制的研究
本文选题:重组人chemerin 切入点:脂肪因子 出处:《首都医科大学》2016年硕士论文
【摘要】:目的趋化因子chemerin是新发现的脂肪因子。本课题前期研究显示冠心病患者心外膜脂肪组织中chemerin的m RNA及蛋白表达明显增高,且与冠状动脉粥样硬化严重程度正相关。脂肪因子chemerin被发现可以促进单核巨噬细胞黏附及泡沫细胞形成,而这两个病理过程在As发生、发展过程中发挥着重要作用。巨噬细胞凋亡贯穿于As的各个阶段,其在As病变晚期,可引起继发性细胞坏死和炎性反应,促进斑块脂质核心的形成及扩大,而且巨噬细胞凋亡后释放出的蛋白酶等可损伤纤维帽,最终导致不稳定斑块(即易损斑块)的形成。本研究旨在探讨chemerin对巨噬细胞凋亡的影响及其作用机制,从而为As及冠心病的预防和治疗提供新的干预靶点。方法(一)人单核细胞培养及向巨噬细胞分化10%胎牛血清的RPMI1640培养基培养人单核细胞株THP-1,使用CD14-FITC进行鉴定;加入100nmol/L PMA孵育72h,将THP-1人单核细胞诱导分化为巨噬细胞,获得THP-1巨噬细胞。(二)制备促进游离胆固醇聚集(FC-loading)模型按文献使用含1%胎牛血清的DMEM培养基加入100μg/ml乙酰低密度脂蛋白及10μg/ml胆固醇乙酰转移酶抑制剂-58035促进FC在巨噬细胞内聚集,诱导巨噬细胞凋亡。(三)凋亡检测以Annexin-FITC和PI双标法经流式细胞仪检测。将经PBS液洗涤过的上述巨噬细胞制成细胞悬液,分别加入5μl Annexin-V和5μl PI,室温避光15min,然后加入200μl 1×Buffer缓冲液上流式细胞仪检测。每个样本计数5000个细胞,以激发光波长488nm,发射光波长515nm、560nm标准。从流式细胞仪上的细胞散点图进行分析,Annexin-V+/PI-细胞为凋亡细胞(绿色荧光);Annexin-V+/PI+细胞为坏死细胞(红色-橙色荧光);Annex-in-V-/PI-为活细胞;以凋亡的巨噬细胞占巨噬细胞总数的百分比为凋亡率。(四)不同浓度重组人chemerin对FC-loading诱导巨噬细胞凋亡的影响按浓度梯度0.1μg/l、10μg/l、500μg/l加入重组人chemerin,同时设立空白对照组、中和chemerin组,中和chemerin组预先使chemerin及chemerin中和抗体反应30min,37℃5%CO2培养箱孵育8h;上述各组分别加入巨噬细胞培养液孵育18h,然后在FC聚集巨噬细胞的状态下再孵育12h。按上述方法检测巨噬细胞凋亡率。(五)明确JNK及P38MAPK信号通路的作用根据以上实验确定重组人chemerin的实验浓度,设立重组chemerin组和中和chemerin组;重组chemerin组和中和chemerin组分别应用10μmol/l JNK阻断剂(SP600125)和10μmol/l P38MAPK阻断剂(SB203580)进行干预,再进行上述实验。结果(一)不同浓度重组人chemerin对巨噬细胞凋亡的影响重组人chemerin可促进FC诱导的巨噬细胞凋亡,并且随着chemerin浓度的增加巨噬细胞凋亡增强。巨噬细胞凋亡率对照组为19.04%±0.39%、重组chemerin0.1μg/l组为22.77%±0.86%、10μg/l组为26.37%±1.06%、500μg/l组为33.44%±0.87%(见图3)。各chemerin处理组巨噬细胞凋亡率同对照组相比,差异均有统计学意义(P(27)0.05)。使用chemerin中和抗体干预后,各组巨噬细胞凋亡率同对照组相比差异无统计学意义(P0.05)。(二)JNK与P38MAPK信号通路在chemerin促巨噬细胞凋亡过程中的作用巨噬细胞凋亡率重组chemerin组为23.81%±0.83%、中和chemerin组为17.75%±1.23%、重组chemerin+JNK阻断剂组为13.96%±0.68%、中和chemerin+JNK阻断剂组为11.62%±0.36%、重组chemerin+P38MAPK阻断剂组为11.99%±0.23%、中和chemerin+P38MAPK阻断剂组为10.10%±0.43%。重组chemerin组和中和chemerin组应用JNK阻断剂前后的差值分别为9.85%±0.34%和6.13%±1.09%,前者明显高于后者,差异有统计学意义(P(27)0.05)。由此可知,阻断JNK信号通路可明显削弱chemerin的促巨噬细胞凋亡作用。但应用JNK阻断剂后的重组chemerin组和中和chemerin组仍然有差异(P(27)0.05),则提示尚有其它通路参与chemerin的促巨噬细胞凋亡过程。进一步阻断P38MAPK通路,重组chemerin组和中和chemerin组在应用P38MAPK抑制剂前后的差值分别为11.82%±0.60%和7.65%±0.83%,前者明显高于后者,差异有统计学意义(P(27)0.05)。由此推断,P38MAPK信号通路亦参与了chemerin的促巨噬细胞凋亡过程。结论重组人chemerin可促进FC诱导的巨噬细胞凋亡,并且JNK及P38MAPK信号通路参与此凋亡过程。
[Abstract]:The purpose of chemokine Chemerin is adipokines newly discovered. In our previous study showed that the expression of M RNA and protein Chemerin in patients with coronary heart disease were significantly higher in epicardial adipose tissue, and positively correlated with the severity of coronary atherosclerosis. The fat factor Chemerin was found to promote monocyte adhesion and formation of foam cells, and these two pathological process in As, plays an important role in the process of development. Each stage of macrophage apoptosis throughout the As, the As advanced lesions, can cause secondary cell necrosis and inflammatory reaction, promote plaque formation and expansion of the lipid core, and apoptosis of macrophages after the release of protease can damage the fibrous cap, resulting in no stable plaques (i.e. plaque formation). This study aimed to investigate the effects of Chemerin on macrophage apoptosis and its mechanism of action, and thus to As Provide new targets for prevention and treatment of coronary heart disease. Methods: (a) human monocyte to macrophage differentiation and RPMI1640 culture medium with 10% fetal bovine serum culture medium of human monocytic cell line THP-1, CD14-FITC joined 100nmol/L PMA identification; incubating for 72h, THP-1 human monocyte differentiation into macrophages. THP-1 macrophages. (two) preparation to promote free cholesterol aggregation (FC-loading) containing 1% fetal bovine serum DMEM added 100 g/ml acetyl low density lipoprotein and 10 g/ml cholesterol acyltransferase inhibitor -58035 promote FC aggregation in the macrophage culture medium model according to the literature, apoptosis of macrophages induced by apoptosis (three). Detection of Annexin-FITC and PI double staining by flow cytometry. The macrophages were washed with PBS solution were added into cell suspension, 5 L Annexin-V and 5 L PI, 15min and dark at room temperature. Add 200 L 1 x Buffer buffer flow cytometry. Each sample count of 5000 cells with excitation wavelength 488nm and emission wavelength of 515nm, 560nm standard. From the analysis of flow cytometry on cell scatter, Annexin-V+/PI- cell apoptosis cells (green fluorescence); Annexin-V+/PI+ cell necrosis cells (red orange fluorescence); Annex-in-V-/PI- living cells; apoptosis of macrophage percentage of macrophages apoptosis rate. (four) different concentrations of recombinant human Chemerin effect on FC-loading induced apoptosis of macrophages by concentration gradient of 0.1 g/l, 10 g/l, 500 g/l with recombinant human Chemerin, and blank control group, and Chemerin group, and Chemerin group to make Chemerin and Chemerin neutralizing antibody reaction 30min box incubated with 8h 5%CO2 37 degrees of the culture; groups were added to macrophage was cultured in 18h incubation, however In the FC under the state of aggregation of macrophages incubated 12h. by the method of macrophage apoptosis detection rate. (five) of JNK and P38MAPK pathway according to the experimental concentrations of recombinant human Chemerin to determine the above experiments, the establishment of recombinant Chemerin group and Chemerin group and Chemerin group; recombinant and neutralizing Chemerin group respectively using 10 mol/l JNK blocker (SP600125) and 10 mol/l P38MAPK blockers (SB203580) intervention, and the experimental results. (a) of different concentrations of recombinant human Chemerin Chemerin on the effect of recombinant human macrophage apoptosis can promote the apoptosis of macrophages induced by FC, and with the increase of the concentration of Chemerin increased. Apoptosis of macrophages apoptosis ratio in control group 19.04% + 0.39% u g/l, recombinant chemerin0.1 group is 22.77% + 0.86%, 10 + 1.06% and 26.37% in g/l group, 500 g/l group is 33.44% + 0.87% (see Figure 3). The Chemerin Group of macrophage apoptosis rate compared with the control group, the differences were statistically significant (P (27) 0.05). The use of Chemerin neutralizing antibody intervention, the apoptosis rate of macrophages were compared with the control group, the difference was not statistically significant (P0.05). (two) JNK and P38MAPK signal pathway in apoptosis of macrophage macrophage apoptosis rate of recombinant Chemerin group is 23.81% + 0.83% in Chemerin pro, and group Chemerin was 17.75% + 1.23%, recombinant chemerin+JNK blocker group is 13.96% + 0.68%, and chemerin+JNK blocker group is 11.62% + 0.36%, the recombinant chemerin+ P38MAPK blocker group is 11.99% + 0.23%, and the chemerin+P38MAPK blocker group was 10.10% + 0.43%. group and Chemerin group and recombinant Chemerin the application of JNK blocking agent before and after the difference were 9.85% + 0.34% and 6.13% + 1.09%, the former was significantly higher than that of the latter, the difference was statistically significant (P (27) 0.05). Thus, resistance Off the JNK signaling pathway can markedly reduce apoptosis of macrophage Chemerin. But the application of JNK blocking agent after the recombinant Chemerin group and Chemerin group and there are still differences (P (27) 0.05), suggest that there are other pathways involved in Chemerin on macrophage apoptosis process. Further blocking the P38MAPK pathway, recombinant Chemerin group and Chemerin group and the difference between before and after the application of P38MAPK inhibitors were 11.82% + 0.60% and 7.65% + 0.83%, the former was significantly higher than that of the latter, the difference was statistically significant (P (27) 0.05). Thus, the P38MAPK signaling pathway also participates in Chemerin on macrophage apoptosis. Conclusion recombinant human Chemerin can promote the apoptosis of macrophages induced by FC and JNK. And the P38MAPK signaling pathway is involved in this apoptotic process.
【学位授予单位】:首都医科大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:R541.4
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 ;豚鼠巨噬细胞经P_(204)处理后的抗石英细胞毒作用[J];国外医学参考资料(卫生学分册);1976年04期
2 邓侠进;;巨噬细胞的抗癌作用[J];遵义医学院学报;1979年02期
3 陆天才;;疾病对肺巨噬细胞的影响[J];煤矿医学;1982年01期
4 郭瑞清;祝彼得;;一种分离巨噬细胞的简单方法[J];滨州医学院学报;1990年02期
5 谢志坚;巨噬细胞异质性[J];医学综述;2001年06期
6 饶艳;运动及神经内分泌对巨噬细胞功能的调节[J];体育与科学;2002年05期
7 朱金元;;吸烟对肺巨噬细胞的影响[J];浙江医学教育;2003年01期
8 张俊峰;过氧化物酶体增殖物激活受体与单核/巨噬细胞系[J];医学综述;2004年03期
9 韦锦学;顾军;;巨噬细胞的激活诱导死亡[J];生命科学;2006年02期
10 李晓曦;郭宁;曹雪涛;;肿瘤相关巨噬细胞促进肿瘤生长与转移的研究现状[J];中国肿瘤生物治疗杂志;2008年01期
相关会议论文 前10条
1 史玉玲;王又明;丰美福;;巨噬细胞激活作用的研究[A];中国细胞生物学学会第五次会议论文摘要汇编[C];1992年
2 吴国明;周辉;;巨噬细胞和创伤纤维化[A];2009年浙江省骨科学学术年会论文汇编[C];2009年
3 李奇;王海杰;;透明质酸对于淋巴结巨噬细胞运动的影响[A];解剖学杂志——中国解剖学会2002年年会文摘汇编[C];2002年
4 刘革修;欧大明;刘军花;黄红林;廖端芳;;丙丁酚在体外能抑制巨噬细胞脂质氧化介导的低密度脂蛋白氧化并调节氧化巨噬细胞的分泌功能[A];面向21世纪的科技进步与社会经济发展(下册)[C];1999年
5 叶金善;杨丽霞;郭瑞威;;环氧化酶-2/前列腺素E_2在血管紧张素Ⅱ刺激巨噬细胞表达细胞外基质金属蛋白酶诱导因子中的作用[A];第十三次全国心血管病学术会议论文集[C];2011年
6 秦帅;陈希;孔德明;;构建由绿色荧光标记巨噬细胞的转基因斑马鱼系[A];贵州省中西医结合内分泌代谢学术会论文汇编[C];2012年
7 武剑华;徐惠绵;;肿瘤相关巨噬细胞在胃癌中的相关研究[A];第9届全国胃癌学术会议暨第二届阳光长城肿瘤学术会议论文汇编[C];2014年
8 何军;;血凝素样氧化型低密度脂蛋白受体升高巨噬细胞内胆固醇水平[A];中华医学会第11次心血管病学术会议论文摘要集[C];2009年
9 宋盛;周非凡;邢达;;PDT诱导的凋亡细胞对巨噬细胞NO合成的影响[A];第七届全国光生物学学术会议论文摘要集[C];2010年
10 张磊;朱建华;黄元伟;姚航平;;血管紧张素Ⅱ对巨噬细胞(THP-1重细胞)凝集素样氧化低密度脂蛋白受体表达的影响[A];浙江省免疫学会第五次学术研讨会论文汇编[C];2004年
相关重要报纸文章 前10条
1 通讯员 李静 记者 胡德荣;恶性肿瘤巨噬细胞未必皆“恶人”[N];健康报;2014年
2 兰克;以尝试用巨噬细胞治瘫痪[N];科技日报;2000年
3 薛佳;免疫系统——人体的“卫士”[N];保健时报;2009年
4 记者 胡德荣;铁泵蛋白“维稳”铁代谢作用首次阐明[N];健康报;2011年
5 侯嘉 何新乡;硒的神奇功能[N];中国食品质量报;2003年
6 唐颖 倪兵 陈代杰;巨噬细胞泡沫化抑制剂研究快步进行[N];中国医药报;2006年
7 刘元江;新发现解释肿瘤为何易成“漏网之鱼”[N];医药经济报;2007年
8 本报记者 侯嘉 通讯员 何新乡;今天你补硒了吗[N];医药经济报;2003年
9 左志刚;升血小板药使用注意[N];医药养生保健报;2007年
10 记者 许琦敏;“铁泵”蛋白帮助回收铁元素[N];文汇报;2011年
相关博士学位论文 前10条
1 周赤燕;巨噬细胞MsrA对动脉粥样硬化的干预研究[D];武汉大学;2013年
2 章桂忠;TIPE2蛋白调控细胞增殖和炎症的机制研究[D];山东大学;2015年
3 张瑜;DKK1抑制巨噬细胞内脂质沉积及其相关分子机制[D];山东大学;2015年
4 孟涛;异丙酚对心脏收缩功能的抑制作用及其对巨噬细胞分泌功能调节的机制研究[D];山东大学;2015年
5 周兴;基于酵母微囊构建新型口服巨噬细胞靶向递送系统的研究[D];第三军医大学;2015年
6 蒋兴伟;Tim-3对巨噬细胞极化的调控机制研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2015年
7 刘伯玉;清道夫受体A介导小鼠巨噬细胞吞噬钩端螺旋体研究[D];上海交通大学;2013年
8 杨绍俊;miRNA-155介导ESAT-6诱导巨噬细胞凋亡的分子机制及其在结核诊断中的作用[D];第三军医大学;2015年
9 翟光耀;单核/巨噬细胞Ly6C~(low)亚群在心肌梗死后瘢痕形成期的抗炎特性研究[D];北京协和医学院;2014年
10 韩露;TRB3介导的脂肪组织巨噬细胞极化与糖尿病冠状动脉病变关系的研究[D];山东大学;2015年
相关硕士学位论文 前10条
1 张译丹;盐皮质激素受体拮抗剂调控巨噬细胞表型对实验性矽肺的作用[D];河北医科大学;2015年
2 卢文冉;HCV core蛋白作用的巨噬细胞培养上清对肝细胞生物学性状的影响[D];河北医科大学;2015年
3 李文建;载脂蛋白E影响巨噬细胞因子表达及分型的机制研究[D];河北医科大学;2015年
4 曹爽;高糖对巨噬细胞TLR4信号转导的调节作用[D];河北医科大学;2015年
5 宁程程;肿瘤相关巨噬细胞在子宫内膜癌雌激素敏感性中的作用及机制研究[D];复旦大学;2014年
6 高龙;PLD4在肿瘤相关巨噬细胞抑制结肠癌增殖中的作用研究[D];成都医学院;2015年
7 丁弋娜;TLR4在肺癌相关巨噬细胞极性转化及其调控机制的研究[D];杭州师范大学;2016年
8 袁震;砷对巨噬细胞和肝细胞胆固醇流出及相关基因ABCA1和ABCG1表达的影响[D];杭州师范大学;2016年
9 李晓琴;Fc99抑制单核/巨噬细胞表达Tenascin-C及缓解关节炎症状的研究[D];南京大学;2014年
10 王凯凯;绿豆肽的结构鉴定及对小鼠巨噬细胞免疫活性物质的影响作用研究[D];黑龙江八一农垦大学;2016年
,本文编号:1703699
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/xxg/1703699.html