调节Notch-1信号系统对高糖诱导心肌细胞损伤的保护作用及机制
发布时间:2021-05-11 03:02
目的:1.观察高糖对H9c2心肌细胞增殖、凋亡及纤维化的影响。2.观察以Notch-1为靶点干预对高糖诱导的H9c2心肌细胞增殖、凋亡及纤维化的影响。3.探讨过表达Notch-1抑制高糖诱导的H9c2心肌细胞凋亡及纤维化的机制。方法:1.体外低糖正常培养H9c2细胞,再分别运用高糖、γ分泌肽酶抑制剂(DAPT)和Notch-1过表达慢病毒进行干预。2.实验分六组:①Control组:正常对照组,用5.5mmol/L低糖培养基培养H9c2细胞;②Mannitol组:甘露醇高渗对照组,用含33mmol/L甘露醇的培养基培养H9c2细胞;③High glucose组:阳性对照组,用含33mmol/L葡萄糖的培养基培养H9c2细胞;④DAPT组:用Notch-1特异性阻断剂γ分泌肽酶抑制剂(DAPT)干预H9c2细胞;⑤Notch-1组:感染Notch-1过表达病毒组;⑥GFP组:感染空载体慢病毒组。3.DAPT干预48h,慢病毒感染72h后,用CCK-8试剂盒检测各组H9c2细胞的增殖抑制率;应用Annexin V-FITC/PI双染色后流式细胞仪测各组H9c2细胞凋亡率并比较;同时应用qR...
【文章来源】:南昌大学江西省 211工程院校
【文章页数】:52 页
【学位级别】:硕士
【文章目录】:
摘要
ABSTRACT
中英文缩略词表
第1章 引言
1.1 Notch 信号通路简单概述以及在心脏中的作用
1.2 PI3K/AKT 信号通路与心肌保护作用
1.3 Notch-1 信号系统与 PI3K/AKT 通路相互整合参与心肌保护
1.4 Notch-1 信号系统在心肌细胞纤维化中的作用
1.5 以 PI3K/AKT 为切入点研究 Notch-1 信号系统对心肌损伤的保护作用及机制
第2章 材料与方法
2.1 实验材料
2.1.1 细胞
2.1.2 主要试剂及耗材
2.1.3 主要仪器
2.2 实验方法
2.2.1 器材的灭菌、去 RNA 酶处理
2.2.2 相关液体的配制
2.2.3 大鼠胚胎心肌细胞株 H9c2 细胞的体外培养
2.2.4 γ分泌肽酶抑制剂(DAPT)使用浓度的测定
2.2.5 Notch-1 慢病毒感染 H9c2 细胞确定 MOI 值
2.2.6 正式慢病毒感染实验
2.2.7 CCK-8 检测各组 H9c2 细胞增殖的变化
2.2.8 应用 Annexin V /PI 双染色后流式细胞仪测各组心肌细胞凋亡率并比较
2.2.9 qRT-PCR 检测 DAPT 干预和 Notch-1 过表达慢病毒感染后各组H9c2 细胞 PI3K/AKT mRNA 的表达
2.2.10 Western blot 检测 DAPT 干预和 Notch-1 过表达慢病毒感染后各组H9c2 细胞 Notch-1、P-PI3K/P-AKT、Bax、Bcl-2、α-sma、collagen I 蛋白的表达
2.3 统计学分析
第3章 结果
3.1 H9c2 细胞的生长特点
3.2 不同浓度 DAPT 对 H9c2 心肌细胞增殖的影响
3.3 空载体慢病毒感染 H9c2 细胞测 MOI 值结果
3.4 Western blot 法测定各组细胞 Notch-1 蛋白的表达
3.5 Notch-1对心肌细胞增殖的影响:CCK-8试剂盒检测各组H9c2细胞的增殖抑制率
3.6 Notch-1 对心肌细胞凋亡的影响:
3.6.1 Western blot 法测定各组细胞 Bax、Bcl-2 的表达
3.6.2 应用 Annexin V-FITC/PI 双染色后流式细胞仪测各组 H9c2 心肌细胞凋亡率
3.7 Notch-1 对心肌细胞纤维化反应的影响:Western blot 法测定各组H9c2 细胞中α-sma、collagen I 蛋白表达
3.8 定量 RT-PCR 法测定各组细胞中 PI3K/AKT mRNA 含量并比较
3.9 Western blot 法测定各组细胞 p-PI3K/p-AKT 蛋白的表达
第4章 讨论
第5章 结论与展望
5.1 结论
5.2 展望
致谢
参考文献
综述
参考文献
本文编号:3180586
【文章来源】:南昌大学江西省 211工程院校
【文章页数】:52 页
【学位级别】:硕士
【文章目录】:
摘要
ABSTRACT
中英文缩略词表
第1章 引言
1.1 Notch 信号通路简单概述以及在心脏中的作用
1.2 PI3K/AKT 信号通路与心肌保护作用
1.3 Notch-1 信号系统与 PI3K/AKT 通路相互整合参与心肌保护
1.4 Notch-1 信号系统在心肌细胞纤维化中的作用
1.5 以 PI3K/AKT 为切入点研究 Notch-1 信号系统对心肌损伤的保护作用及机制
第2章 材料与方法
2.1 实验材料
2.1.1 细胞
2.1.2 主要试剂及耗材
2.1.3 主要仪器
2.2 实验方法
2.2.1 器材的灭菌、去 RNA 酶处理
2.2.2 相关液体的配制
2.2.3 大鼠胚胎心肌细胞株 H9c2 细胞的体外培养
2.2.4 γ分泌肽酶抑制剂(DAPT)使用浓度的测定
2.2.5 Notch-1 慢病毒感染 H9c2 细胞确定 MOI 值
2.2.6 正式慢病毒感染实验
2.2.7 CCK-8 检测各组 H9c2 细胞增殖的变化
2.2.8 应用 Annexin V /PI 双染色后流式细胞仪测各组心肌细胞凋亡率并比较
2.2.9 qRT-PCR 检测 DAPT 干预和 Notch-1 过表达慢病毒感染后各组H9c2 细胞 PI3K/AKT mRNA 的表达
2.2.10 Western blot 检测 DAPT 干预和 Notch-1 过表达慢病毒感染后各组H9c2 细胞 Notch-1、P-PI3K/P-AKT、Bax、Bcl-2、α-sma、collagen I 蛋白的表达
2.3 统计学分析
第3章 结果
3.1 H9c2 细胞的生长特点
3.2 不同浓度 DAPT 对 H9c2 心肌细胞增殖的影响
3.3 空载体慢病毒感染 H9c2 细胞测 MOI 值结果
3.4 Western blot 法测定各组细胞 Notch-1 蛋白的表达
3.5 Notch-1对心肌细胞增殖的影响:CCK-8试剂盒检测各组H9c2细胞的增殖抑制率
3.6 Notch-1 对心肌细胞凋亡的影响:
3.6.1 Western blot 法测定各组细胞 Bax、Bcl-2 的表达
3.6.2 应用 Annexin V-FITC/PI 双染色后流式细胞仪测各组 H9c2 心肌细胞凋亡率
3.7 Notch-1 对心肌细胞纤维化反应的影响:Western blot 法测定各组H9c2 细胞中α-sma、collagen I 蛋白表达
3.8 定量 RT-PCR 法测定各组细胞中 PI3K/AKT mRNA 含量并比较
3.9 Western blot 法测定各组细胞 p-PI3K/p-AKT 蛋白的表达
第4章 讨论
第5章 结论与展望
5.1 结论
5.2 展望
致谢
参考文献
综述
参考文献
本文编号:3180586
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