当前位置:主页 > 医学论文 > 药学论文 >

LSD1小分子抑制剂筛选方法的建立及其抑制剂的筛选和抗肿瘤活性研究

发布时间:2020-05-02 19:08
【摘要】:表观遗传学研究的是在DNA序列没有改变的情况下,由染色体变化引起的可遗传的表型变化。常见的染色体变化有DNA修饰、RNA修饰与组蛋白修饰等。组蛋白修饰是调节转录调控中重要的一部分。本文研究对象组蛋白赖氨酸特异性去甲基化酶1是第一个被确定的组蛋白去甲基化酶,可以特异性地去除组蛋白H3K4和H3K9单双甲基。据报道,LSD1在多种癌症中过表达,如胃癌和白血病。LSD1功能的抑制可以降低癌细胞的增殖和转移能力,因此获取高效靶向LSD1抑制剂将成为癌症治疗新策略。目前LSD1抑制剂筛选方法较为有限,多为检测抑制剂对LSD1抑制活性,在检测抑制剂对LSD1靶向结合能力方面略有不足。且一些实验方法例如基于H_2O_2定量的方法,无法评价与H_2O_2反应的化合物,具有一定局限性。因此建立多角度筛选方法可弥补筛选的局限性。待使用建立的筛选方法筛选得到分子水平活性较好的抑制剂后,对抑制剂进行进一步细胞水平抗肿瘤活性研究,为LSD1抑制剂进一步设计与优化提供新思路。本课题围绕以下问题开展:(1)LSD1截断体重组蛋白的表达与纯化本课题使用亲和层析法与离子交换色谱柱法对LSD1截断体重组蛋白进行纯化,获得纯度95%的LSD1截断体重组蛋白,可满足后期抑制剂筛选与酶动力学研究需求。(2)LSD1抑制剂筛选方法建立本课题从化合物对酶抑制活性检测、化合物与靶标结合以及酶-配体动力学三个角度进行了LSD1抑制剂筛选方法建立的实验设计。课题首先表达并纯化了甲醛脱氢酶,通过定量甲醛从而定量了LSD1去甲基化活性及小分子抑制剂对LSD1活性的抑制能力;其次使用染料SYPRO Orange实时监测荧光值,反应化合物与蛋白的结合;最后本课题应用表面等离子共振技术实现了对抑制剂的筛选并获得相应酶动力学数据,弥补了现有LSD1抑制剂筛选方法无法评价抑制剂对LSD1靶向结合动力学的不足。(3)新型LSD1抑制剂抗肿瘤活性的研究本课题组通过对组内化合物库的筛选与优化,得到一个二苯乙烯类、一个吲哚衍生物类及两个三唑并嘧啶类共四个高效LSD1靶向抑制剂,并在分子水平和细胞水平进行了活性评价。新型二苯乙烯类LSD1抑制剂DYC-8c在分子水平通过FAD竞争的方式可逆地抑制LSD1活性,所得IC_(50)=0.28μM,且以快结合(Kon=1.82×10~3 1/(M?s))、慢解离(Koff=1.00×10~-22 1/s)的方式作用于LSD1。在细胞水平,DYC-8c促进白血病THP-1细胞白细胞分化抗原CD86的表达并促进其髓样分化,抑制其增殖与克隆形成能力,IC_(50)为5.76μM。此外,它还能使THP-1细胞中LSD1底物H3K4me2的累积逐渐增加,说明其在细胞内同样靶向抑制LSD1的活性。新型不可逆吲哚衍生物类LSD1抑制剂XHW-9e为首个非单胺氧化酶抑制剂类的不可逆LSD1抑制剂,分子水平对LSD1 IC_(50)=1.23μM,并提高LSD1的稳定性,说明其有效地靶向LSD1重组蛋白,且同样以快结合(Kon=2.98×10~31/(M?s))、慢解离(Koff=6.05×10~(-2)1/s)的方式靶向作用于LSD1。细胞水平,XHW-9e可有效抑制THP-1的增殖与克隆形成能力,增殖抑制IC_(50)为1.20μM,促进了CD86的表达,促进了髓样分化。新型三唑并嘧啶类LSD1抑制剂WS-996以可逆的形式通过竞争FAD从而抑制LSD1蛋白活性,IC_(50)=34.45 nM。在THP-1中可达到IC_(50)=1.65μM的细胞增殖抑制作用,促进THP-1的分化,有效提升细胞内LSD1热稳定性,说明其靶向细胞内LSD1并发挥作用。新型三唑并嘧啶类LSD1抑制剂WS-812与WS-996相比,具有相似的分子水平活性抑制能力与作用方式,IC_(50)=38.15 nM,K_D=6.23μM。此外,WS-812不仅对白血病THP-1细胞具有细胞增殖、克隆形成的抑制作用与促分化作用,而且可以较好地抑制胃癌细胞MGC-803的细胞增殖,有效抑制其克隆形成与转移能力。综上所述,本课题首次使用两步法得到高纯度LSD1重组蛋白,并首次根据副产物定量、蛋白热稳定性与表面等离子共振原理建立了三个LSD1抑制剂筛选方法,发现了四个新型LSD1抑制剂,其中三个为可逆抑制剂,一个为首个非单胺氧化酶抑制剂类的不可逆抑制剂。后期的抑制剂生物活性评价结果揭示了抑制剂的抗肿瘤活性,为新型靶向LSD1抗肿瘤药物的开发提供了重要的依据。
【图文】:

模型图,核小体,串珠,模型


图 1.1 核小体“串珠模型”结构NA 修饰A 的主要修饰为 DNA 甲基化。在真核细胞中,DNA 的 CpG CpGIs)二核苷酸胞嘧啶在合成后被 DNA 甲基转移酶ansferase,,DNMT)将 S-甲硫腺苷(S-adenosylmethionine,SA胞嘧啶的 C5 位置,转化为 5-甲基胞嘧啶(5-methycytosine,5修饰[11](图 1.2)。DNA 的甲基化可以抑制转录因子与 DNA 募具有抑制基因表达功能的酶,从而造成基因沉默[12]。因此 D组关键的表观遗传修饰,参与许多细胞过程,包括基因转录、胚失活、染色体稳定和基因组印记等[13]。

甲基化


图 1.1 核小体“串珠模型”结构修饰为 DNA 甲基化。在真核细胞中,DNA 二核苷酸胞嘧啶在合成后被 DNA 甲基,DNMT)将 S-甲硫腺苷(S-adenosylmethion的 C5 位置,转化为 5-甲基胞嘧啶(5-methycy(图 1.2)。DNA 的甲基化可以抑制转录因子与抑制基因表达功能的酶,从而造成基因沉默[12]的表观遗传修饰,参与许多细胞过程,包括基因染色体稳定和基因组印记等[13]。
【学位授予单位】:郑州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2019
【分类号】:R91;R96

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 计超;席思维;张磊;于悦;吴晓炀;姜虹;;七氟烷下调LSD1表达抑制胚胎干细胞的自我更新[J];外科理论与实践;2017年04期

2 李航;张劲帆;陈宇;卢靖宇;陈昱;;LSD1在乳腺癌中的表达及意义[J];莆田学院学报;2016年05期

3 周鑫鑫;周宁;刘长春;;LSD1小分子抑制剂的合成及抗肿瘤活性研究[J];化学试剂;2017年08期

4 吴红梅;杨洋;;LSD1与E-钙黏蛋白在胃癌中的表达及预后意义[J];检验医学与临床;2017年08期

5 石昌杰;花秋红;张丽红;张儒;;神经干细胞特异性LSD1基因敲除对小鼠情绪及记忆的影响[J];中国实验动物学报;2017年01期

6 林乐千;王伟;郝敏;;LSD1在妇科恶性肿瘤中的研究进展[J];国际妇产科学杂志;2017年04期

7 顾晨文;刘现立;;LSD1在人直肠腺癌组织中高表达[J];基础医学与临床;2019年01期

8 曹冰雁;刘艺洁;武莉莉;费乔曼;杨冰;张玲;乔卫;;木兰花碱减轻慢性应激小鼠抑郁样行为及对脑部LSD1组蛋白修饰的影响[J];天津医药;2019年04期

9 刘秀雯;魏野;李袁霞;薛晶;万晓蕾;金洁;邵根宝;;沉默LSD1基因的表达可抑制卵巢癌HO8910细胞的增殖并诱导其凋亡[J];肿瘤;2016年05期

10 林秀梅;曾丽华;许世林;王顺清;毛平;;shRNA下调LSD1基因表达对人急性髓系白血病细胞凋亡与细胞周期的影响[J];实用医学杂志;2017年03期

相关会议论文 前9条

1 张元元;汪晓莺;张洁;;LSD1在结肠癌中的表达及其对结肠癌LoVo细胞迁移侵袭的影响[A];第九届全国免疫学学术大会论文集[C];2014年

2 陈果;徐勇;;SET7/9和LSD1在2型糖尿病大血管病变中的作用——表观机制探讨[A];中华医学会第十次全国内分泌学学术会议论文汇编[C];2011年

3 陶厚权;叶再元;王元宇;王惠菊;何徐军;马英玉;夏英捷;;LSD1在胃癌中的表达及其意义[A];2009年浙江省外科学学术年会论文汇编[C];2009年

4 林秀梅;钟文婷;王顺清;;组蛋白去甲基化酶LSD1在急性白血病的表达及其临床意义[A];第13届全国实验血液学会议论文摘要[C];2011年

5 赵瀛兰;;新型LSD1抑制剂抗肿瘤作用及机制研究[A];第十四届中国药学会青年药学论坛报告集[C];2018年

6 王志茹;李金凤;郑一超;马金莲;赵文;刘宏民;;胃癌细胞中组蛋白去甲基化酶LSD1对TGF-β1表达的调控[A];2014年中国药学大会暨第十四届中国药师周论文集[C];2014年

7 王世恩;刘钰妮;杨建林;王艳林;曹春雨;;优降宁通过抑制LSD1与奥沙利铂协同抑制MDA-MB-231细胞增殖[A];中国生物化学与分子生物学会第十二届全国会员代表大会暨2018年全国学术会议摘要集[C];2018年

8 钟雯婷;王顺清;毛平;;RYBP、BMI1及LSD1蛋白在急性白血病中表达情况的研究[A];第13届全国实验血液学会议论文摘要[C];2011年

9 全军民;汪静;卢菲;任骐;叶涛;张慧;;肿瘤干细胞特异性靶标的发现及小分子抑制剂的研究[A];中国化学会第28届学术年会第3分会场摘要集[C];2012年

相关博士学位论文 前10条

1 张洁;LSD1对斑马鱼发育的影响及其机制的初步研究[D];复旦大学;2009年

2 王敏;LSD1介导前列腺癌侵袭、转移的机制研究[D];武汉大学;2016年

3 丁杰;LSD1对结肠癌侵袭转移能力的影响及其机制的研究[D];中南大学;2013年

4 胡鑫;LSD1表观遗传修饰对TAL1功能和机体造血调控机制的研究[D];吉林大学;2009年

5 谭理;组蛋白脱甲基酶LSD1在小鼠胚胎干细胞分化及斑马鱼胚胎发育中的作用[D];复旦大学;2009年

6 雷增杰;组蛋白去甲基化酶LSD1促进肿瘤细胞“干性”和侵袭转移的机制研究[D];第三军医大学;2015年

7 陈德红;LSD1在前列腺癌雄激素非依赖性表型转化中的作用及机制研究[D];华中科技大学;2014年

8 陈聪;中药单体槲皮素通过抑制LSD1干预上皮性卵巢癌侵袭的机制研究[D];南京中医药大学;2017年

9 郭艺迪;LSD1介导的表观遗传修饰调控GATA Switch的机制研究[D];吉林大学;2016年

10 刘爽;1.转录因子RUNX1与KLF4相互作用及转录调控对t(8;21)白血病细胞生物学功能的影响 2.新型LSD1抑制剂JL1037的抗白血病作用及其机制研究[D];北京协和医学院;2017年

相关硕士学位论文 前10条

1 索凤至;LSD1小分子抑制剂筛选方法的建立及其抑制剂的筛选和抗肿瘤活性研究[D];郑州大学;2019年

2 吴嫣然;2',3'-二氢螺[环丙烷-1,1'-茚]-2-胺类LSD1抑制剂的合成与构效关系研究[D];华东师范大学;2017年

3 卢太亮;LSD1在胃癌组织中的表达及意义[D];中南大学;2014年

4 高鸿;LSD1与肾透明细胞癌相关性的初步研究[D];南昌大学;2013年

5 冯杰鑫;组蛋白去甲基化酶LSD1在乳腺癌发生发展中作用及机制的初步研究[D];福建医科大学;2017年

6 张聪哲;LSD1介导的组蛋白H3K4去甲基化对雄激素受体调控靶基因转录的影响[D];复旦大学;2013年

7 李丹丹;LSD1对T细胞及NK细胞表型的影响[D];天津医科大学;2015年

8 李袁霞;LSD1介导的表观遗传学修饰促进卵巢癌细胞的迁移及侵袭[D];江苏大学;2016年

9 陈果;SET7/9和LSD1在2型糖尿病大血管病变中的作用[D];泸州医学院;2011年

10 孙昊;LSD1在小鼠胚胎成纤维细胞重编程中的功能研究[D];北京林业大学;2013年



本文编号:2647400

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/yiyaoxuelunwen/2647400.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户37f3b***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com