阿司匹林对TNF-α诱导RAW264.7细胞中MMP-9表达的影响及其机制研究
本文关键词:阿司匹林对TNF-α诱导RAW264.7细胞中MMP-9表达的影响及其机制研究
更多相关文章: 阿司匹林 动脉粥样硬化 基质金属蛋白酶 巨噬细胞
【摘要】:动脉粥样硬化(Atherosclerosis,AS)是冠脉综合征的病理基础,严重危害人类健康。据统计约有15.4万人患有心脑血管疾病和动脉粥样硬化。在动脉粥样硬化发展过程中伴随炎症的侵袭,导致斑块处活化的巨噬细胞分泌大量的基质金属蛋白酶(matrix metalloproteinases,MMPs),后者可以降解细胞外基质增加心脑血管疾病的发病率和死亡率。基质金属蛋白酶-9(matrix metalloproteinases-9,MMP-9),是基质金属蛋白酶家族中的一员,不仅可以过度降解基底膜IV型胶原,而且促进炎症反应和血管平滑肌细胞(Vascular smooth muscle cell,VSMC)的增殖和迁移,导致动脉粥样硬化斑块的不稳定形成血栓。由巨噬细胞分泌的MMP-9是影响动脉粥样硬化斑块形成及稳定性的重要因素,抑制动脉粥样硬化炎症细胞分泌的MMP-9的产生对预防动脉粥样硬化疾病的发生和发展可能是一个新的药物靶点。阿司匹林是常见的非甾体抗炎药,在预防血管动脉硬化中发挥着重要作用。研究表明阿司匹林抑制动脉粥样硬化患者斑块的血管炎症及环氧酶-2的活性,也抑制核因子κB p65(nuclear factor,NF-κBp65)核转录表达。有文献报道,阿司匹林稳定动脉粥样斑块可能与抑制MMP-9表达有关,但相关的作用机制尚未完全清楚。本文以RAW264.7细胞为研究对象,体外研究阿司匹林对TNF-α诱导的RAW264.7细胞中MMP-9的表达及其可能的作用机制。目的:观察阿司匹林对TNF-α诱导RAW264.7细胞中MMP-9的表达,并探讨其可能的作用机制。1.阿司匹林对tnf-α诱导raw264.7细胞中mmp-9的表达和活性影响阿司匹林(75、150、300、600μm)预处理raw264.7细胞1h,加tnf-α(10ng/ml)作用24h,应用mtt法检测阿司匹林对raw264.7的细胞毒性。westernblot和rt-pcr检测阿司匹林对mmp-9蛋白和基因表达情况,明胶酶谱法检测阿司匹林对mmp-9酶活性表达。结果显示,不同浓度的阿司匹林对raw264.7细胞无毒性作用。阿司匹林剂量依赖性地抑制tnf-α诱导的raw264.7细胞中mmp-9的表达和酶活性。2.阿司匹林对mapk信号通路中各磷酸化蛋白的影响及抑制mapk信号通路后mmp-9表达的影响阿司匹林(600μm)预处理raw264.7细胞1h后,加tnf-α(10ng/ml)分别作用60min、30min、20min和10min。westernblot检测mapk信号通路中各蛋白的表达情况:p-erk1/2、erk1/2、p-jnk、jnk、p-p38、p38。结果显示,阿司匹林分别在20min、60min和30min降低p-erk1/2、p-p38和p-jnk蛋白的表达。erk1/2、p38和jnk非磷酸化蛋白表达无明显变化。用特异性阻断剂pd98059(10μm)、sb203580(10μm)和sp600125(20μm)阻断mapk信号通路中erk1/2、p38和jnk通路。以上阻断剂提前1h加入,再加tnf-α(10ng/ml)作用24h。应用westernblot和q-rt-pcr检测mmp-9的蛋白和基因表达情况。结果显示,在mapk信号通路特异性阻断剂存在下,mmp-9的表达明显下降。3.阿司匹林对nf-κbp65核蛋白表达的影响及抑制nf-κb信号通路后mmp-9表达的影响用阿司匹林(75、150、300、600μ)预处理raw264.7细胞1h后,加tnf-α(10ng/ml)作用1h。应用westernblot检测核内p65蛋白表达。结果显示,阿司匹林降低核内p65蛋白的表达。用nf-κb通路特异性阻断剂pdtc(10μm)提前预处理细胞1h后,加tnf-α(10ng/ml)作用1h,应用westernblot和q-rt-pcr检测mmp-9的蛋白和基因表达。结果显示,加pdtc阻断剂后,mmp-9的蛋白和基因表达均下降。结论:阿司匹林对细胞无毒性作用且抑制tnf-α诱导的raw264.7细胞中mmp-9的表达。另外,阿司匹林抑制TNF-α诱导RAW264.7细胞中MMP-9表达的机制可能与调节MAPK和NF-κB信号转导通路相关蛋白有关。
【关键词】:阿司匹林 动脉粥样硬化 基质金属蛋白酶 巨噬细胞
【学位授予单位】:安徽医科大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R96
【目录】:
- 中英文缩略词对照5-7
- 摘要7-10
- Abstract10-13
- 前言13-14
- 1.实验材料14-19
- 2.实验方法19-31
- 2.1 细胞培养19
- 2.2 MTT试验19-21
- 2.3 PCR21-24
- 2.4 Western Blot24-29
- 2.5 明胶酶谱试剂盒检测 MMP-9 酶活性29-30
- 2.6 统计学处理30-31
- 3.结果31-44
- 3.1 阿司匹林对RAW264.7 细胞的毒性作用31-32
- 3.2 阿司匹林对TNF-α 诱导RAW264.7 细胞中MMP-9 的抑制作用32-35
- 3.3 阿司匹林对MAPK信号通路相关蛋白的表达35-38
- 3.4 MAPK信号通路各抑制剂对MMP-9 表达的影响38-40
- 3.5 阿司匹林对p65 蛋白表达的影响40-42
- 3.6 NF-κB通路抑制剂对MMP-9 表达的影响42-44
- 4.讨论44-47
- 5.结论47
- 参考文献47-54
- 附录54-55
- 致谢55-57
- 综述57-66
- 参考文献62-66
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 庞战军,周玫,陈瑗;巨噬细胞集落刺激因子对RAW264.7细胞谷胱甘肽过氧化物酶活性及其基因表达的影响[J];中国动脉硬化杂志;2000年02期
2 杨大春;杨永健;张鑫;李德;唐兵;陈劲松;朱峻;速晓华;李刚;;过氧化体增殖物激活型受体δ激动剂抑制RAW264.7细胞炎症因子的表达[J];中国动脉硬化杂志;2010年01期
3 方瑶;潘静;李倩;顾江;唐彬;张卫军;毛旭虎;;类鼻疽伯克霍尔德氏菌感染RAW264.7细胞模型的建立[J];中国人兽共患病学报;2013年03期
4 庞战军,邢福祺,陈欣;氧化剂对RAW264.7细胞诱导型一氧化氮合酶基因表达的影响[J];中国动脉硬化杂志;2001年03期
5 沈玲红;何奔;周磊;胡刘华;卜军;邵琴;王力;曾锦章;王彬尧;;激活视黄醇类X受体对氧化型低密度脂蛋白诱导小鼠巨噬细胞系RAW264.7凋亡的影响[J];中国动脉硬化杂志;2008年11期
6 张叶敏;李阳;张德玲;欧阳静萍;;花色苷对氧化型低密度脂蛋白诱导Raw264.7细胞损伤基因表达谱的影响[J];中国动脉硬化杂志;2009年07期
7 宋传旺;陶象男;唐洁;申林;;miR-20b对小鼠RAW264.7细胞血管内皮生长因子表达的调控作用[J];上海交通大学学报(医学版);2014年04期
8 韩冠平;敖彩卉;薛林;赵春玉;齐丽彤;;氧化型低密度脂蛋白诱导RAW264.7细胞表达V型和X型分泌型磷脂酶A2[J];中国动脉硬化杂志;2009年06期
9 李卫萍;赵正保;;脂多糖对RAW264.7细胞生长的影响[J];中外医疗;2012年15期
10 丛林;夏志宽;杨蓉娅;;补体对RAW264.7小鼠巨噬细胞吞噬阿萨希毛孢子菌的增强作用[J];实用皮肤病学杂志;2013年04期
中国重要会议论文全文数据库 前10条
1 杨江涛;董晓芳;佟建明;刘晴雪;张琪;吴莹莹;;苜草素多糖、黄酮和皂苷对小鼠巨噬细胞RAW264.7β-防御素基因表达的影响[A];第六次全国饲料营养学术研讨会论文集[C];2010年
2 王艳;郑群;王一松;朱俊萍;曹宁;平国玲;张力平;;链球菌蛋白对RAW264.7小鼠巨噬细胞活性的调节作用[A];2008年中国微生物学会学术年会论文摘要集[C];2008年
3 覃丽;胡蓉;姚海伦;凌红艳;廖端芳;;wnt5a对荷脂巨噬细胞RAW264.7中胆固醇蓄积的影响及相关机制[A];传承与发展,创湖南省生理科学事业的新高——湖南省生理科学会2011年度学术年会论文摘要汇编[C];2011年
4 赵国阳;徐又佳;;铁调素对小鼠单核细胞RAW264.7向破骨细胞分化的影响[A];中华医学会第七次全国骨质疏松和骨矿盐疾病学术会议论文汇编[C];2013年
5 周江睿;黄俊龙;蒋春雷;;神经肽Y对RAW264.7细胞肿瘤坏死因子α产生的影响及其可能机制[A];2008年神经内分泌暨神经免疫内分泌学术研讨会论文摘要汇编[C];2008年
6 周寿红;刘立英;陈庚容;唐密密;杨旭红;;对氧磷对RAW264.7巨噬细胞源性泡沫细胞ABCA1mRNA表达和胆固醇流出的影响[A];湖南省生理科学会2008年度学术年会论文摘要汇编[C];2008年
7 赵国阳;徐又佳;;铁调素对小鼠单核细胞RAW264.7向破骨细胞分化的影响[A];中华医学会第五次中青年骨质疏松和骨矿盐疾病学术会议论文集[C];2013年
8 苏子杰;钟舒红;尹丹;崔月明;韦英益;胡庭俊;;山豆根多糖对PCV-2诱导RAW264.7细胞线粒体氧化应激的调节作用[A];中国畜牧兽医学会中兽医学分会2013年学术年会论文集[C];2013年
9 陈旭林;郭峰;王飞;王永杰;;不同浓度的LPS对RAW264.7巨噬细胞血管紧张素Ⅱ1型受体表达的影响[A];第七届全国创伤学术会议暨2009海峡两岸创伤医学论坛论文汇编[C];2009年
10 于化鹏;梁海梅;;NLRP3/IL-18和IL-33在脂多糖诱导的RAW264.7巨噬细胞炎症中表达及其意义[A];中华医学会呼吸病学年会——2013第十四次全国呼吸病学学术会议论文汇编[C];2013年
中国博士学位论文全文数据库 前1条
1 朱洁萍;睾酮对小鼠RAW264.7巨噬细胞炎症因子表达的影响及分子机制研究[D];复旦大学;2009年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 张平;阿司匹林对TNF-α诱导RAW264.7细胞中MMP-9表达的影响及其机制研究[D];安徽医科大学;2015年
2 李忱炜;肺炎链球菌溶血素对细菌毒力的影响及诱导RAW264.7细胞凋亡的研究[D];重庆医科大学;2011年
3 黄谙非;Adipophilin促进RAW264.7细胞内ACAT1高表达[D];南华大学;2008年
4 张学敏;硫色满酮衍生物激活RAW264.7细胞及体外抗癌细胞转移的研究[D];河北大学;2014年
5 郭峰;血管紧张素Ⅱ1型受体在RAW264.7巨噬细胞中的表达及其在炎症介质产生中的作用[D];安徽医科大学;2009年
6 续力云;新型免疫分子Tim-4对小鼠巨噬细胞系RAW264.7生物学活性的影响[D];山东大学;2008年
7 王艳红;伯氏疏螺旋体重组膜蛋白A对小鼠巨噬细胞株RAW264.7的体外作用研究[D];昆明医科大学;2014年
8 李宇宁;内体成熟障碍对LPS在RAW264.7细胞的内化以及对细胞活化的影响[D];第三军医大学;2009年
9 刘超;抗菌肽hCAP-18/LL-37基因转染对巨噬细胞RAW264.7活化功能的影响[D];吉林大学;2010年
10 聂建巍;γ-干扰素增强RAW264.7巨噬细胞吞噬、杀伤阿萨希毛孢子菌的实验研究[D];安徽医科大学;2012年
,本文编号:560706
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/yiyaoxuelunwen/560706.html