玉竹多糖的提取工艺优化、结构表征及抗氧化活性的研究

发布时间：2021-08-12 18:27

　　为了更好地开发利用玉竹,在单因素实验的基础上,利用响应面法对玉竹多糖（PORPs）的提取工艺进行优化,并对PORPs的化学组成、结构及体外抗氧化特性进行研究。获得的PORPs最优提取工艺条件为:提取温度71 ℃,液料比40.23 mL/g,提取时间1.14 h,此时多糖的提取率达到（5.61±0.12）%。PORPs的化学组成为:总糖含量（76.26±1.53）%,蛋白含量（0.21±0.09）%,糖醛酸含量2.27%。单糖组成为甘露糖（Man）:葡萄糖醛酸（GlcA）:半乳糖醛酸（GalA）:葡萄糖（Glc）:阿拉伯糖（Ara）:岩藻糖（Fuc）=18.30:0.81:1.46:41.83:1.53:1.06。红外光谱的结果表明,PORPs是一种含有羧基、β型糖苷键、吡喃环结构的多糖。原子力显微镜结果表明,PORPs呈圆顶形颗粒状,直径范围在70～240 nm。扫描电镜图显示,PORPs通过聚集呈现出致密、光滑、带褶皱的片状结构。此外,PORPs展示出了一定的体外抗氧化活性,其中对羟基自由基的清除率达到了（41.98±2.10）%。这项研究对PORPs的开发利用具有理论指导意义。 

【文章来源】：食品科技. 2020,45(07)北大核心

【文章页数】：9 页

【部分图文】：

不同条件对玉竹多糖提取率的影响

研究对PORPs中的化学组成进行了分析。PORPs中多糖含量为(73.26±1.53)%,蛋白质含量为(0.21±0.09)%,其余组分可能为色素和无机盐等物质。此外,本研究采用PMP柱前衍生法对PORPs的单糖组成进行了测定。如图5所示,对照混标的液相色谱图表明,PORPs为主要由Man、GlcA、GalA、Glc、Ara、Fuc组成的杂多糖,摩尔占比分别为18.30%、0.81%、1.46%、41.83%、1.53%和1.06%。此外,PORPs中糖醛酸含量为2.27%。王强等提取的玉竹多糖单糖组成为Man:Glu=5:1,同时含有少量的半乳糖[11],与本次实验结果的差异性可能是原料产地不同以及提取纯化方法不同所导致的。图3 液料比和提取时间的响应面及等高线图

2.5 PORPs三股螺旋结构的测定研究采用刚果红法检测PORPs是否具有三股螺旋结构。如图7所示,在低浓度的氢氧化钠环境中,阳性对照昆布多糖和刚果红溶液的最大吸收波长发生了明显的红移,表明两者形成络合物,随着氢氧化钠浓度的增加,昆布多糖和刚果红溶液的最大吸收波长红移程度降低,表明形成的络合物发生解旋。结果显示,在低浓度NaOH溶液条件下,PORPs溶液的最大吸收波长低于刚果红溶液最大吸收波长,没有发生红移,所以PORPs不具有昆布多糖典型的三股螺旋结构。

【参考文献】：
期刊论文
[1]苯酚-硫酸法与蒽酮-硫酸法测定地参多糖的比较研究[J]. 杨勤,谷文超,周浓,张兰胜,杨德全.  食品科技. 2020(01)
[2]玉竹多糖分离纯化、理化性质及抗氧化功能[J]. 宗鑫妍,徐德昌,聂少平,殷军艺,谢明勇.  南昌大学学报(理科版). 2019(01)
[3]香菇多糖提取动力学模型研究[J]. 赵凯,牛会平,侯建平,秦智乔,杨文.  河北师范大学学报(自然科学版). 2019(01)
[4]玉竹多糖的结构及其生物活性研究进展[J]. 余江南,姜慧妍,徐遥,徐希明.  现代食品科技. 2018(08)
[5]玉竹多糖的组成及其体外抗氧化活性研究[J]. 李耀光,曹珂,罗灿选.  食品工业. 2018(05)
[6]玉竹化学成分与药理作用研究进展[J]. 李妙然,秦灵灵,魏颖,徐暾海,刘铜华.  中华中医药学刊. 2015(08)
[7]玉竹多糖的研究进展[J]. 许丽丽,展晓日,曾昭武,王淑玲,谢恬.  中药材. 2011(01)
[8]抗坏血酸清除DPPH自由基的作用机理[J]. 李铉军,崔胜云.  食品科学. 2011(01)
[9]玉竹中性多糖的分离纯化及单糖组成分析[J]. 王强,李盛钰,杨帆,刘春明.  食品科学. 2010(15)
[10]多糖结构研究的方法和进展[J]. 阳佛送,李雪华.  食品科技. 2008(03)

博士论文
[1]抗氧化活性茶多糖构效关系研究[D]. 艾于杰.华中农业大学 2019
[2]桑葚多糖的结构鉴定、活性评价及其体外消化酵解[D]. 陈春.华南理工大学 2018

硕士论文
[1]辣木叶多糖的分离纯化、结构表征及免疫活性研究[D]. 董竹平.华南理工大学 2018



本文编号：3338843