茶树黄化品种‘白鸡冠’色素及游离氨基酸特异性状的QTL定位
【学位授予单位】:中国农业科学院
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2018
【分类号】:S571.1
【图文】:
学院硕士学位论文 第二章 SNP 遗传图谱的构建入 4ul RNase A,37℃水浴 30min,降解 RNA,10000rpm 离心 5min,收集上清新的离心管;入等体积氯仿:苯酚:异戊醇(25:24:1)上下混匀,然后 10000rpm 离心 10mi集上清至新的离心管中入 2 倍体积的无水乙醇,混匀沉淀 DNA,4000rpm 离心 3min,去除上清;0%乙醇溶液洗涤 2-3 次,将离心管放置于通风出让其自然烘干;入 200ul ddH2O 溶解 DNA;取完成后,使用 ND-1000 UV-Vis 微量紫外分光光度计测定 DNA 浓度,1%的琼凝胶电泳检测 DNA 质量,至于-20℃保存备用。
通过高通量测序的手段,完成对 SNP 分子标记的发掘与构建(Van et a; Huang et al., 2009)。由诺禾致源生物信息科技有限公司完成 SNP 标记的开发,通过对的 166 个子代单株及亲本进行测序,得到 SNP 分子标记及基因分型结果。具体实验流下:3.1 GBS 文库构建及测序根据研究目的以及对茶树特性的分析,选用适当的酶切组合,首先使用限制性内切酶对基因组进行酶切,之后加上带有 barcode 的接头后,对每个样品进行扩增,最后对样品混合,选择需要的片段进行文库构建,利用 Illumaina HiSeq 测序平台,进行双末端ired-End)150 测序(Li et al.,2009)(图 2-2),具体方法如下:(1) 酶切:对 0.1-1ug 的茶树基因组 DNA 使用限制性内切酶进行酶切,以得到适合的 marker 密度;(2) 加 P1 和 P2 接头:酶切后的片段两端分别加 P1 和 P2 Adapter(与酶切 DNA 缺口互补);(3) 片断选择:PCR 扩增两端分别含有 P1和 P2接头的 tag序列,DNA 片段 pooling电泳回收需要区间的 DNA;(4) 高通量测序:Cluster 制备,上机测序。
连锁群标记分布图
【参考文献】
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本文编号:2759085
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