原子力显微镜在食源性蛋白质纳米纤维结构分析中的应用研究
【学位单位】:上海海洋大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:TS201.21
【部分图文】:
图 1-1 胶原酶降解胶原纤维的高速 AFM 原位成像(a)该过程的高度图像序列。标记 C 和 N的实线表示胶原纤维的极性。带有线条的绿色圆圈代表胶原蛋白上的单个胶原酶分子。时间表示添加胶原酶后经过的时间。Bar 为 50 nm; (b) (a)中突出区域的波动曲线记录仪,(c)对应于(a,b)中标记的纤维数量相对应的单个最小纤维厚度的时间进程,虚线框的(蓝色)或(绿色)对应与(a)中单个纤维上的胶原酶累积运行长度;(d)连续的高速 AFM 原位高度图像,显示了在胶原酶分子(圆形)作用下,最小原纤维(箭头)的消失。Bar 为 20nm;扫描速率均为 0.3秒/帧;所有的 z-标度都是 5nm。经引用许可转载自参考文献(Watanabe Nakayama 等人,2016)Fig 1-1 In situ high speedAFM imaging of minimal collagen fibril degradation by collagenase.(a) Height image sequence of this process. The solid line with labels of C and N indicated collagenfibril polarity. Green circles with lines represent individual Collagenase molecules on collagen. Thetimes indicated the elapsed times after the addition of collagenase. Bar was 50 nm; (b) Kymographfor the region highlighted in (a). (c) Time courses of thicknesses of individual minimal fibrilscorresponding to the number-labed fibrils in (a,b), with accumulated collagenase run length onindividual fibrils within (blue) or including the outside (green) of the dashed-line box in (a). (d)Successive in situ high speedAFM height images of disappearance of a minimal fibril (arrowhead)
图 1-3AFM 对蛋糕中麦醇溶蛋白和谷蛋白的观察;(a)麦醇溶蛋白聚集体的 AFM 图像;(b)麦醇溶蛋白聚集体的大小分布,在每个尺寸范围内,字母不同的组有显著差异(P<0.05);(c)传统蛋糕和无蛋蛋糕中谷蛋白的多孔结构(d)SPI + 0.1%XN(e)SPI + 1%MDG(f)SPI +1%SL(g)SPI + 0.1%XN + 1%MDG(h)SPI + 0.1%XN + 1%SL;SPI-大豆分离蛋白;XN-黄原胶;MDG-单甘油酯;SL-大豆卵磷脂。经引用许可转载(Lin,et al.2017b)(版权所有 2017爱思唯尔出版社)Fig 1.3 AFM observation of gliadin and glutenin in cakes. (a) AFM image of gliadin aggregates;(b) Size distribution of gliadin aggregates. Within each size range, groups with different letters aresignificantly different (P < 0.05). Porous structures of glutenin in (c) traditional cake and egglesscakes with (d) SPI + 0.1% XN, (e) SPI + 1% MDG, (f) SPI + 1% SL, (g) SPI + 0.1% XN + 1% MDG,(h) SPI + 0.1% XN + 1% SL. SPI soy protein isolate; XN xanthan gum; MDG mono,diglycerides; SL soy lecithin. Reprinted with permission of reference. (Copyright 2017 ElsevierPublisher)AFM 结果表明,蛋糕配方主要包含了麸朊聚集体,其直径范围在 100-200nm,
图 1-4 纯乳清分离蛋白膜(A, B)和乳清分离蛋白-玉米醇溶蛋白纳米颗粒膜的 AFM 相位成像。经引用许可转载(版权所有 2016 爱思唯尔出版社)Fig 1-4AFM phase images of pure WPI film (A, B) and WPI-zein nanoparticle film (C, D).Adapted with permission of reference. (Copyright 2016 Elsevier Publisher)1.6.4 食品蛋白加工及保存效果研究了解不同加工和保存条件对食品蛋白的影响,对于开发食品加工和保存的新技术、新方法具有重要意义。AFM 可用于加热、冷冻干燥、高压等不同物理处理条件下食品蛋白质的观察。为验证乳糖糖基化乳清分离蛋白膜的分散性,图 5 是Liu 等人[28]在 pH3-7 条件下,运用 AFM 轻敲模式对加热前后乳糖糖化的乳清分离蛋白膜进行的研究,高度图像显示了其分散的纳米结构,在 pH4-6 条件下加热后的样品比 pH3 和 pH7 条件下的样品更粗、更大。该研究证明 AFM 纳米成像可用于分析复杂加工条件对食品蛋白质的影响。朱等运用 AFM 研究了大豆分离蛋白(SPI)和乳清蛋白的热诱导聚集,结果表明热可以诱导纳米粒子的形成,此外,热诱导的大豆分离蛋白纳米颗粒的粒径比乳清蛋白大。运用 AFM 观察大豆分离蛋白(SPI)在液氮冷冻和冷冻干燥后的变化,发现大豆分离蛋白膜表面光滑,空腔
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本文编号:2810983
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