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珍稀濒危植物独叶草SCoT-PCR反应体系的建立与优化

发布时间:2021-09-23 21:33
  采用正交设计法对影响珍稀濒危植物独叶草SCoT-PCR反应体系的主要因素进行优化,建立最佳的独叶草SCoT-PCR反应体系,并利用36份种质进行了验证。结果表明:在独叶草SCoT-PCR的最优反应体系(25 μL)中:Mg2+为1.5 μL、dNTPs为1.50 μL、Taq酶为0.3 μL、Primer为1.2 μL、DNA为3.0 μL。建立的SCoT-PCR反应体系可用于该植物的遗传多样性和居群结构研究。 

【文章来源】:种子. 2020,39(04)北大核心

【文章页数】:5 页

【部分图文】:

珍稀濒危植物独叶草SCoT-PCR反应体系的建立与优化


部分样品基因组DNA的电泳结果

独叶草,基因组DNA,电泳,体系


独叶草SCoT-PCR体系优化的扩增结果

曲线,反应体,独叶草,引物


反应体系的稳定性影响到后续实验。因此,对优化的体系进行验证有其必要。实验结果(图4)表明:在优化而得的体系中,36份独叶草样品均能扩增出数量不同、清晰适中、分散性好的条带,而且条带的多态性丰富。扩增条带数大多为2~4条,片段大小大多介于750~2 000 bp之间。这表明,试验所建立的独叶草SCoT-PCR最佳反应体系的效果好、稳定性高,可用于后续的种质资源遗传多样性评价,亲缘关系和遗传结构等方面的研究。图4 最佳反应体系的验证

【参考文献】:
期刊论文
[1]彩叶芋SCoT反应体系的建立与优化[J]. 王俏君,李瑞,欧晓梅,何雪,李想,李名扬,眭顺照.  分子植物育种. 2018(17)
[2]辣木SCoT-PCR反应体系建立和引物筛选[J]. 林艺华,郑涛,蔡坤秀,林宗铿.  分子植物育种. 2018(13)
[3]基于SCoT标记的山西五角枫遗传多样性分析[J]. 张若晨,陈东莉,王良民.  北方园艺. 2018(12)
[4]美花石斛SSR-PCR体系的优化研究[J]. 张文龙,石春杰.  种子. 2018(04)
[5]贵州金荞麦种质资源遗传多样性ISSR研究[J]. 邓蓉,王安娜,张定红,向清华.  种子. 2018(01)
[6]基于SSR标记的贵州野生白三叶遗传多样性分析[J]. 李莉,吴永洁,王元素.  种子. 2017(11)
[7]濒危植物独叶草的研究进展[J]. 谢计平.  安徽农业科学. 2017(06)
[8]粉枝莓SCoT分子标记的PCR反应体系建立[J]. 袁雷,刘瑜,钟政昌,解博,曹东星.  北方园艺. 2017(03)
[9]枸杞种质遗传多样性SCoT分析[J]. 杨辉,周旋,王学琴,康磊,梅杰,杨剑.  北方园艺. 2017(02)
[10]基于MaxEnt濒危植物独叶草的中国潜在适生分布区预测[J]. 徐军,曹博,白成科.  生态学杂志. 2015(12)

博士论文
[1]太白山独叶草的小尺度分布成因及其克隆结构、遗传多样性研究[D]. 张晨光.西北大学 2018

硕士论文
[1]珍稀濒危药用植物独叶草组织培养与内生菌分离研究[D]. 姬文帅.陕西师范大学 2010
[2]太白山北坡资源斑块与独叶草种群分布耦合研究[D]. 刘喆.西北大学 2008
[3]濒危植物独叶草(毛茛科)的传粉生物学及繁育系统研究[D]. 贺海霞.陕西师范大学 2006
[4]濒危植物独叶草种群生殖生态学研究[D]. 李红.西北农林科技大学 2001



本文编号:3406454

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