香椿组培细胞的激素效应及成年叶黄酮分布的测定分析
发布时间：2021-06-08 17:06
本课题以香椿为实验研究对象,探究了不同激素作用下对香椿组织培养、愈伤诱导、活性物质含量及同工酶活性与酶谱的影响,同时又对红、黑和青油椿树干不同部位成年叶中黄酮物质含量分布进行测定分析。1.通过培养基的选择和不同植物激素的配比,筛选出高效生根和芽增殖培养基以及利于芽苗健壮培养的激素培养基。结果发现:WPM较MS和1/2MS培养基更利于香椿组培苗生长,最佳生根激素培养基为MS+IBA0.5mg/L+NAA0.25 mg/L,此时组培苗生根率为86.7%;赤霉素浓度适当提高后利于丛生芽增殖,最佳增殖激素组合及浓度为在MS培养基中加入1.0mg/L6-BA,0.1mg/LNAA和0.5 mg/LGA3,此时统计得到丛生芽增殖倍数达5.9倍,而在对生根组培苗进行壮苗培养时,在MS+1.0mg/L KT+0.1mg/L NAA+0.5mg/L GA3+0.5g/L AC激素培养基中培养出的组培苗茎段粗壮,叶片墨绿,生长旺盛,进一步壮芽培养时发现6-BA与IAA组合后效果优于与NAA组合,在6-BA浓度为2.0mg/L,IAA浓度为0.05mg/L时,丛生...
【文章来源】：阜阳师范大学安徽省
【文章页数】：95 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
MS和1/2MS培养基中最佳生根试验现象图
第2章激素配比与组培苗培育体系建立18丛生芽叶片鲜绿，长势旺盛，图2.2为组培苗茎段在编号GA3-2激素培养基丛生芽诱导过程中，不同培育时间段中丛生芽生长情况。图2.2丛生芽在最适培养基中芽增殖的生长过程Figure2.2Thegrowthprocessofbudproliferationofclusterbudsintheoptimalmedium从图2.2中可以观察到，组培苗茎段或单个芽头经过丛生芽增殖培养基诱导20天后，出现少量浅黄色丛生芽，进一步延长培育时间后，丛生芽增多；70天后长出多个生命力旺盛的丛生芽；90天后，丛生芽进一步增多并且长势强健，叶片颜色变为绿色或深绿色；110天后，丛生芽进一步生长，部分叶片出现轻微卷曲。2.2.4壮苗与壮芽培养基选择（1）生根组培苗壮苗培养：经过生根培养基培育后的组培苗，经过剪切，在①MS+1mg/LKT+0.1mg/LNAA+0.1mg/LGA3+0.5g/LAC，②MS+1mg/LKT+0.1mg/LNAA+0.5mg/LGA3+0.5g/LAC，③MS+1.0mg/LKT+0.1mg/LNAA+1.0mg/LGA3+0.5g/LAC这三种激素培养基培养3个月后，结果发现这三组培养基培养出的植株茎段长势强盛，茎段粗健，随着GA3浓度提高至1.0mg/L时，茎段出现明显弯曲，原因可能是在培养基中添加GA3达到一定浓度时，植物下胚轴会表现出向光性不对称生长[30]。从试验现象来看。如图2.3所示，当GA3添加量为0.5mg/L时，即在
阜阳师范大学硕士学位论文19MS+1.0mg/LKT+0.1mg/LNAA+0.5mg/LGA3+0.5g/LAC培养基中，植株生长效果较好，此时叶片较大，色泽深绿，长势强健，有很好的壮苗效果。图2.3KT与NAA、GA3对组培苗长势的影响Figure2.3TheeffectofKT,NAA,GA3onthegrowthofsterileseedlings注：以上三组图片均为植株生长90天后图。其中编号1：GA3浓度为0.1mg/L；编号2：GA3浓度为0.5mg/L；编号3：GA3浓度为1.0mg/LNote:theabovethreegroupsofpicturesareallafter90daysofplantgrowth.No.1:GA3concentrationwas0.1mg/L;No.2:GA3concentrationwas0.5mg/L;No.3:GA3concentrationwas1.0mg/L.在试验过程中发现，选择接种的材料越靠近植株的上部并且腋芽生命力旺盛时，植株在转接后生长速度越快，在培养基中根分化速度也加快，同时随着GA3浓度增加，茎段弯曲现象更加明显，如编号3图中出现的现象，如果选择接种的茎段位于茎段靠下部位，转接后茎段弯曲现象不明显。（2）6-BA与NAA/IAA组合后对丛生芽形态影响：
【参考文献】：
期刊论文
[1]不同浓度6-BA对白芨丛芽诱导的影响[J]. 李云海,黑有兰,陈丽华. 现代农业科技. 2019(15)
[2]NAA、6-BA和KT对烟草叶片不定芽和不定根分化的影响[J]. 张凌云,孙娟,刘艳秋. 生物学通报. 2019(03)
[3]香椿不同部位药理作用研究[J]. 赵天会. 吉林农业科技学院学报. 2018(04)
[4]不同浓度6-BA对非洲菊丛芽诱导培养的影响[J]. 李云海,段丽艳,陈丽华. 现代农业科技. 2018(20)
[5]香椿种子无菌苗再生体系的建立[J]. 杨超臣,张婷,朱天然,曹丽仙,李建安. 经济林研究. 2018(03)
[6]香椿组培增殖和生根培养基筛选[J]. 高鷃铭,肖祥希,王志洁,张海燕,何文广,高楠,肖华山. 福建林业科技. 2018(02)
[7]香椿人工栽培管理技术[J]. 范常明. 现代园艺. 2018(06)
[8]IAA改善PEG处理下白三叶幼苗叶片抗氧化保护和渗透调节能力[J]. 李亚萍,彭燕. 草业科学. 2017(11)
[9]比色法测定人参皂苷含量的方法探讨[J]. 杜月,陈新梅. 化工时刊. 2016(09)
[10]香椿育苗栽培技术概要[J]. 杨小棠. 绿色科技. 2016(11)
博士论文
[1]不同种源香椿抗性机理及综合评价[D]. 杨玉珍.南京林业大学 2008
硕士论文
[1]龙井43号茶树PPO同工酶I-1的分离纯化与性质研究[D]. 徐小云.华中农业大学 2016
[2]中药香椿叶化学成分的分离与分析[D]. 顾芹英.江苏大学 2016
[3]茶叶多酚氧化酶同工酶分离鉴定及其酶促合成茶黄素研究[D]. 滕杰.湖南农业大学 2015
[4]香椿老叶中黄酮与皂苷的提纯鉴定与应用研究[D]. 宛红颖.天津科技大学 2013
[5]不同激素种类和配比对杜梨组培继代苗愈伤组织发生及状态的影响[D]. 李本波.河北农业大学 2010
[6]香椿T4品系组培快繁技术研究[D]. 马勤.西北农林科技大学 2006
本文编号：3218839
【文章来源】：阜阳师范大学安徽省
【文章页数】：95 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
MS和1/2MS培养基中最佳生根试验现象图
第2章激素配比与组培苗培育体系建立18丛生芽叶片鲜绿，长势旺盛，图2.2为组培苗茎段在编号GA3-2激素培养基丛生芽诱导过程中，不同培育时间段中丛生芽生长情况。图2.2丛生芽在最适培养基中芽增殖的生长过程Figure2.2Thegrowthprocessofbudproliferationofclusterbudsintheoptimalmedium从图2.2中可以观察到，组培苗茎段或单个芽头经过丛生芽增殖培养基诱导20天后，出现少量浅黄色丛生芽，进一步延长培育时间后，丛生芽增多；70天后长出多个生命力旺盛的丛生芽；90天后，丛生芽进一步增多并且长势强健，叶片颜色变为绿色或深绿色；110天后，丛生芽进一步生长，部分叶片出现轻微卷曲。2.2.4壮苗与壮芽培养基选择（1）生根组培苗壮苗培养：经过生根培养基培育后的组培苗，经过剪切，在①MS+1mg/LKT+0.1mg/LNAA+0.1mg/LGA3+0.5g/LAC，②MS+1mg/LKT+0.1mg/LNAA+0.5mg/LGA3+0.5g/LAC，③MS+1.0mg/LKT+0.1mg/LNAA+1.0mg/LGA3+0.5g/LAC这三种激素培养基培养3个月后，结果发现这三组培养基培养出的植株茎段长势强盛，茎段粗健，随着GA3浓度提高至1.0mg/L时，茎段出现明显弯曲，原因可能是在培养基中添加GA3达到一定浓度时，植物下胚轴会表现出向光性不对称生长[30]。从试验现象来看。如图2.3所示，当GA3添加量为0.5mg/L时，即在
阜阳师范大学硕士学位论文19MS+1.0mg/LKT+0.1mg/LNAA+0.5mg/LGA3+0.5g/LAC培养基中，植株生长效果较好，此时叶片较大，色泽深绿，长势强健，有很好的壮苗效果。图2.3KT与NAA、GA3对组培苗长势的影响Figure2.3TheeffectofKT,NAA,GA3onthegrowthofsterileseedlings注：以上三组图片均为植株生长90天后图。其中编号1：GA3浓度为0.1mg/L；编号2：GA3浓度为0.5mg/L；编号3：GA3浓度为1.0mg/LNote:theabovethreegroupsofpicturesareallafter90daysofplantgrowth.No.1:GA3concentrationwas0.1mg/L;No.2:GA3concentrationwas0.5mg/L;No.3:GA3concentrationwas1.0mg/L.在试验过程中发现，选择接种的材料越靠近植株的上部并且腋芽生命力旺盛时，植株在转接后生长速度越快，在培养基中根分化速度也加快，同时随着GA3浓度增加，茎段弯曲现象更加明显，如编号3图中出现的现象，如果选择接种的茎段位于茎段靠下部位，转接后茎段弯曲现象不明显。（2）6-BA与NAA/IAA组合后对丛生芽形态影响：
【参考文献】：
期刊论文
[1]不同浓度6-BA对白芨丛芽诱导的影响[J]. 李云海,黑有兰,陈丽华. 现代农业科技. 2019(15)
[2]NAA、6-BA和KT对烟草叶片不定芽和不定根分化的影响[J]. 张凌云,孙娟,刘艳秋. 生物学通报. 2019(03)
[3]香椿不同部位药理作用研究[J]. 赵天会. 吉林农业科技学院学报. 2018(04)
[4]不同浓度6-BA对非洲菊丛芽诱导培养的影响[J]. 李云海,段丽艳,陈丽华. 现代农业科技. 2018(20)
[5]香椿种子无菌苗再生体系的建立[J]. 杨超臣,张婷,朱天然,曹丽仙,李建安. 经济林研究. 2018(03)
[6]香椿组培增殖和生根培养基筛选[J]. 高鷃铭,肖祥希,王志洁,张海燕,何文广,高楠,肖华山. 福建林业科技. 2018(02)
[7]香椿人工栽培管理技术[J]. 范常明. 现代园艺. 2018(06)
[8]IAA改善PEG处理下白三叶幼苗叶片抗氧化保护和渗透调节能力[J]. 李亚萍,彭燕. 草业科学. 2017(11)
[9]比色法测定人参皂苷含量的方法探讨[J]. 杜月,陈新梅. 化工时刊. 2016(09)
[10]香椿育苗栽培技术概要[J]. 杨小棠. 绿色科技. 2016(11)
博士论文
[1]不同种源香椿抗性机理及综合评价[D]. 杨玉珍.南京林业大学 2008
硕士论文
[1]龙井43号茶树PPO同工酶I-1的分离纯化与性质研究[D]. 徐小云.华中农业大学 2016
[2]中药香椿叶化学成分的分离与分析[D]. 顾芹英.江苏大学 2016
[3]茶叶多酚氧化酶同工酶分离鉴定及其酶促合成茶黄素研究[D]. 滕杰.湖南农业大学 2015
[4]香椿老叶中黄酮与皂苷的提纯鉴定与应用研究[D]. 宛红颖.天津科技大学 2013
[5]不同激素种类和配比对杜梨组培继代苗愈伤组织发生及状态的影响[D]. 李本波.河北农业大学 2010
[6]香椿T4品系组培快繁技术研究[D]. 马勤.西北农林科技大学 2006
本文编号：3218839
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