白菜黄化突变基因lcm136的定位

发布时间：2021-11-24 03:37

　　白菜（Brassica rapa ssp.pekinensis）是东亚地区重要的蔬菜作物。白菜叶片既是该作物的主要食用器官,也是其主要的光合器官。叶色突变体是研究植物光合色素代谢、细胞核-细胞质互作的重要资源。在白菜DH系（编号136）的自交繁殖后代中,鉴别出1份叶片黄化突变体（编号M136）。本文分析了黄化突变体和野生型的光合生理、叶绿体超微结构,初步定位了黄化突变基因,并分析了野生型和突变体M136的叶片转录组差异。具体探究结果如下:1.经鉴定,M136是一个苗期黄化突变体,子叶为正常绿色,幼嫩真叶为金黄色,随着叶片生长,叶片逐渐返绿。待商品成熟时,整株叶片完全变为绿色。2.检测发现,M136黄叶总叶绿素含量显著低于野生型,返绿后两者差异不显著,最终野生型和突变体商品干重无显著性差异。M136黄叶净光合速率显著低于野生型136,返绿后两者差异不显著。叶绿素荧光参数分析突变体M136叶绿素传递电子能力较弱,同时,其叶绿体存在缺陷,看不到完整类囊体结构,返绿后叶绿体功能正常,形态略小。3.遗传分析表明,M136叶片黄化性状由单隐性核基因（lcm136）控制。利用大白菜DH系FT（叶片为... 

【文章来源】：沈阳农业大学辽宁省

【文章页数】：73 页

【学位级别】：硕士

【部分图文】：

图２－１野生型１３６与突变体Ｍ１３６生长期变化示意图（左为野生型，右为突变体）??Ｆｉｇ．２－１?Ｇｒｏｗｔｈ?ｐｅｒｉｏｄ?ｃｈａｎｇｅｓ?ｏｆ?１３６?ａｎｄ?Ｍ１３６?（Ｗｉｌｄ?ｔｙｐｅ?ｏｎ?ｔｈｅ?ｌｅｆｔ，?ｍｕｔａｎｔ?ｏｎ?ｔｈｅ?ｒｉｇｈｔ）??

?沈阳农业大学硕士学位论文???＿＾＾觀靈??霸鼷??图２－２局部Ｆ２代分离群体示意图??Ｆｉｇ．２－２?Ｓｃｈｅｍａｔｉｃ?ｄｉａｇｒａｍ?ｏｆ?ｌｏｃａｌ?ｓｅｃｏｎｄ?ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ?Ｓｅｐａｒａｔｉｏｎ?Ｇｒｏｕｐ??２．１．２试验方法??２．１．２．１突变体Ｍ１３６与野生型１３６乎重测量??催芽播种：２０１９年９月上旬将前期繁冒的Ｍ１３６与野生型的种子进行催芽处理，用??装好清水润湿启的滤纸的培养皿各盛３００粒Ｍ１３６与野生型种子，将种子均匀分散在培??养皿中，用喷壶适当撒一些水，以将倾斜培养皿后没有水溢出为标准，之后放在避光处??进行催芽６兰天后，将其播种于基地的育苗钵中，常规管理。??取样测董ｉ从４叶期开始，进行地上部分干童测釐＾每５天进行一次取样，持续６０??天，每次各取５棵幼苗，３次重复，样品用容器装好，放入８０°Ｃ的烘干箱中处理２４ｈ６??测干熏用到电子天平，天平的显示即为干重数据，取小数点后两位，记录本整理记录实??验数据，用ＳＰＳＳ软件方差分析，判断显著性，绘制干重变化折线图＾??２．１．２．２突变体Ｍ１３６与野生型１３６光合色素测量??由于Ｍ１３６会发生返绿的现象，所以分别在４叶时期及第４５天（此时己经完全返??绿）这两个时间点，对Ｍ１３６和野生型（心叶）进行取样，设置３次重复《对所得Ｍ１３６??和野生型的叶片进行剔除叶脉处理，处理好的叶片称畺Ｏ．ｌｇ用于后续实验。提前将研钵??用酒精浸泡后晾干，锡纸包裹处理，放入１８０°Ｃ烘干箱中２４ｈ灭菌并配制好需要用到的??提取液，８０％乙醇丙酮混合液。将称量好的叶片放入灭好的钵中完全捣碎，使细胞破碎??释放色素。将研磨好的物质装入盛有ｌ

株己经彻底变??为绿色。黄化时期的Ｍ１３６幼苗于熏明显低于野生型，而随着Ｍ１３６植株返绿，两者之??间的予重差距也在逐渐缩校在最后两次测暈时，在于重数值上，Ｍ１３６植株几乎和野??生型相同＞?６０天内Ｍ１３６和野生型植株干重变化折线匿２－３如下所示。??－＊＞—Ｍ１３６??２５．００?—＾１３６??２０．００?－??＾１５〇°?■??＿??Ｈ－?ｌｏ．ｏｏ?－?／／??０．００?＾?????１?２?３?４?５?６?７?８?９?１０?１１?１２??测量次数??图２－３突变体Ｍ１３６与野生型１３６干重变化曲线??Ｆｉｇ．２－３?Ｖａｒｉａｔｉｏｎ?ｃｕｒｖｅ?ｏｆ?ｄｒｙ?ｗｅｉｇｈｔ?ｂｅｔｗｅｅｎ?Ｍ１３６?ａｎｄ?１３６??２．２．２突变体Ｍ１３６与野生型１３６光合色素分析??如表格２－１内容所示。４叶期黄化突变体样品记作Ｍ１３６，返绿后记作Ｍ１３６’。两个??时间点的野生型，分别记作１３６和１３６’。在４叶期，Ｍ１３６黄化叶片叶绿素ａ的含暈远??１３??


本文编号：3515152