当前位置:主页 > 医学论文 > 传染病论文 >

吉西他滨促进HepG2.2.15细胞系中乙肝病毒pgRNA转录和病毒复制及相关分子机制研究

发布时间:2020-11-09 05:21
   目的:探讨吉西他滨对HepG2.2.15细胞中乙肝病毒前基因组RNA(pregenomic RNA,pgRNA)转录以及乙肝病毒复制的影响及其可能的作用机制。方法:使用不同浓度吉西他滨处理HepG2.2.15细胞,分别使用CCK-8法、流式细胞术、实时定量聚合酶链式反应(real-time polymerase chain reaction,RT-PCR)、酶联免疫吸附测定(enzyme-linked immuno sorbent assay,ELISA)法检测细胞活性、细胞凋亡、细胞周期、细胞内乙肝病毒pgRNA、细胞培养上清液中乙型肝炎表面抗原(hepatitis B surface antigen,HBsAg)、乙型肝炎e抗原(hepatitis B e antigen,HBeAg)、乙肝病毒DNA(hepatitis B virus DNA,HBV DNA);实时定量PCR法检测吉西他滨作用下HepG2.2.15细胞中与pgRNA转录有关的调控基因肝细胞核因子4α(hepatocyte nuclear factor4,HNF4α)、P38蛋白激酶(P38 mitogen-activated protein kinase,P38MAPK)、环磷酸腺苷效应元件结合蛋白1(CAMP responsive element binding protein 1,CREB1)、核转录因子p65(nuclear factor-kappa B p65,NF-κb p65)、组蛋白去乙酰化酶1(histone deacetylase 1,HDAC1)、过氧化物酶体增殖物激活受体γ辅助激活因子-1α(peroxisome proliferator-activated receptor gamma coactivator 1-alpha,PGC-1α)、叉头转录因子O1(forkhead box protein O1,FOXO1)、相关调控基因沉默信息调节因子2相关酶1(sirtuin 1,SIRT1)、P53 mRNA水平以及pgRNA的表达量,分析这些基因随吉西他滨浓度变化与pgRNA随浓度变化的相关性,找出与pgRNA变化相关性最高的基因,并使用Western blot在蛋白质水平验证吉西他滨对此基因蛋白质表达量的影响。结果:吉西他滨对HepG2.2.15细胞的生长显示出浓度以及剂量依赖性的抑制作用;吉西他滨使细胞凋亡率增高;吉西他滨使细胞更多的细胞停滞在G_0G_1期,而处于S期细胞比例降低;吉西他滨明显增加HepG2.2.15细胞内乙肝病毒pgRNA,72 h之内呈现明显的时间与剂量依赖性;吉西他滨作用细胞24 h会使细胞培养上清液中的HBeAg增加;吉西他滨促进HNF4αmRNA、HNF4α蛋白质表达量增加,且在所检测的与乙肝病毒转录调节有关的基因中,HNF4αmRNA变化趋势与HBV pgRNA变化趋势相关性最高。结论:吉西他滨可在细胞水平促进乙肝病毒pgRNA转录以及乙肝病毒的复制,其机制为通过促进乙肝病毒转录因子HNF4α的表达实现的。
【部分图文】:

吉西他滨,乙肝,病毒


24、48、72 h时吉西他滨明显增加HepG2.2.15细胞中的乙肝病毒pgRNA(与各自的对照组相比,24 h时2、20、50μmol/L吉西他滨组的P值分别为0.005、0.001、0.006;48 h时P值分别为0.004、0.000、0.024;72 h时P值分别为0.003、0.003、0.001),吉西他滨导致的乙肝病毒pgRNA的增加呈明显的时间以及剂量依赖性。当药物作用于HepG2.2.15细胞96 h,乙肝病毒pgRNA增加的幅度不再明显(P值分别为0.026、0.117、0.092),增加幅度在96 h时无时间依赖性(表5、图1)。2.6 吉西他滨对乙肝病毒pgRNA相关的转录调控因子m RNA的影响以及各基因m RNA变化与pg RNA变化的相关性分析

趋势图,途径,趋势,吉西他滨


不同浓度的吉西他滨作用于HepG2.2.15细胞48 h,检测乙肝病毒pgRNA以及各pgRNA转录调控基因mRNA的表达量,使用相邻两浓度乙肝病毒pgRNA表达量的差值、各相关调控基因mRNA表达量的差值进行相关性分析。结果显示(图2、图3、图4),在所有3个途径的9个与pgRNA的转录调控相关的基因中,随着吉西他滨浓度的变化,HNF4αmRNA的变化趋势与pgRNA的变化趋势相关性最高(r=0.934,P=0.020),其余基因mRNA变化趋势与pgRNA变化趋势相关性不显著(均P>0.05)。2.7 吉西他滨对HepG2.2.15细胞中HNF4α蛋白表达量的影响

趋势图,途径,趋势,相关性


除最大浓度的100μmol/L外,与对照组相比,所有浓度的吉西他滨均会导致HepG2.2.15细胞中HNF4α蛋白的表达量增加(表7、图5)。图4 途径三(去乙酰化酶HDAC1、SIRT1途径)mRNA变化趋势与pgRNA变化趋势的相关性
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 李桂秋;陈淑兰;崔兰英;赵金英;罗文涛;路娟;;HepG2.2.15细胞中siRNA与拉米夫定抗乙型肝炎病毒复制作用的比较[J];中国临床药理学与治疗学;2010年07期

2 王建;沈中阳;宋红丽;郑卫萍;宋晓静;;他克莫司在体外对HepG2.2.15细胞增殖及乙型肝炎病毒复制的影响(英文)[J];中国组织工程研究与临床康复;2011年53期

3 朱锦宏;王春苗;吴红;林梅双;朱雪莲;吴茂锋;吴晓蔓;;乙型肝炎病毒X基因siRNA对HepG2.2.15细胞的影响[J];实用医学杂志;2016年13期

4 严景妍;林路平;艾香英;谢敏;谭行华;;黄芪联合恩替卡韦对HepG2.2.15细胞JAK-STAT通路的影响[J];江西中医药大学学报;2017年03期

5 杨伟;赵超;李婧;丁扬;王雪;;恩替卡韦和干扰素序贯作用对HepG2.2.15细胞HBV DNA复制的影响[J];胃肠病学和肝病学杂志;2016年04期

6 范春光;王春梅;王燕;李丽;孙汶生;刘玉刚;李瑞峰;;miR-122表达载体的构建及其对HepG2.2.15细胞增殖的抑制作用[J];山东大学学报(医学版);2011年10期

7 石虹;;干扰素-γ和肿瘤坏死因子-α对表达乙肝病毒的HepG2.2.15细胞的协同致凋亡作用[J];复旦学报(医学版);2007年04期

8 刘洋;芦琳琳;杜水仙;宣世英;辛永宁;;慢病毒介导的shRNA干扰人HepG2.2.15细胞Akt2基因表达的研究[J];中国肝脏病杂志(电子版);2016年02期

9 朱晓莹;王燕菲;;反义锁核酸与拉米夫定在HepG2.2.15细胞中抗HBV作用的比较[J];世界华人消化杂志;2011年28期

10 邱荣元;何生松;陈锋;庞然;;核定位信号突变型P21真核表达载体的构建及其对HepG2.2.15细胞病毒复制的影响[J];临床肝胆病杂志;2010年04期


相关博士学位论文 前2条

1 刘坤;HepG2.2.15与HepG2细胞蛋白复合体和分泌蛋白谱差异比较[D];中国人民解放军军事医学科学院;2007年

2 王艳;HepG2.2.15细胞脂肪变性对HBV基因表达及SOCS-3和SREBP-1c通路的影响[D];山西医科大学;2011年


相关硕士学位论文 前9条

1 叶雨笙;吉西他滨促进HepG2.2.15细胞系中乙肝病毒pgRNA转录和病毒复制及相关分子机制研究[D];西南医科大学;2019年

2 孙越鹏;HBV x siRNA抑制HepG2.2.15细胞的实验研究[D];遵义医学院;2011年

3 祝艺耘;构建特异性结合HBVX基因启动子的人工锌指蛋白以抑制HepG2.2.15细胞中HBV的转录[D];重庆医科大学;2014年

4 王文龙;NLRC5对HepaG2.2.15细胞表面MHC-Ⅰ分子表达水平的调控研究[D];泸州医学院;2014年

5 谢海洋;HBx knockdown对HepG2.2.15细胞HBV复制和线粒体钙通道的影响及其表达谱分析[D];浙江大学;2011年

6 田绿;长片段RNA抑制HepG2.2.15细胞系中HBV基因表达和复制[D];重庆医科大学;2011年

7 傅婷婷;10-23脱氧核酶抑制HepG2.2.15细胞荷瘤裸鼠HBV的复制和表达[D];吉林大学;2007年

8 林永敏;miR-21和miR-132在HepG2.2.15细胞中对慢性HBV感染及c-myc、PTEN基因表达的作用[D];南方医科大学;2016年

9 张虹莉;血红素加氧酶-1干预乙肝病毒复制及菊苣酸类天然产物抗乙肝研究[D];中国计量学院;2013年



本文编号:2875951

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/chuanranbingxuelunwen/2875951.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户b182b***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com