钒诱导蛋鸡输卵管膨大部上皮细胞氧化应激模型的建立
本文选题:钒 + OMECs ; 参考:《畜牧兽医学报》2017年02期
【摘要】:本试验旨在通过蛋鸡输卵管膨大部上皮细胞(OMECs)的原代培养,构建利用偏钒酸铵(V5+)建立氧化应激模型的方法。试验选用开产前2~3周龄健康罗曼蛋鸡,分离、培养及鉴定OMECs。利用单因素设计6个不同水平的钒浓度(0、25、50、100、250、1 000μmol·L~(-1))处理12h后,测定细胞活力、细胞凋亡、细胞活性氧(ROS)的生成,细胞内超氧化物歧化酶(SOD)和过氧化氢酶(CAT)的活性,丙二醛(MDA)的含量,细胞上清液中乳酸脱氢酶(LDH)的释放量。结果表明:1)分离培养的细胞24h后形成细胞岛,呈"铺路石样";免疫荧光染色细胞抗细胞角蛋白(CK18)、卵清蛋白(OVA)、雌激素受体1(ESR1)和孕酮受体(PGR)呈阳性,抗波形蛋白呈阴性。2)50和100μmol·L~(-1)的钒处理OMECs 12h后,细胞活力分别下降到(69.90±2.78)%和(63.60±1.57)%,显著低于25μmol·L~(-1)钒处理组(P0.05),但是显著高于250和1 000μmol·L~(-1)钒处理组(P0.05)。3)细胞凋亡率随着钒添加量的增多而升高,且各处理组差异显著(P0.05);1 000μmol·L~(-1)的钒细胞凋亡率为最高(P0.05)。4)ROS的测定结果表明,100和250μmol·L~(-1)钒处理组的FITC相对平均值显著高于0μmol·L~(-1)钒处理组(P0.05),且250μmol·L~(-1)钒处理组的FITC相对平均值显著高于100μmol·L~(-1)钒处理组(P0.05)。5)50μmol·L~(-1)钒处理组SOD活性显著低于0μmol·L~(-1)钒处理组(P0.05),但MDA含量差异不显著。而100μmol·L~(-1)钒处理组的MDA含量显著升高(P0.05);50和100μmol·L~(-1)钒处理组细胞CAT活性显著低于0μmol·L~(-1)钒处理组(P0.05);LDH释放量随着钒的添加剂量的增加而升高,1 000μmol·L~(-1)钒处理组LDH的释放量最高,且100μmol·L~(-1)钒处理组LDH的释放量显著高于0μmol·L~(-1)钒处理组(P0.05),达到141.61±2.81U·gprot-1。综上表明,OMECs原代细胞培养成功,在OMEC原代细胞里添加100μmol·L~(-1)的V5+处理12h,可建立OMECs氧化应激模型。
[Abstract]:The purpose of this study was to establish an oxidative stress model using ammonium metavanadate (V5) through primary culture of oviduct expanded epithelial cells (OMECs) of laying hens. OMECs were isolated, cultured and identified from healthy Roman laying hens at the age of 2 and 3 weeks before birth. Six different levels of vanadium were designed by single factor design. After 12 h treatment, cell viability, cell apoptosis, production of reactive oxygen species (Ros), activities of superoxide dismutase (SOD) and catalase (cat), and malondialdehyde (MDA) content were measured. The release of lactate dehydrogenase (LDH) in cell supernatant. The results showed that the cells isolated and cultured 24 hours later were "paving stone like", immunofluorescence staining showed positive expression of anti-cytokeratin (CK18), ovalbumin (OVA), estrogen receptor 1 (ESR1) and progesterone receptor (PGR), and positive expression of cytokeratin (CK18), ovalbumin (OVA), estrogen receptor 1 (ESR1) and progesterone receptor (PGR). The cell viability of OMECs decreased to (69.90 卤2.78)% and (63.60 卤1.57) after 12 h treatment with vanadium of 50 and 100 渭 mol L ~ (-1), respectively, which was significantly lower than that of 25 渭 mol L ~ (-1) vanadium treatment (P0.05), but significantly higher than that of 250 and 1 000 渭 mol L ~ (-1) vanadium treatment (P0.05). The apoptosis rate of vanadium cells was the highest (P0.05) in the vanadium cells treated with 渭 mol L-1 and 250 渭 mol L-1. The results showed that the relative average value of FITC in the vanadium treated group was significantly higher than that in the 0 渭 mol L-1 group (P0.05), and the relative average value of FITC in the 250 渭 mol L-1 vanadium treatment group was significantly higher than that in the vanadium treatment group (P0.05), and the relative average value of FITC in the vanadium treated group was significantly higher than that in the vanadium treatment group (P0.05). Sod activity in 50 渭 mol L ~ (-1) vanadium treatment group was significantly lower than that in 0 渭 mol L ~ (-1) vanadium treatment group (P0.05), but there was no significant difference in MDA content. The activity of cat in mol 渭 mol L ~ (-1) vanadium treated group was significantly lower than that in 0 渭 mol L ~ (-1) vanadium treatment group (P0.05), and the release of LDH was the highest in 1 000 渭 mol L ~ (-1) vanadium treatment group with the increase of vanadium additive content, but the content of MDA in the vanadium treatment group was significantly higher than that in the 0 渭 mol L ~ (-1) vanadium treatment group (P < 0.05), and the content of LDH in the vanadium treated group was significantly lower than that in the vanadium treatment group (P < 0.05). The release of LDH in the 141.61 渭 mol L ~ (-1) vanadium treatment group was significantly higher than that in the 0 渭 mol L ~ (-1) vanadium treatment group (P0.05), and reached 141.61 卤2.81 U / g prot-1. The results showed that the primary cells of OMECs were cultured successfully, and the oxidative stress model of OMECs could be established by adding 100 渭 mol L-1 V5 to the primary cells for 12 h.
【作者单位】: 四川农业大学动物营养研究所动物抗病营养教育部重点实验室抗病营养与饲料农业部重点实验室;
【基金】:国家自然科学基金(青年项目31402031) 四川省教育厅(青年基金13ZB0290) 科技部科技支撑计划(2014BAD13B04) 四川省科技厅(2014NZ0043;2014NZ0002;2013NZ0054)
【分类号】:S831
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 金梅林,陈焕春;细胞凋亡及基因调控在兽医病毒学领域研究动态[J];动物医学进展;2000年04期
2 刘燕;与细胞凋亡相关的分子和基因研究进展[J];中国兽药杂志;2002年11期
3 高照全,魏钦平,张继祥,杨洪强;细胞凋亡的研究进展及其在农业上的应用[J];山东农业大学学报(自然科学版);2003年01期
4 高丰,金天明,姜宁,楮秀玲;细胞凋亡的研究现状与发展趋势[J];动物医学进展;2003年06期
5 张星海,郭碧花,杨贤强;茶多酚诱导肿瘤细胞凋亡及机理探讨[J];福建茶叶;2003年01期
6 孙培明,王志亮,李玉保,鲍恩东;热应激蛋白70与细胞凋亡[J];中国动物检疫;2003年06期
7 薛占永,呼秀智;细胞凋亡研究进展[J];邯郸农业高等专科学校学报;2003年04期
8 曾林;钟仰进;梁红;曹阳;;细胞凋亡的研究及进展[J];广东蚕业;2003年03期
9 刘会娟;姜龙;;细胞凋亡的分子机理及其检测方法研究进展[J];畜禽业;2006年02期
10 陈庆华;;细胞凋亡机制的研究应用[J];广东畜牧兽医科技;2006年02期
相关会议论文 前10条
1 陈颖丽;李前忠;;不同亚细胞位置的细胞凋亡蛋白质的结构特性分析[A];第十一次中国生物物理学术大会暨第九届全国会员代表大会摘要集[C];2009年
2 孙英丽;赵允;朱山;翟中和;;植物细胞凋亡及其机理的研究[A];中国细胞生物学学会第七次会议论文摘要汇编[C];1999年
3 刘二龙;袁慧;;锌与细胞凋亡[A];2003全国家畜内科学学术研讨会论文专辑[C];2003年
4 邱洁;高海青;;锌在细胞凋亡中的作用研究进展[A];山东省微量元素科学研究会第三届学术研讨会论文汇编[C];2006年
5 俞雅萍;;细胞凋亡的机制及途径和影响因素[A];华东六省一市生物化学与分子生物学学会2006年学术交流会论文集[C];2006年
6 于青;袁伟杰;姚建;;晚期糖基化终末产物引起足细胞凋亡的机制[A];2007年浙沪两地肾脏病学术年会资料汇编[C];2007年
7 季宇彬;尹立;汲晨锋;;调控细胞凋亡的线粒体因素[A];肿瘤病因学研究与中西医结合肿瘤综合诊疗交流研讨会论文集[C];2009年
8 吴经纬;汤长发;;运动中细胞凋亡的线粒体变化特征[A];湖南省生理科学会2006年度学术年会论文摘要汇编[C];2007年
9 蒲小平;李长龄;屠鹏飞;宋志宏;;中药肉丛蓉成分抗神经细胞凋亡的实验研究[A];第七届全国生化药理学术讨论会论文摘要集[C];2000年
10 江键;宋诚荣;崔黎丽;方影;王小平;;静电场对细胞凋亡作用的初步探讨[A];中国物理学会第九届静电学术年会论文集[C];2000年
相关重要报纸文章 前10条
1 商东;“细胞凋亡”与临床医学[N];中国医药报;2001年
2 张志军;细胞凋亡与中医药[N];中国医药报;2002年
3 ;“细胞凋亡疗法”正逐步成为治疗癌症的新途径[N];中国高新技术产业导报;2002年
4 记者张建松;治疗癌症新途径:细胞凋亡疗法[N];科技日报;2002年
5 李明辉;“细胞凋亡”治癌症[N];医药导报;2002年
6 洪敏;细胞凋亡研究引人关注[N];中国医药报;2008年
7 陶春祥;细胞凋亡对心脏疾病的影响[N];中国医药报;2003年
8 本报实习记者 梁媛媛;薛定:发现癌症“开关”[N];北京科技报;2010年
9 高书明;诱导癌细胞凋亡[N];中国医药报;2004年
10 勇汇;中药诱导癌细胞凋亡研究进展[N];中国医药报;2002年
相关博士学位论文 前10条
1 杨利;系列多氮类化合物的抗肿瘤活性研究[D];武汉大学;2012年
2 张浩;从分子、细胞和动物水平研究铅诱发氧化损伤及细胞凋亡的效应与机理[D];山东大学;2015年
3 何欣怡;家蚕微孢子虫(Nosema bombycis)抑制家蚕BmN细胞凋亡的功能研究[D];浙江大学;2015年
4 冯全服;从线粒体途径研究川芎嗪诱导HepG2细胞凋亡效应机制[D];南京中医药大学;2015年
5 张晓倩;高糖诱导Bim蛋白高表达而促肾近曲小管上皮细胞凋亡的机制探讨[D];山东大学;2015年
6 孙健玮;PTEN基因负调控Raf1磷酸化的作用及其对PC3细胞凋亡的影响[D];昆明医科大学;2014年
7 徐林艳;肿瘤细胞凋亡过程中TNFRSF10B和CFLAR调控机制研究[D];山东大学;2015年
8 樊庆端;生物调控网络的建模与动力学行为研究[D];上海大学;2015年
9 王德选;WNK_3对钠氯协调转运子的调节及在胚肾细胞凋亡中的保护作用[D];南方医科大学;2015年
10 叶嘉;Nogo-B在急性肺损伤肺泡上皮细胞凋亡中的作用[D];第二军医大学;2015年
相关硕士学位论文 前10条
1 曹璐璐;2,2’,4,4’-四溴联苯醚(BDE-47)对人胚肾细胞(HEK293)的毒理效应及作用机制研究[D];中国科学院烟台海岸带研究所;2015年
2 张薇;蒜头果蛋白诱导HepG-2细胞凋亡的研究[D];云南民族大学;2015年
3 唐建国;视黄醇X受体出核抑制对神经元细胞凋亡的影响[D];福建医科大学;2015年
4 安璐;3-氯-1,2-丙二醇细胞毒性及其诱导HEK293细胞凋亡途径探究[D];江南大学;2015年
5 杨翔;Procaspase-8的异常表达抑制TRAIL诱导肿瘤细胞凋亡[D];昆明理工大学;2015年
6 张昌明;I3C通过调控p53泛素化对喉癌Hep-2细胞凋亡的影响[D];延边大学;2015年
7 彭涵;共轭亚油酸对仔猪脂肪细胞凋亡的影响[D];西南大学;2015年
8 李立辉;ΔFosB通过MMP-9调控山羊乳腺上皮细胞凋亡的分子机制[D];西北农林科技大学;2015年
9 杨鑫铖;Hedgehog信号通路在大鼠急性胰腺炎腺泡细胞凋亡中的作用[D];河北医科大学;2015年
10 贾琼琼;MicroRNA-214对H_2O_2损伤L6骨骼肌成肌细胞增殖和凋亡的影响[D];河北医科大学;2015年
,本文编号:2076965
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/dongwuyixue/2076965.html