当前位置:主页 > 医学论文 > 畜牧兽医论文 >

秦川牛Smad2和Smad3基因转录调控研究

发布时间:2020-05-22 13:03
【摘要】:TGF-β信号通路是参与肌肉和脂肪生长发育调控的重要信号通路之一,而且是肌细胞和脂肪细胞分化的强抑制剂。Smads蛋白家族在TGF-β信号通路中起到至关重要的作用,它们能将信号由细胞膜转至细胞核中从而调节靶基因的转录。而Smad2/Smad3是由激活素TGF-β激活的R-Smads。研究证实在TGF-β1抑制成肌和成脂分化过程中起到关键作用的是Smad3基因而不是Smad2基因。鉴于Smad3可能存在的抑制成肌细胞和前体脂肪细胞分化的潜在作用,本研究通过腺病毒介导Smad3基因过表达和沉默的方法,探讨Smad3在调控牛成肌细胞和前体脂肪细胞分化过程中的作用。同时,虽然Smad2和Smad3的氨基酸相似性高,但其结构、功能和转录调控都存在显著的差异,本实验从细胞转录水平上对牛Smad2和Smad3基因的转录调控机制及相互之间的调控关系进行了初步的研究。主要研究结果如下:(1)成功克隆了秦川牛Smad3基因CDS区序列,全长为1278bp,编码了425个氨基酸残基,并筛选得到一条靶向Smad3基因干扰效率高达83.3%的sh RNA序列。构建了秦川牛Smad3基因的腺病毒穿梭载体p DC316-m CMV-EGFP-b SMAD3和p DC316-EGFP-Sh RNA-b SMAD3-1405,用这两种携带目的基因的重组质粒分别和骨架质粒共转染到HEK293A细胞中包装病毒,扩繁浓缩获得为高滴度病毒,用La SRT法测定病毒滴度,过表达腺病毒AD-b Smad3和AD-NC(空载病毒)的滴度均为1×10~(10)PFU/m L;干扰腺病毒AD-Sh RNA-b SMAD3,AD-Sh RNA-NC(空病毒)的腺病毒滴度也均为1×10~(10)PFU/m L。(2)在前体脂肪细胞中过表达Smad3基因,显著抑制了成脂标志基因PPARγ,FABP4,C/EBPα和C/EBPβ的表达,相反干扰沉默Smad3基因后,促进了PPARγ,FABP4,C/EBPα和C/EBPβ的表达。油红O染色发现在前体脂肪细胞过表达Smad3基因,抑制细胞中脂滴的积累,干扰沉默Smad3基因后,前体脂肪细胞中脂滴的含量升高。因而证明Smad3基因能够显著地抑制秦川牛前体脂肪细胞的分化。同样,在成肌细胞中过表达Smad3基因,显著抑制了肌细胞分化标志基因Myo D和Myo G的表达,而干扰沉默Smad3基因后,促进了Myo D和Myo G的表达。细胞形态观察发现干扰Smad3基因后,肌管变长变多。(3)克隆得到Smad3基因5'侧翼序列1143bp,其核心启动子区位于-337~-41bp之间。通过定点突变转录因子结合位点,确定了KLF6、KLF15、KLF7和MZF1在维持Smad3基因启动子活性中的作用;体外EMSA实验进一步证实KLF6、KLF15、KLF7和MZF1是Smad3基因的关键转录因子。转染KLF6-si RNA、KLF15-si RNA、KLF7-si RNA、MZF1-si RNA以及对照Control si RNA到前体牛脂肪细胞和成肌细胞中,采用Real-time PCR方法检测发现,KLF6、KLF15、KLF7和MZF1是维持牛Smad3基因启动子基本转录活性必需的顺式作用元件。(4)采用Real-time PCR方法检测发现,Smad2和Smad3基因在牛的各个组织中广泛表达,氨基酸相似性高达89.2%。在成肌细胞分化过程中,Smad2和Smad3基因表达趋势相同,随着肌管形成其表达量显著增加。但是Smad3对Smad2基因的转录表达是抑制作用,无论是牛成肌细胞处于高血清生长培养基(GM:F12/DMEM+20%FBS)还是低血清培养基分化培养基(DM:F12/DMEM+2%HS)。(5)采用5’末端c DNA快速扩增法(SMART RACE c DNA Amplification),确定牛Smad2基因存在的的转录起始位点,与已报道Smad2基因的mRNA序列(NM_001046218)转录起始位点相比,我们将Smad2基因m RNA序列的5'UTR在原有基础上向前推进5 bp。克隆得到牛Smad2基因5'侧翼序列1243 bp,而其核心启动子区域位于-158~-35bp。通过定点突变转录因子结合位点,确定了C/EBPα和C/EBPβ结合在Smad2基因核心启动子区域。体外EMSA实验进一步证实C/EBPα和C/EBPβ转录因子能够结合在牛Smad2基因的核心启动子区域。(6)细胞培养基的不同会影响C/EBPα和C/EBPβ转录因子、Smad2和Smad3基因的调控。在低血清的分化培养基条件下的牛成肌细胞中C/EBPα和C/EBPβ抑制Smad2基因的表达,Smad3基因促进C/EBPα和C/EBPβ基因的表达;而在高血清生长培养基条件下的牛成肌细胞中,C/EBPα和C/EBPβ转录因子促进Smad2基因的表达,Smad3基因抑制C/EBPα和C/EBPβ基因的表达。Smad3基因调控Smad2基因的表达可能是通过调控其关键转录因子C/EBPα和C/EBPβ的表达。综上所述:本文应用腺病毒介导的基因过表达与干扰沉默技术,探讨了Smad3基因在调控秦川牛前体脂肪细胞与成肌细胞分化过程中的作用,以及对一些在肌肉生长发育和脂质代谢过程中发挥重要作用的功能基因转录水平的影响;也探讨了Smad2和Smad3基因之间在转录水平上的调控机制,为进一步研究TGF-β信号通路在秦川牛肌肉和脂肪的形成过程中的调控机制提供一定的理论依据,也为下一步的中国肉牛育种工作奠定基础。
【图文】:

序列,骨骼肌卫星细胞,成肌细胞,前体脂肪细胞


从而下调了 PPAR γ 的表达(Alves et al. 2017; Choy et al. 2000)。鉴于 Smad3 可能存在的抑制牛成肌细胞和前体脂肪细胞分化的潜在作用,我们通过腺病毒介导 Smad3 基因在秦川牛前体脂肪细胞和成肌细胞中过表达和沉默,再应用油红 O 染色、实时荧光定量PCR 等技术,探讨 Smad3 在调控牛成肌细胞和前体脂肪细胞分化过程中的作用机制。近期有研究表明在小鼠上,虽然Smad2和Smad3的氨基酸相似性高达92%,对TGFβ信号通路来说同等重要,,但是二者在细胞内的比例却会影响 TGFβ 抑制细胞生长作用(Kim et al. 2005)。因而我们提出假设是否存在一种因子能够调控两种信号通路之间的平衡。本实验通过克隆 Smad2 和 Smad3 基因启动子序列,双报告系统检测核心启动子序列,定点突变,EMSA 方法鉴定其关键转录因子;在转录水平上初步探索目标基因 Smad2与 Smad3 之间的调控关系。本研究可为探明 Smad2 和 Smad3 基因在调控大型家畜(牛)肌细胞和脂肪细胞分化的作用机制提供理论依据,为进一步研究牛 TGFβ 信号通路在秦川牛骨骼肌和脂肪的生长发育过程中的调控机制的研究奠定一定的理论基础。1.2 成肌细胞分化研究进展1.2.1 成肌细胞分化的起源

模型图,脂肪细胞,定向诱导分化,间充质干细胞


1.3 脂肪细胞分化研究进展1.3.1 脂肪细胞分化的起源许多研究已经证明脂肪细胞是由中胚层的多能干细胞发育分化而来的。根据在脂肪细胞的分化过程中脂滴发生的变化一般可将脂肪细胞分为,脂肪母细胞、脂肪前体细胞、前脂肪细胞和成熟的脂肪细胞(Aggarwal et al. 2005; Rodriguez et al. 2004)。脂肪组织的增长是脂肪细胞数量的增加以及体积增大的结果。前体脂肪细胞是脂肪组织基本的生物学单位,其增殖分化能力的持续存在伴随着动物的一生(Rodriguez et al. 2004)。前体脂肪细胞还是一种新发现的多能干细胞。近年来前体脂肪细胞不仅是可以用于研究动物脂肪组织的发育形成以及分泌脂肪细胞因子等过程, 也可以作为细胞模型用来在体外研究动物脂肪组织的生脂过程以及其代谢调控的分子机制。因而对前体脂肪细胞的研究不仅对改善动物的胴体品质、改良动物品种和提高人们的生活水平上有着重要意义, 而且在研究人类的糖尿病、肥胖症、相关的代谢疾病以及组织移植等方面都有着较为广泛的应用前景(Poulos et al. 2016)。但是,前体脂肪细胞增殖、分化和发育形成脂肪组织过程中确切的调控机制还有待进一步的深入研究。
【学位授予单位】:西北农林科技大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2018
【分类号】:S823

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 Zhao-Hui Feng;Xiao-Hui Zhang;Jia-Qi Zhao;Jun-Ze Ma;;Involvement of Rho-associated coiled-coil kinase signaling inhibition in TGF-β1/Smad2,3 signal transduction in vitro[J];International Journal of Ophthalmology;2017年12期

2 ANWAR Reheman;TULAILIJIANG Hamutai;JUKEN Aniwashen;YIMING Sulaiman;;The Analysis of Relationship between MSTN/Smad Signal Path and Turpan Black Sheep Meat Production[J];Agricultural Science & Technology;2016年01期

3 刘欣欣;冯爱平;和义敏;李延;吴艳;连昕;胡枫;李家文;涂亚庭;陈善娟;;Association of Down-regulation of CD109 Expression with Up-expression of Smad7 in Pathogenesis of Psoriasis[J];Journal of Huazhong University of Science and Technology(Medical Sciences);2016年01期

4 马志君;吉洁;李春辉;谢云鹏;王维兴;邢恩鸿;;脑星形细胞瘤组织TGF-β1、Smad7与VEGF的表达及意义[J];健康之路;2016年12期

5 Zhen-Chang Wang;Shan Yang;Jing-Jing Huang;Song-Lin Chen;Quan-Qiang Li;Yuan Li;;Effect of bone marrow mesenchymal stem cells on the Smad expression of hepatic fibrosis rats[J];Asian Pacific Journal of Tropical Medicine;2014年04期

6 冯爱平;和义敏;刘欣欣;李家文;涂亚庭;胡枫;陈善娟;;Expression of USP15, TβR-Ⅰand Smad7 in Psoriasis[J];Journal of Huazhong University of Science and Technology(Medical Sciences);2014年03期

7 庞莉;王晶;蒋延文;;Smad蛋白研究进展[J];中国医学创新;2013年12期

8 任章朋;孙立平;夏幼辰;童巧霞;;Effect of the Protease Inhibitor MG132 on the Transforming Growth Factor-β/Smad Signaling Pathway in HSC-T6 Cells[J];Journal of Huazhong University of Science and Technology(Medical Sciences);2013年04期

9 Giovanni Monteleone;Roberta Caruso;Francesco Pallone;;Role of Smad7 in inflammatory bowel diseases[J];World Journal of Gastroenterology;2012年40期

10 ;HSP70 decreases receptor-dependent phosphorylation of Smad2 and blocks TGF-β-induced epithelial-mesenchymal transition[J];遗传学报;2011年03期

相关会议论文 前10条

1 Yu Ying;Su Zhaoliang;Wang Shengjun;Xu Huaxi;;Th2 cells may be an intermediate during converting na?ve T cells to Th9 cells,which associate with Smad3/Smad4 and IRF4 pathway[A];第十二届全国免疫学学术大会摘要汇编[C];2017年

2 Yijia Xiang;Ning Zhu;Junchong Chen;Xuyong Zhao;Shiyong Ye;Chunlai Zeng;;Icariin Attenuates Monocrotaline-induced Pulmonary Arterial Hypertension via inhibition of TGF-β1/Smad2/3 Signaling pathway in Rats[A];2015年浙江省心电生理与起搏学术年会论文汇编[C];2015年

3 张雪莹;王庆阳;张纪岩;;Smad4 inhibits cell migration via suppressing JNK activity in human PANC-1 pancreatic cancer cells[A];第九届全国免疫学学术大会论文集[C];2014年

4 Bensoussan D.;Stoltz J.F.;de Isla N;;Differentiation of human bone marrow mesenchymal stem cells induced by biaxial tension involves Smad3 activation[A];中国生理学会第23届全国会员代表大会暨生理学学术大会论文摘要文集[C];2010年

5 ;Function of TGF-β/Smad4 Signaling in the Maintenance of Tissue Homeostasis[A];中国的遗传学研究——遗传学进步推动中国西部经济与社会发展——2011年中国遗传学会大会论文摘要汇编[C];2011年

6 ;HSP70 decreases receptor-dependent phosphorylation of Smad2 and blocks TGF-β-induced epithelial-mesenchymal transition[A];“细胞活动 生命活力”——中国细胞生物学学会全体会员代表大会暨第十二次学术大会论文摘要集[C];2011年

7 ;Maternal Smad3 Deficiency Compromises Decidualization in Mice[A];“细胞活动 生命活力”——中国细胞生物学学会全体会员代表大会暨第十二次学术大会论文摘要集[C];2011年

8 Jing Zhou;李芷懿;Jeng-Jiann Chiu;;Force-specific activation of Smad1/5 regulates vascular endothelial cell cycle and progression in response to disturbed flow[A];2012年中国科协海峡两岸青年科学家学术活动月——第九届海峡两岸细胞生物学学术研讨会论文集[C];2012年

9 Juan Li;Jun Wang;Zhi-he Zhao;;Compressive Stress Relayed Chondrogenic Differentiation Through Smad-dependent and Smad-independent Pathways[A];第十届全国生物力学学术会议暨第十二届全国生物流变学学术会议论文摘要汇编[C];2012年

10 Jingmin Zhao;Jia Wang;Jun Yu;;Inhibitory role of Smad7 in hepatocarcinogenesis in mice and in vitro[A];中华医学会第十六次全国病毒性肝炎及肝病学术会议论文汇编[C];2013年

相关重要报纸文章 前2条

1 记者 李天舒;先天性心脏病病因被发现[N];健康报;2009年

2 ;探秘烧伤的内源性损伤[N];健康报;2010年

相关博士学位论文 前10条

1 林尊文;粉防己碱干预增生性瘢痕成纤维细胞TGF-β/Smad信号转导通路的分子机制[D];南方医科大学;2012年

2 汪伟;MSCs成骨信号轴BMP-2/Smad/Runx2/Osterix与迁移信号轴CXCL12/CXCR4的交叉影响[D];湖北中医药大学;2017年

3 张乐;秦川牛Smad2和Smad3基因转录调控研究[D];西北农林科技大学;2018年

4 王娟;MUC1通过JNK-TGF-β信号促进肝癌迁移侵袭的分子机制及靶向治疗肝癌的研究[D];吉林大学;2017年

5 张继帅;利用条件基因剔除技术研究Smad4基因在软骨内成骨过程中的功能[D];中国人民解放军军事医学科学院;2004年

6 谭晓红;成骨细胞特异性Smad4基因剔除导致小鼠早期发生骨质疏松[D];中国人民解放军军事医学科学院;2004年

7 杨琛;大鼠肾小球系膜细胞TGF-β1/Smad信号转导通路的实验研究[D];复旦大学;2004年

8 于鸿;Smad7过表达对大鼠肾小球系膜细胞基质代谢的影响[D];复旦大学;2004年

9 吴晓玲;红景天甙对肝纤维化大鼠TGFβ-Smad信号通路的影响[D];重庆医科大学;2005年

10 王莉;在肺癌发生中Smad7对TGF-β信号通路的调控[D];重庆医科大学;2005年

相关硕士学位论文 前10条

1 卢冰冰;利用CRISPR/Cas9技术构建Smad1-HA-Tag小鼠及SMAD1-HA-Tag人牙间充质细胞培养体系[D];福建师范大学;2017年

2 何其英;基于TGF-β_1-Smad2/3探讨芪地糖肾颗粒防治糖尿病肾病肾脏纤维化的研究[D];北京中医药大学;2018年

3 姚敬梓;过表达miR-21通过Smad7促进肝卵圆细胞增殖的研究[D];浙江大学;2018年

4 杨俊侠;Smad泛素化调节因子2在TGF β1诱导人肺成纤维细胞活化中的作用及其分子机制[D];暨南大学;2016年

5 刘望予;基于TGF-β1/Smad信号通路研究清眩降压汤对自发性高血压大鼠肾脏纤维化的影响及作用机制[D];福建中医药大学;2018年

6 史景霞;miR-130b调控TGF-β1/Smads信号通路对糖尿病肾脏纤维化的作用和机制研究[D];河南科技大学;2018年

7 柯梦琼;富硒地龙对肝纤维化小鼠Smad3、Smad7表达的影响[D];湖北民族学院;2018年

8 李振文;补肾壮骨法对骨质疏松症模型大鼠股骨中BMP-2、Smad1/5、Smad6蛋白表达的影响[D];湖北民族学院;2018年

9 胡坤媚;玉夏胶囊对自发性高血压大鼠肾间质纤维化的改善作用及其机制研究[D];皖南医学院;2017年

10 邱静;TGF-β1/Smad3在博来霉素肺纤维化大鼠EndMT中作用及机制研究[D];成都医学院;2017年



本文编号:2676037

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/dongwuyixue/2676037.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户77b08***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com