当前位置:主页 > 医学论文 > 畜牧兽医论文 >

南阳黄牛EST-SSR分子标记开发及种质遗传多样性分析

发布时间:2020-10-12 21:20
   南阳黄牛是我国五大良种黄牛之一,但近年来出现了品种衰退、单一化程度升高等问题。对南阳黄牛遗传多样性的现状进行调查和分析,是这一重要地方种质资源可持续发展和合理利用的关键前提。微卫星(simple sequence sepeat,SSR)分子标记在群体遗传多样性研究中发挥着重要作用。本研究从已知牛表达序列标签(expressed sequence tag,EST)中查找SSR,根据对EST的功能注释筛选出包含SSR位点的与牛重要经济性状相关的区段,设计聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)所需引物。然后利用开发出的EST-SSR分子标记对采自不同牛品种的基因组DNA进行检测,筛选出可用于检测南阳黄牛遗传多样性的标记,为开展南阳黄牛的种质资源研究提供借鉴。本研究的结果如下:1.从GenBank数据库中调取拼接后的牛(Bos taurus)非冗余UniGene序列45364条,包含1387262条EST序列。经分析共获得4453个包含2~6个碱基重复的SSR位点,分布在3660条序列上。牛转录序列中平均每间隔12.71 Kb会出现一个SSR位点,检出率为8.07%。分析获得的牛EST-SSR主要是双碱基(49.02%)和三碱基(47.43%)重复,其中核心序列AT/TA(16.45%)最为常见。2.分别利用blastx和interproscan对包含SSR位点的3660条序列进行序列比对和结构注释,发现有2346条包含SSR位点的牛转录序列可找到同源蛋白产物。参照基因本体(gene ontology)数据库对这些序列的基因功能注释和聚类分析,选取了与牛生长发育、肉质和繁殖等重要性状相关的序列,设计获得10对可用于扩增SSR位点的PCR引物。3.从南阳黄牛、西门塔尔牛、夏罗莱牛、皮尔蒙特牛和新疆牛的多个样本采集血样,利用合成的SSR引物对其基因组DNA进行PCR,产物用聚丙烯酰胺凝胶进行分离并分别采用银染法和荧光染色法进行染色观察。结果显示:(1)、银染法和荧光染色法呈现的DNA电泳条带带型一致,并且荧光染色法步骤更为简单,可替代传统银染法进行SSR电泳检测;(2)、十对SSR引物在所有样本中均能产生有效扩增,其中位于胰岛素样生长因子2(insulin-like growth factor 2,IGF-2)基因的SSR位点(SSR4)经PCR扩增后的片段长度在南阳黄牛和其它品种间呈现差异性,表明该SSR可作为南阳黄牛遗传多样性研究的有效标记。
【学位单位】:南阳师范学院
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:S823.81
【部分图文】:

序列,基本流程,序列,流程


AP3ISA(MIcroSAtellite identification tool)、SSrimer3:Blast、Interproscanlast2GO、WEGO(Ubuntu 18.04 LTS)已有的完成拼接的牛 UniGene 序列。对筛选和拼接验证。的设计流程如下图所示:

类型分布,黄牛,基序,占比


图 2-2 黄牛各组织中 EST-SSR 中不同重复基序类型分布tion of different repeat motif types in EST-SSR in various tissues of,AT/TA 是含量最多的核心序列类型,占比 16.45%,此要比例,分别是 14.29%,15.39%。CA/CT,GT/CA,T6%,9.89%,12.23%。具体如图所示(见图 2-3)

黄牛,类型分布,基重,基序


图 2-2 黄牛各组织中 EST-SSR 中不同重复基序类型分布tribution of different repeat motif types in EST-SSR in various tissues o中,AT/TA 是含量最多的核心序列类型,占比 16.45%,主要比例,分别是 14.29%,15.39%。CA/CT,GT/CA,11.96%,9.89%,12.23%。具体如图所示(见图 2-3)
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 张光望;游杨;罗延延;张明菊;李志良;王书珍;;生菜EST-SSR的分布特征分析(英文)[J];Agricultural Science & Technology;2016年12期

2 林富荣;邢俊连;孟艳琼;黄平;郑勇奇;;皂荚EST-SSR分子标记开发与分析评价[J];植物遗传资源学报;2017年01期

3 张恩亮;王鹏;李亚;王淑安;李林芳;杨如同;;紫薇EST-SSR标记的开发与利用[J];北方园艺;2016年22期

4 陈勋;龚自明;;基于EST-SSR标记的湖北茶树种质资源遗传多样性分析[J];分子植物育种;2017年05期

5 胡仲义;付涛;何月秋;李文;林立;;铁皮石斛EST-SSR引物的评价、甄选与应用研究[J];植物研究;2017年01期

6 林珲;朱海生;陈敏氡;王彬;温庆放;吴卫东;;花椰菜EST-SSR反应体系的优化[J];分子植物育种;2015年11期

7 贾新平;邓衍明;孙晓波;梁丽建;;鸟巢蕨EST-SSR标记的开发与应用[J];华北农学报;2015年06期

8 王忠良;丁燏;许尤厚;简纪常;鲁义善;王蓓;陈刚;吴灶和;;基于转录组数据的马氏珠母贝EST-SSR位点的信息分析及其多态性检测[J];海洋与湖沼;2015年03期

9 梁照文;童明龙;高振峰;张宝俊;伏建国;范晓虹;;检疫性杂草毒莴苣EST-SSR标记的开发及应用[J];植物保护学报;2015年04期

10 丁西朋;罗小燕;贾庆麟;白昌军;;圭亚那柱花草新EST-SSR标记验证及其在柱花草属上的转移[J];热带作物学报;2015年10期


相关博士学位论文 前10条

1 罗伟;团头鲂EST-SSR的开发及在育种中的应用[D];华中农业大学;2014年

2 魏利斌;芝麻EST-SSR开发、遗传图谱构建及棉花脂肪酸代谢相关基因克隆[D];南京农业大学;2009年

3 游永宁;四种水生蔬菜的转录组学研究及EST-SSR标记的开发[D];武汉大学;2015年

4 姚秋阳;利用RNA-seq技术在云南山茶中解析重要分子通路与开发多态性EST-SSR[D];云南大学;2015年

5 许秀玉;木麻黄青枯病的抗性鉴定及EST-SSR关联分析[D];中国林业科学研究院;2017年

6 熊钢;基于转录组的泥东风螺EST-SSR标记开发及遗传多样性分析[D];湖南农业大学;2015年

7 陈浩东;达尔文氏棉旱胁迫转录组测序、EST-SSR开发及高密度遗传图谱构建[D];中国农业科学院;2013年

8 杨成君;人参cDNA文库构建,EST与相关基因表达分析及EST-SSR标记建立[D];东北林业大学;2008年

9 李明杰;基于地黄转录组的EST-SSR标记开发及块根发育机理研究[D];河南农业大学;2013年

10 姚明哲;利用ISSR和EST-SSR标记研究中国茶树资源的遗传多样性和遗传结构[D];浙江大学;2009年


相关硕士学位论文 前10条

1 陈红波;基于白及转录组数据的EST-SSR分子标记开发、验证及应用[D];遵义医科大学;2019年

2 汪海燕;南阳黄牛EST-SSR分子标记开发及种质遗传多样性分析[D];南阳师范学院;2019年

3 林雪莹;水松EST-SSR分子标记开发及群体遗传变异分析[D];中南林业科技大学;2018年

4 董峰平;乌桕EST-SSR标记开发与遗传评价[D];浙江农林大学;2019年

5 马振川;芦笋种质资源营养成分及EST-SSR遗传多样性分析[D];黑龙江八一农垦大学;2017年

6 耿金曼;基于蔓越橘果实转录组的新型EST-SSR标记的开发及鉴定[D];吉林农业大学;2016年

7 王佳卉;软枣猕猴桃EST-SSR分子标记的开发及遗传多样性分析[D];吉林农业大学;2014年

8 郭孝欢;水黄皮种子转录组构建与分析及多态性EST-SSR的筛选[D];深圳大学;2015年

9 王美蓉;青叶胆生物学特性研究及EST-SSR优化体系的建立[D];云南中医学院;2015年

10 胡吟胜;基于EST-SSR琼枝麒麟菜遗传结构分析[D];海南大学;2013年



本文编号:2838294

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/dongwuyixue/2838294.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户3b275***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com