禽致病性大肠杆菌O1、O2、O78型多重PCR检测方法的建立及应用
【学位单位】:吉林农业大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2018
【中图分类】:S852.61
【部分图文】:
图 3.1 单重 PCR 扩增结果adder K;1、2:E.coli O1(CVCC249);3、4:5、6:E.coli O78(CVCC1555)Fig 3.1 PCR amplification results2:E.coli O1(CVCC249);3、4:E.coli OE.coli O78(CVCC1555)与同源性比较 wzx 基因 PCR 产物测序与同源性比较CVCC249)的 DNA 为模板,按预实验zx 基因,将 PCR 产物回收纯化后,送至结果呈递 BLAST 系统作同源性分析,
图 3.2 引物浓度对多重a:E.coli O1(CVCC249);b:E.coli O2(M:DNA 分子量标准 Ladder K;1-6 分别表示Fig 3.2 Effect of primer concentraa:E.coli O1(CVCC249);b:E.coli O2(M:DNA Ladder K;1-6 indicate the concentratirespe3.3.2 Ex Taq 酶浓度的优化在筛选出最佳引物浓度的基础上,3.3 所示,当 Ex Taq 酶量为 5U、4U 和异性条带。当 Ex Taq 酶量为 1.5U 时,以增反应均较清晰的目的条带,且有较少果较好。所以选取 1.5U 进行后续实验。(c)E.coli O78
图 3.3 Ex Taq 酶浓度对多a:E.coli O1(CVCC249);b:E.coli O2(M:DNA 分子量标准 Ladder K;1-5 分别表Fig 3.3 Effect of Ex Taq enzymM:DNA Ladder K;1-5 indicate the quantity respe3.3.3 10×Ex Taq Buffer 量的优化在上述最佳引物浓度、最佳酶浓度Taq Buffer 的用量,以探究最佳用量。从2.5μL 时,多重 PCR 出现非特异性扩增拖带情况出现。所以选取 2.5μL 进行后(c)E.coli O78
【参考文献】
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本文编号:2840787
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