饲粮添加壳聚糖对仔鹅生产性能、肠道微生物组成的影响

发布时间：2020-10-20 05:16

　　 本试验旨在研究饲粮中添加壳聚糖对仔鹅生长性能、屠宰性能、养分利用及肠道发育、肠道微生物组成等的影响,以确定仔鹅饲粮中壳聚糖适宜添加量,并初步探讨其作用机理。选取360只14日龄健康、体重相近的扬州鹅公鹅,随机分为5个组,每组6个重复,每个重复12只鹅。对照组(A组)饲喂基础饲粮,试验组(B、C、D、E)分别饲喂添加 250 mg/kg、500 mg/kg、1000 mg/kg、2000 mg/kg壳聚糖的试验饲粮,试验期56 d。从壳聚糖对仔鹅生长性能、屠宰性能、营养物质的利用、肠道发育、肠道微生物等方面的影响来探讨其应用效果,并筛选出添加效果较好的剂量。试验结果表明:1.饲粮添加500 mg/kg壳聚糖显著提高42、56和70日龄仔鹅体重,各阶段平均日采食量、平均日增重(P0.05),显著降低各阶段料重比(P0.05)。添加1000mg/kg和2000mg/kg壳聚糖时,仔鹅体重、平均日采食量、日增重呈下降趋势(P0.05),同时料重比升高(P0.05)。2.饲粮添加500 mg/kg壳聚糖显著提高仔鹅心脏指数、肝脏指数、脾脏指数、空肠指数、回肠指数和盲肠指数(P0.05),降低腹脂率和肌肉中脂肪含量(P0.05)。3.饲粮添加250、500mg/kg壳聚糖组粗脂肪表观利用率显著高于试验2000 mg/kg组(P0.05),同时干物质表观利用率显著高于对照组(P0.05)。4.饲粮添加500mg/kg壳聚糖显著提高各肠段长度和重量,并显著提高十二指肠、空肠及回肠的绒毛高度、肌层厚度,降低隐窝深度(P0.05),而添加1000和2000 mg/kg壳聚糖时,十二指肠、空肠及回肠绒毛长度变短、隐窝深度升高(P0.05)。5.添加500mg/kg壳聚糖增加肠道微生物区系中厚壁菌门、链球菌属、消化球菌属、瘤胃球菌属的相对丰度,降低拟杆菌门、变形菌门、巨单胞菌属的相对丰度。添加500 mg/kg壳聚糖与对照组物种相似性较低,随着添加剂量的增加(1000、2000 mg/kg)与对照组菌群相似性较高,达到0.34。综上所述,饲粮中壳聚糖使用量为250mg/kg、500mg/kg,显著提高仔鹅平均日采食量、平均日增重,饲料干物质和粗脂肪利用率以及各肠段长度重量,并显著降低仔鹅腹脂率,同时增加有益菌数量,尤以添加500 mg/kg的结果较为显著;当饲粮中壳聚糖使用量为1000mg/kg、2000mg/kg,仔鹅生长发育迟缓,腹脂率和有害菌数量增加。综合本试验研究结果,建议仔鹅生产应用中壳聚糖使用量为 500 mg/kg。
【学位单位】：扬州大学
【学位级别】：硕士
【学位年份】：2018
【中图分类】：S835.5
【部分图文】：

２．１基因组ＤＮＡ提取结果??按照上述方法提取肠道微生物总ＤＮＡ，并用ＤＮＡ定量仪测定其浓度，１％??的琼脂糖电泳检测结果如图５－１所示，得到的目的片段大小在２０００ｂｐ左右，且??Ａ、Ｃ、Ｅ组ＤＮＡ的含量较高，完整性保存较好。Ｅ组呈现拖尾现象，说明有部??分ＤＮＡ降解，但降解程度较小。??图５－丨菌群总ＤＮＡ琼脂糖电泳??备注：１－Ａ１?２－Ａ２?３－Ａ３?４－Ｂ１?５－Ｂ２?６－Ｂ３?７－Ｃ１?８－Ｃ２?９－Ｃ３??１０－Ｄ１?１１－Ｄ２?１２－Ｄ３?１３－Ｅｌ?１４－Ｅ２?１５－Ｅ３??２．２?ＰＣＲ扩增结果??微生物总的ＤＮＡ经１６ＳｒＲＮＡＶ３区引物扩增后采用２％浓度的琼脂糖凝胶??进行电泳检测，结果如图５－２所示，扩增效果较好，均可得到约１５０?ｂｐ的ＰＣＲ??产物，可以用于后续分析。??

为研宄样品的物种组成多样性，对所有样品的有效序列进行聚类分析，以??９７％的一致性将序列聚类成为ＯＴＵｓ，然后对ＯＴＵｓ的代表序列进行物种注释。??如图５－３所示，所有样品共得到２７３３６０序列，其中Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ组总序列??即为有效序列分别为６１０５８．、４４９３６、５８７０６、６３２０３、４５４５７用于０ＴＵ聚类后续??分析；分类的Ｔａｇｓ数目分别为５８２７７、４３２３５、５６９８６、６００７２、４３７５１可用于构??建ＯＴＵｓ并获得注释信息；每个肠道样品的ＯＴＵ数目表现出较高的丰度和多样??性，所有样品得到共得到５０３４个ＯＴＵｓ，单个样品得到的ＯＴＵｓ数目分别为９０８、??１３１８、１０４２、８５８、９１８；特殊序列频数为１，无法被聚类到ＯＴＵｓ，不用于后续??分析。??７００００??ｍｍ?ｍ?圓圍？??ＳＩＫＤ０?ＩＩ?ｐｉ?？怠序列教??Ｍ?■〇〇?＿丨?■分类序列??列?ＩＩ?ＩＩ?ＩＩ?ＩＩ?ＩＩ?數??＾?３００００?ＩＩ?ＩＩ?ＩＢ?＊?鐘＿??ｍｍ?ＩＩ?＾?ｉ?＊．ｏ；ｕ教??－Ｉ?Ｉ?Ｉ?Ｉ?Ｉ??Ａ?Ｂ?Ｃ?Ｄ?Ｅ??图５－３样品序列与ＯＴＵ数目统计??２．４物种分布??

：ｉｉ：）ｙ?；：?：；ｂ＾??图５－２菌群１６ｓ?ｒＲＮＡ?Ｖ３区ＰＣＲ扩增??备注：１－Ａ１?２－Ａ２?３－Ａ３?４－Ｂ１?５－Ｂ２?６－Ｂ３?７－Ｃ１?８－Ｃ２?９－Ｃ３??１０－Ｄ１?１１－Ｄ２?１２－Ｄ３?１３－Ｅｌ?１４－Ｅ２?１５－Ｅ３??２．３测序收获水平??为研宄样品的物种组成多样性，对所有样品的有效序列进行聚类分析，以??９７％的一致性将序列聚类成为ＯＴＵｓ，然后对ＯＴＵｓ的代表序列进行物种注释。??如图５－３所示，所有样品共得到２７３３６０序列，其中Ａ、Ｂ、Ｃ、Ｄ、Ｅ组总序列??即为有效序列分别为６１０５８．、４４９３６、５８７０６、６３２０３、４５４５７用于０ＴＵ聚类后续??分析；分类的Ｔａｇｓ数目分别为５８２７７、４３２３５、５６９８６、６００７２、４３７５１可用于构??建ＯＴＵｓ并获得注释信息；每个肠道样品的ＯＴＵ数目表现出较高的丰度和多样??性，所有样品得到共得到５０３４个ＯＴＵｓ，单个样品得到的ＯＴＵｓ数目分别为９０８、??１３１８、１０４２、８５８、９１８；特殊序列频数为１，无法被聚类到ＯＴＵｓ，不用于后续??分析。??７００００??ｍｍ?ｍ?圓圍？??ＳＩＫＤ０?ＩＩ?ｐｉ?？怠序列教??Ｍ?■〇〇?＿丨?
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本文编号：2848266