IL-17介导山羊传染性胸膜肺炎模型小鼠肺炎的研究
发布时间：2021-08-30 17:11
山羊传染性胸膜肺炎（Contagious caprine pleuropneumoniae,CCPP）是一种由山羊支原体山羊肺炎亚种（Mycoplasma capricolum subsp.capripneumoniae,Mccp）引起的高度接触性传染病。当前,对CCPP的研究多集中在病原分离鉴定和流行病学调查方面,关于该病的免疫致病机制研究报道不多。这主要受限于山羊免疫检测试剂种类太少,因而,建立CCPP小鼠模型,对于研究Mccp感染机体后的免疫应答机制有着重要的意义。本研究以F38模式株为材料,以BABL/c为试验动物,采用鼻内接种、胸腔接种、直接腹腔接种和抗生素预处理后腹腔接种四种接种方案构建Mccp诱导的CCPP小鼠模型,利用H.E染色、组织病理学评分和Mccp real-time PCR检测方法鉴定小鼠模型,利用real-time PCR方法检测肺组织中IL-17相关细胞因子、趋化因子及受体mRNA水平,利用ELISA检测血清和肺组织匀浆上清中IL-17含量,利用流式细胞术检测肺组织中中性粒细胞和巨噬细胞数量变化,探究了CCPP小鼠模型中IL-17参与Mccp诱导的肺部炎症反...
【文章来源】：西北农林科技大学陕西省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】：68 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
图1-1支原体的分类Figure1-1Classificationofmycoplasma
1-2 产生 IL-17 的细胞及其作用的靶细胞分泌的各种分子(Xu et al. 201Figure 1-2 IL-17-producing cells and various molecules secreted by target 族和 IL-17 相关细胞因子在粘膜表面具有重要的内源性功能，予了机体对各种胞外病原的抵御(Gurczynski et al. 2018)。此外，种细胞类型诱导促炎细胞因子、趋化因子和抗微生物肽产生，的宿主防御至关重要。在气道上皮细胞中，IL-17 靶向基因通常为胞因子和粘附分子(H. C. Tsai et al. 2013)。IL-17 可上调多种具括 CCL20、DEFB4、MUC5B/AC、S100A7、S100A8 和 LCN2）等(Contietal.2009)。此外，IL-17 刺激气道上皮细胞产生许多这些因子有助于向气道中招募中性粒细胞(Laanetal.2003;Laan明 IL-17 作用于人呼吸道上皮细胞，靶细胞分泌的 CCL28 可促迁移(H. C. Tsai et al. 2013)（图 1-2）。7+细胞和 IL-17 在粘膜屏障部位发挥重要作用胞分化受转录因子 STAT3、RORγt、AHR 的调节，并由 TGF-ngetal.2009)。IL-23 是扩大和稳定细胞群体必需的细胞因子，作
图 1-3 小鼠 Th17 细胞的分化(Korn et al. 2009)Figure 1-3 Differentiation of Th17 cells in mice免疫细胞类型在皮肤和粘膜表面以相对较高的数量广泛存在，对出反应，使得 IL-17 成为粘膜屏障部位（例如肺脏，肠和口咽）宿态的重要介导者(Gurczynski et al. 2018)。事实上，IL-17 通过多种免疫的保护性介质的功能。迄今为止，人们认识到：1）IL-17 在维演着重要角色；2）IL-17 促进抗菌因子的产生，IL-17 单独或与 I防御素（HBD）、再生（ReG）蛋白、S100 蛋白、cathelicidins 抗和乳铁蛋白，这些因子是屏障位点抑制病原体和共生体的关键；3innateIL-17-producing）细胞是战略性定位于屏障位点的第 道防细胞的募集和产生(Abuslemeetal.2017)。在肺部，γ T 细胞是早期源，其主要应对如 K.pneumonia、结核分枝杆菌（Mycobacteriumtu球菌（Streptococcus pneumoniae）等病原的感染(Ritchie et al. 201 al. 2010; Ye, Garvey, et al. 2001)。此外，早期 IL-17 应答可以进 答的发生。据报道，IL-17 可诱导趋化因子趋化 Th1 细胞到肺部协
【参考文献】：
期刊论文
[1]一例山羊传染性胸膜肺炎的诊断与防治[J]. 覃廷玉,张太华,温贵兰,汪德生,邓华成,徐雄真,杨芳,陈勇,彭晓军,林华方. 黑龙江畜牧兽医. 2019(04)
[2]苏中地区山羊传染性胸膜肺炎疫苗免疫优化研究[J]. 黄银云,胡新岗,郭广富,徐婷婷,许余良,孟苏婷,文雯. 黑龙江畜牧兽医. 2019(02)
[3]一例山羊传染性胸膜肺炎的诊治与体会[J]. 童洪生. 福建畜牧兽医. 2018(06)
[4]一起山羊传染性胸膜肺炎疫情的暴发调查[J]. 杨耀兰,罗晓燕,吕嵘,张晓舟,杨秋楠,赵焕云,赵明丽. 中国动物检疫. 2018(10)
[5]一例山羊传染性胸膜肺炎诊治及病因分析[J]. 魏文生. 中国动物保健. 2018(09)
[6]西藏那曲地区藏羚传染性胸膜肺炎流行现状与防控策略[J]. 彭鹏,秦思源,孙贺廷,解林红,初冬,耿海东,吴长江. 野生动物学报. 2018(04)
[7]陕北白绒山羊支原体肺炎感染诊疗体会[J]. 刘山,雷元元. 中国畜牧兽医文摘. 2018(06)
[8]绵羊小反刍兽疫、支原体混合感染诊断[J]. 周媛,朱萌,李志赛,曲伟杰,代飞燕,肖啸. 四川畜牧兽医. 2018(06)
[9]山羊支原体山羊肺炎亚种SYBR GreenⅠqRT-PCR检测方法的建立[J]. 林裕胜,江锦秀,张靖鹏,游伟,胡奇林. 农业生物技术学报. 2018(02)
[10]山羊支原体山羊肺炎亚种TaqMan探针实时荧光定量PCR检测方法的建立和应用[J]. 朱建勋,赵萍,郝华芳,陈胜利,翟肖辉,刘永生,储岳峰. 中国兽医科学. 2018(04)
博士论文
[1]奶山羊隐性乳腺炎的流行病学调查及S.aureus感染小鼠乳腺后Th细胞免疫应答机制研究[D]. 赵燕清.西北农林科技大学 2015
[2]我国山羊（接触）传染性胸膜肺炎病原学、流行病学研究及灭活疫苗的研制[D]. 储岳峰.中国农业科学院 2011
[3]实时定量PCR分析肠道正常菌群及其在实验性肝损伤研究中的初步应用[D]. 胡锦华.第三军医大学 2008
硕士论文
[1]山羊支原体山羊肺炎亚种膜抗原的筛选及单抗的制备[D]. 郑莹莹.中国农业科学院 2014
[2]山羊支原体山羊肺炎亚种的分离鉴定及其抗体间接血凝检测方法的建立[D]. 郭晗.中国农业科学院 2010
[3]山羊传染性胸膜肺炎病原的分离及其中国分离株的分子特征分析[D]. 张建华.中国农业科学院 2007
本文编号：3373182
【文章来源】：西北农林科技大学陕西省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】：68 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
图1-1支原体的分类Figure1-1Classificationofmycoplasma
1-2 产生 IL-17 的细胞及其作用的靶细胞分泌的各种分子(Xu et al. 201Figure 1-2 IL-17-producing cells and various molecules secreted by target 族和 IL-17 相关细胞因子在粘膜表面具有重要的内源性功能，予了机体对各种胞外病原的抵御(Gurczynski et al. 2018)。此外，种细胞类型诱导促炎细胞因子、趋化因子和抗微生物肽产生，的宿主防御至关重要。在气道上皮细胞中，IL-17 靶向基因通常为胞因子和粘附分子(H. C. Tsai et al. 2013)。IL-17 可上调多种具括 CCL20、DEFB4、MUC5B/AC、S100A7、S100A8 和 LCN2）等(Contietal.2009)。此外，IL-17 刺激气道上皮细胞产生许多这些因子有助于向气道中招募中性粒细胞(Laanetal.2003;Laan明 IL-17 作用于人呼吸道上皮细胞，靶细胞分泌的 CCL28 可促迁移(H. C. Tsai et al. 2013)（图 1-2）。7+细胞和 IL-17 在粘膜屏障部位发挥重要作用胞分化受转录因子 STAT3、RORγt、AHR 的调节，并由 TGF-ngetal.2009)。IL-23 是扩大和稳定细胞群体必需的细胞因子，作
图 1-3 小鼠 Th17 细胞的分化(Korn et al. 2009)Figure 1-3 Differentiation of Th17 cells in mice免疫细胞类型在皮肤和粘膜表面以相对较高的数量广泛存在，对出反应，使得 IL-17 成为粘膜屏障部位（例如肺脏，肠和口咽）宿态的重要介导者(Gurczynski et al. 2018)。事实上，IL-17 通过多种免疫的保护性介质的功能。迄今为止，人们认识到：1）IL-17 在维演着重要角色；2）IL-17 促进抗菌因子的产生，IL-17 单独或与 I防御素（HBD）、再生（ReG）蛋白、S100 蛋白、cathelicidins 抗和乳铁蛋白，这些因子是屏障位点抑制病原体和共生体的关键；3innateIL-17-producing）细胞是战略性定位于屏障位点的第 道防细胞的募集和产生(Abuslemeetal.2017)。在肺部，γ T 细胞是早期源，其主要应对如 K.pneumonia、结核分枝杆菌（Mycobacteriumtu球菌（Streptococcus pneumoniae）等病原的感染(Ritchie et al. 201 al. 2010; Ye, Garvey, et al. 2001)。此外，早期 IL-17 应答可以进 答的发生。据报道，IL-17 可诱导趋化因子趋化 Th1 细胞到肺部协
【参考文献】：
期刊论文
[1]一例山羊传染性胸膜肺炎的诊断与防治[J]. 覃廷玉,张太华,温贵兰,汪德生,邓华成,徐雄真,杨芳,陈勇,彭晓军,林华方. 黑龙江畜牧兽医. 2019(04)
[2]苏中地区山羊传染性胸膜肺炎疫苗免疫优化研究[J]. 黄银云,胡新岗,郭广富,徐婷婷,许余良,孟苏婷,文雯. 黑龙江畜牧兽医. 2019(02)
[3]一例山羊传染性胸膜肺炎的诊治与体会[J]. 童洪生. 福建畜牧兽医. 2018(06)
[4]一起山羊传染性胸膜肺炎疫情的暴发调查[J]. 杨耀兰,罗晓燕,吕嵘,张晓舟,杨秋楠,赵焕云,赵明丽. 中国动物检疫. 2018(10)
[5]一例山羊传染性胸膜肺炎诊治及病因分析[J]. 魏文生. 中国动物保健. 2018(09)
[6]西藏那曲地区藏羚传染性胸膜肺炎流行现状与防控策略[J]. 彭鹏,秦思源,孙贺廷,解林红,初冬,耿海东,吴长江. 野生动物学报. 2018(04)
[7]陕北白绒山羊支原体肺炎感染诊疗体会[J]. 刘山,雷元元. 中国畜牧兽医文摘. 2018(06)
[8]绵羊小反刍兽疫、支原体混合感染诊断[J]. 周媛,朱萌,李志赛,曲伟杰,代飞燕,肖啸. 四川畜牧兽医. 2018(06)
[9]山羊支原体山羊肺炎亚种SYBR GreenⅠqRT-PCR检测方法的建立[J]. 林裕胜,江锦秀,张靖鹏,游伟,胡奇林. 农业生物技术学报. 2018(02)
[10]山羊支原体山羊肺炎亚种TaqMan探针实时荧光定量PCR检测方法的建立和应用[J]. 朱建勋,赵萍,郝华芳,陈胜利,翟肖辉,刘永生,储岳峰. 中国兽医科学. 2018(04)
博士论文
[1]奶山羊隐性乳腺炎的流行病学调查及S.aureus感染小鼠乳腺后Th细胞免疫应答机制研究[D]. 赵燕清.西北农林科技大学 2015
[2]我国山羊（接触）传染性胸膜肺炎病原学、流行病学研究及灭活疫苗的研制[D]. 储岳峰.中国农业科学院 2011
[3]实时定量PCR分析肠道正常菌群及其在实验性肝损伤研究中的初步应用[D]. 胡锦华.第三军医大学 2008
硕士论文
[1]山羊支原体山羊肺炎亚种膜抗原的筛选及单抗的制备[D]. 郑莹莹.中国农业科学院 2014
[2]山羊支原体山羊肺炎亚种的分离鉴定及其抗体间接血凝检测方法的建立[D]. 郭晗.中国农业科学院 2010
[3]山羊传染性胸膜肺炎病原的分离及其中国分离株的分子特征分析[D]. 张建华.中国农业科学院 2007
本文编号：3373182
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