茶多酚对过氧化氢诱导鹅小肠上皮细胞氧化损伤的保护作用

发布时间：2021-10-25 12:44

　　试验旨在探讨茶多酚（TP）对过氧化氢（H₂O₂）引起鹅小肠上皮细胞的损伤作用。选取25～26胚龄马岗鹅胚为试验材料,通过酶消化法作原代鹅小肠上皮细胞分离与体外培养;采用不同浓度H₂O₂诱导细胞建立氧化应激损伤细胞模型,茶多酚预处理细胞氧化应激损伤干预;采用噻唑蓝（MTT）法测定细胞存活率,比色法检测细胞中丙二醛（MDA）含量、乳酸脱氢酶（LDH）、超氧化物歧化酶（SOD）和谷胱甘肽过氧化物酶（GSH-Px）活性。结果表明,成功获得鹅小肠上皮细胞;与对照组相比,400μmol·L^-1H₂O₂作用鹅小肠上皮细胞2 h,细胞出现明显损伤,细胞存活率显著降低（P<0.05）,而不同浓度茶多酚显著提高细胞存活率（P<0.05）;其中100μg·mL^-1茶多酚提前干预10 h明显改善H₂O₂导致的鹅小肠上皮细胞存活率下降（P<0.05）;抑制H₂

【文章来源】：东北农业大学学报. 2020,51(04)北大核心CSCD

【文章页数】：9 页

【文章目录】：
1 材料与方法
    1.1 试验材料
    1.2 主要试剂
    1.3 主要仪器
    1.4 样品采集及处理
        1.4.1 鹅小肠上皮细胞分离、纯化及鉴定
            1.4.1. 1 鹅小肠上皮细胞分离
            1.4.1. 2 鹅小肠上皮细胞纯化
            1.4.1. 3 鹅小肠上皮细胞鉴定
        1.4.2 茶多酚干预鹅小肠上皮细胞氧化应激损伤模型建立
            1.4.2. 1 H2O2诱导鹅小肠上皮细胞氧化应激损伤模型建立
            1.4.2. 2 TP对鹅小肠上皮细胞增殖的影响
            1.4.2. 3 TP预处理鹅小肠上皮细胞损伤模型建立
        1.4.3 鹅小肠上皮细胞活力检测
        1.4.4 与氧化应激相关指标MDA、LDH、SOD和GSH-Px测定
    1.5 统计与分析
2 结果与分析
    2.1 鹅小肠上皮细胞分离、纯化及鉴定
    2.2 茶多酚干预鹅小肠上皮细胞氧化应激损伤模型建立
        2.2.1 H2O2对鹅小肠上皮细胞存活率的影响
        2.2.2 H2O2作用2 h对鹅小肠上皮细胞形态的影响
        2.2.3 TP对鹅小肠上皮细胞存活率的影响
    2.3 TP对H2O2诱导鹅肠上皮细胞脂质过氧化（MDA）和乳酸脱氢酶（LDH）的影响
    2.4 TP对H2O2诱导的鹅肠上皮细胞抗氧化酶SOD和GSH-Px的影响
3 讨论与结论


【参考文献】：
期刊论文
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[3]奶牛小肠上皮细胞氧化损伤模型的构建[J]. 孔令联,崔艳军,杨金勇,李东平,刘东鑫,王翀,茅慧玲.  中国畜牧杂志. 2018(11)
[4]天然植物提取物在动物氧化应激中的研究概况[J]. 萨茹丽,杨斌,敖长金.  动物营养学报. 2018(06)
[5]热应激条件下机体发生氧化应激的机制[J]. 张轶凤,齐智利.  动物营养学报. 2017(09)
[6]我国鹅养殖业的现状及未来发展方向[J]. 韩文宝.  家禽科学. 2017(08)
[7]茶多酚和茶皂素对感染鸡球虫肉仔鸡的生长性能、肠道微生物和抗氧化性能的影响[J]. 何梦晓,蔡海莹,毛悦.  扬州大学学报(农业与生命科学版). 2017(02)
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[10]茶多酚作为饲料添加剂的应用基础[J]. 郜卫华,陈喜斌,刘晓华.  中国饲料. 2003(20)

硕士论文
[1]尿酸对鸡肠道氧化应激的影响和作用机制[D]. 吴建民.山东农业大学 2018
[2]饲喂不同纤维分解菌对鹅肠道菌群多样性的影响[D]. 马凤莲.吉林农业大学 2012
[3]茶多酚对奶牛乳腺上皮细胞氧化应激损伤的保护作用[D]. 王振云.南京农业大学 2011
[4]三种抗氧化剂的不同水平组合对肉鸭肠道组织结构和功能的影响[D]. 孙丹凤.武汉工业学院 2010



本文编号：3457428