棕榈酸经PPARα调控SR-BI影响卵巢颗粒细胞脂质蓄积
【学位单位】:南华大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:R711.75
【部分图文】:
为观察棕榈酸对KGN细胞内脂质的影响,我们采用不同浓度(0、100、200、300μmol/L)处理KGN细胞,油红O染色法检测细胞内脂滴数量。结果发现,与对照组相比,胞内脂滴数量增加,且呈浓度依赖性(图4.1),这个结果提示,棕榈酸促进KGN细胞脂质蓄积。图 4.1 油红 O 染色检测棕榈酸对 KGN 细胞脂质含量的影响(×400)Control:对照组,100 μmol/L PA:100 μmol/L 棕榈酸组,200 μmol/L PA:200 μmol/L 棕榈酸组,300 μmol/L PA:300 μmol/L 棕榈酸组.此外,为了观察 KGN 细胞内脂质含量的变化,我们采用不同浓度(0、100、200、300 μmol/L)处理 KGN 细胞,用 NBD-Cholesterol 孵育 KGN 细胞后,荧光显微镜下观察细胞内荧光的强度,结果发现细胞内绿色荧光强度增强,且呈浓度依赖性(图 4.2)。这些结果也提示
图 4.2 荧光标记胆固醇检测棕榈酸对 KGN 细胞脂质含量的影响(×200)trol:对照组,100 μmol/L PA:100 μmol/L 棕榈酸组,200 μmol/L PA:200 μmol/L 棕组,300 μmol/L PA:300 μmol/L 棕榈酸组.棕榈酸对 KGN 细胞 SR-BI以及 PPARα的影响.1 棕榈酸上调 KGN 细胞 SR-BI的表达GN 细胞脂质转运是受多种基因及蛋白调控的复杂过程,其中 S胞胆固醇转运的关键蛋白。为进一步深入探讨棕榈酸促进 KGN的作用机制,我们将 KGN 细胞用不同浓度的棕榈酸(0, 1ol/L)处理 24 h,采用 Western blot 的方法检测 SR-BI 的表达,结果组相比,SR-BI 表达量增加,且呈浓度依赖性(图 4.3)。这些榈酸上调 KGN 细胞 SR-BI的表达。
图 4.3 Western blot 检测棕榈酸对 KGN 细胞 SR-B1 蛋白表达的影响Control:对照组,100 μmol/L PA:100 μmol/L 棕榈酸组,200 μmol/L PA:200 μmol/L 棕榈酸组,300 μmol/L PA:300 μmol/L 棕榈酸组,(n=3).*P < 0.05, Control vs 100μmol/L PA,** P < 0.01Control vs 200μmol/L PA or 300μmol/L PA 组.此外为了验证棕榈酸对卵巢颗粒细胞 SR-BI 表达的影响,我们将 KGN 细胞用不同浓度的棕榈酸(0, 100, 200, 300μmol/L)处理 24 h,采用免疫细胞化学的方法检测 SR-BI 的表达,结果发现,与对照组相比,细胞膜上标记 SR-BI 的棕褐色增加,且呈浓度依赖性(图 4.4)。这些结果也提示,棕榈酸上调 KGN 细胞SR-BI 的表达。
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 李萌楠;江婷;宋爱娟;杨悦;杨妍梅;;静宁鸡PPARα基因克隆及生物信息学分析[J];甘肃畜牧兽医;2018年11期
2 李兴艳;杜勇军;;PPARα与2型糖尿病性骨质疏松的相关性研究进展[J];中国骨质疏松杂志;2018年08期
3 隋晓丹;;肝脂溶颗粒对非酒精性脂肪肝模型大鼠肝脏组织PPARα表达的影响[J];中国中医药现代远程教育;2018年09期
4 华慧英;徐港铭;林韩特;代曼云;汤治元;杨菊林;;核受体PPARα在小鼠代谢综合征发生发展中的作用与机制研究[J];营养学报;2019年01期
5 马萍;彭颖;杨静玉;李晓波;;PPARα、固醇调节元件结合蛋白和腺苷酸活化蛋白激酶在酒精性脂肪肝发病中作用的研究进展[J];中国药理学与毒理学杂志;2017年09期
6 朱天逸;张蕴琨;;运动对大鼠肝脏FFA、PPARα和CPT-1的影响[J];南京体育学院学报(自然科学版);2017年04期
7 孙婕怡;胥冰;;非酒精性脂肪肝小鼠肝内PPARα与Bax的表达及脂代谢变化[J];世界最新医学信息文摘;2018年06期
8 赵喜;王小蓉;程金妹;陈爱春;;二苯乙烯苷经PPARα信号通路激活自噬治疗大鼠高脂性脂肪肝的作用研究[J];南京医科大学学报(自然科学版);2018年12期
9 高莉;李长忠;;足月临产子宫平滑肌组织PPARα表达水平与子宫收缩性和炎性因子的相关性[J];中国医学前沿杂志(电子版);2017年12期
10 万蒞;;治疗高血脂症的新型PPARα激动剂Pemafibrate[J];药物评价研究;2018年08期
相关博士学位论文 前10条
1 郭欣欣;脊髓PPARα在肥胖大鼠神经病理性疼痛中的作用与机制研究[D];中国医科大学;2019年
2 邱峰;灯盏花乙素通过PPARα/γ-LXRα-ABCA1通路抗动脉粥样硬化作用机制研究[D];广州中医药大学;2018年
3 王燕;PPARα配体非诺贝特增加HO-1的表达减少脑出血后脑损伤的研究[D];山东大学;2019年
4 宋建元;PPARα激动剂非诺贝特对胰腺癌细胞放射敏感性的影响及机制研究[D];苏州大学;2017年
5 佘玉清;落新妇苷通过上调PPARα/γ对大鼠糖尿病肾病的保护作用及机制探讨[D];扬州大学;2017年
6 周辛波;基于结构的PPARα/γ双重激动剂的设计、合成与筛选[D];沈阳药科大学;2005年
7 隋博文;心脉通对心力衰竭大鼠模型代谢重构及β3受体、PPARα表达的影响[D];黑龙江中医药大学;2008年
8 宁丽军;尼罗罗非鱼过氧化物体增殖激活受体(PPARα)激活及其降脂机制研究[D];华东师范大学;2016年
9 谭胜玉;慢性间歇性低氧对HDL代谢的影响及相关机制的研究[D];中南大学;2014年
10 张红;PPARα生物活性改变在衰老内皮细胞功能失调的作用机制研究[D];第三军医大学;2007年
相关硕士学位论文 前10条
1 刘琪;棕榈酸经PPARα调控SR-BI影响卵巢颗粒细胞脂质蓄积[D];南华大学;2019年
2 邓卓军;过氧化物酶体增殖物激活受体α在非酒精性脂肪性肝炎发病机制中作用的研究[D];河北医科大学;2005年
3 杨丽祥;生脉饮、失笑散对阿霉素心脏毒性模型大鼠心肌能量代谢影响的对比研究[D];浙江中医药大学;2013年
4 张艳丽;非诺贝特对全脑缺血再灌注大鼠海马神经元损伤的作用及机制[D];重庆医科大学;2010年
5 华冰;甘草总黄酮的降血脂作用及机制的研究[D];宁夏医科大学;2015年
6 王莉;PPARα、PPARγ在利福平合用异烟肼诱导的大鼠肝损伤中的作用及其机制的初步探讨[D];安徽医科大学;2014年
7 张丽梅;淫羊藿苷抗压力超负荷致心肌纤维化的研究[D];遵义医学院;2014年
8 刘振德;几个系列抗Ⅱ型糖尿病药物的合成与分析[D];重庆大学;2003年
9 汤为香;过氧化物酶体增殖物激活受体-α(PPARα)激活对内质网应激介导的HepG2细胞凋亡的作用研究[D];安徽医科大学;2013年
10 纪永吉;牦牛PPARα、PPARγ、PPARδ基因的多态性与生长性状相关性研究[D];甘肃农业大学;2016年
本文编号:2853785
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/fuchankeerkelunwen/2853785.html