乙型肝炎病毒细胞核转位动态监测及HBV cccDNA荧光定量PCR分析研究

发布时间：2020-11-18 22:02

　　 乙型肝炎病毒(hepatitis B virus，HBV)的生活周期可以分成以下几个阶段：病毒黏附宿主细胞；病毒穿透细胞膜，进入细胞；释放病毒基因组；表达病毒基因产物；复制病毒基因组；组装病毒病毒颗粒；释放病毒。与其它大部分病毒不同，HBV基因组还会从细胞浆穿越核膜进入细胞核。HBV细胞核转位机制包括HBV从胞浆进入胞核和从胞核进入胞浆两个方面，有关这方面的研究已有二十余年，但仍未能形成统一见解。主要的焦点是HBV核衣壳是否进入细胞核。Kamimura，Mc Caul TF、Yamaguchi等通过电镜技术，发现HBV核衣壳可以通过细胞核孔从细胞核内移行到细胞浆中，并且发现核衣壳绝大多数定位在细胞核内，在胞浆中极少。核衣壳从细胞核到细胞浆的转位是通过细胞核孔；转位位点位于细胞核孔中心。与上述报道有分歧的研究认为，核孔直径最大只有25nm,而核衣壳直径在30～35nm，因此核衣壳直接通过核孔的可能性不大，Guiddtti LG等报道核心蛋白转基因小鼠肝细胞中，核衣壳绝大部分定位在细胞核中，只有当肝细胞处于有丝分裂期时，核衣壳才能从核内转到胞浆中，他们研究发现无论从胞核到胞浆，还是从胞浆到胞核，HBV核衣壳均不能穿越。HBV基因组核转位进入细胞核是HBV在肝细胞内复制的重要环节。本研究第一部分采用细胞生物学技术和同位素示踪技术分析HBV核衣壳蛋白、基因组在HBV侵入肝细胞过程中的定位及动态变化，并阐明在HBV穿越细胞核膜过程中，核衣壳蛋白是否需要先蜕去这个问题。 HBV共价闭合环状DNA(covalently closed circular，cccDNA)是HBV复制过 程中最为关键的中间体形态。HBV基因组在聚合酶作用下将部分双链开环结构 补足成完整双链开环结构，然后在细胞核内连接酶作用下把双链中原先存在的缺 口补平，形成共价闭合环状DNA结构，也就是cccDNA。HBV cccDNA在细胞 核内RNA聚合酶作用下，转录产生多种RNA，其中中间体RNA是形成子代HBV Dane颗粒前提RNA。从病毒生活周期分析，HBV cccDNA是病毒复制以及致病 机理的关键所在。此外，HBV cccDNA可与细胞核内的核蛋白结合，形成稳定 的微染色体(mini一chromosome)结构，抗病毒药物很难清除它。由于肝细胞往 往处在细胞复制周期的G。期，降解HBV cccDNA很难，所以它的自然半衰期就 比较长。除HBV基因组整合外，目前临床应用的抗HBV药物和正在研究的治 疗乙肝药物的最迫切需要解决的就是消除HBV cccDNA，但是目前没有便捷、 准确、灵敏度高的方法可以供临床动态监测HBV cccDNA。Southen blot是检测 HBV cccDNA的经典方法，但是该方法过程比较复杂，操作可控性比较差，而且灵 敏度不高。Addison等发展了一种能相对定量DHBV的竞争PCR方法，虽然该 方法灵敏度有了提高，但是在整个操作过程中仍需进行凝胶电泳、转膜和32P标 记的同位素探针杂交。PCR技术是非常灵敏、便捷的方法，但是由于HBV ccoDNA 与其它HBV DNA形态非常接近，很难设计出仅仅扩增HBV。 ccDNA而不扩增 其它HBV DNA的PCR方法。 本研究第二部分设计了一条特殊的嵌合引物，在该引物的5’端加入与HBV 基因组无关的序列，在通过一次单链延伸反应和一次实时荧光定量PCR程序， 成功把HBV。ccDNA和非cccDNA形态的其它HBV开环DNA结构区分开，并 通过荧光探针杂交，实现高灵敏度、实时定量检测。 论文一乙型肝炎病毒细胞核转位动态监测 一、HBV短期感染细胞制备 为研究HBV生活周期中病毒细胞核转位过程，需建立HBV感染细胞模型。HepGZ 细胞是人肝癌细胞株，无HBV基因组污染，生长速度快。根据文献报道，在DMSO 和一些细胞因子存在下，可以增强对HBV易感性，并且更适合HBV在细胞内复制 和表达。 HepGZ细胞长至细胞培养瓶80%面积时，进行细胞收集，并将细胞浓度调 节至5 X 10‘细胞/m1，然后以每孔Zml加入到6孔板培养。24小时后，换新培养 基(DMEM、5%FCS、1 .5%DMSO、66nM胰岛素、70 pM氢化可的松，l愉用新配) 2ml，培养24小时。丢弃上清液，加入HBV DNA阳性血清(HBV DNA载量调节至 5 xlo，拷贝/ml)。12小时后，吸弃上清。用DMEM培养基洗涤5次。加入培养基 (DMEM、5%FCS、1 .5%DMSO、66nM胰岛素、70 pM氢化可的松，临用新配)2ml。 间隔24小时，吸取上清，并补加新培养基。吸取的上清作HBV相关标志物动态 监测。 实时荧光定量PCR法检测培养上清中HBV DNA载量，方法参照说明书进行。 放射免疫测定(RIA)培养上清液中HBsAg、HbeAg，操作方法参照说明书进行。 免疫组化分析细胞HBcAg表达。HBV DNA阳性血清(5 X IJc叩ies/ml)感染 经DMSO、胰岛素、氢化可的松处理的HePGZ细胞后48小时，细胞分泌的HBV Dane达到最高值，为8.96x 10污copies/m1，此后逐渐减少，第5天仅为 7.98x 10飞oPies/ml，接近本底水平，。细胞分泌的HBv相关抗原也在感染后48小时， 达到高峰，HBsAg CPM值最高达1 750，逐渐降低，至第4天已接近临界水平。 HBeAg CPM值最高达1 325，逐渐降低，至第4天己接近临界水平。免疫组化结 果，在感染细胞中可以找到HBcAg阳性的细胞，在胞浆和胞核均有分布，主要 集中在细胞核
【学位单位】：浙江大学
【学位级别】：博士
【学位年份】：2004
【中图分类】：R373
【文章目录】：
一、 中文摘要
二、 英文摘要
三、 正文
    论文一 乙型肝炎病毒细胞核转位动态监测
        实验材料
        实验方法
        实验结果
        讨论
        结论
        参考文献
    论文二 乙型肝炎病毒cccDNA荧光定量PCR检测体系建立及应用
        实验材料
        实验方法
        实验结果
        讨论
        结论
        参考文献
四、 综述
五、 附录
六、 致谢

【相似文献】

相关期刊论文 前3条

1 张涛;高英堂;韩涛;;乙肝病毒cccDNA的研究进展[J];国外医学.病毒学分册;2005年06期

2 许海苗;王慧芬;;乙肝病毒cccDNA的研究进展[J];人民军医;2007年05期

3 陈勇;秦波;;乙型肝炎病毒cccDNA研究动态[J];胃肠病学和肝病学杂志;2007年04期

相关博士学位论文 前7条

1 潘万龙;HBV cccDNA形成过程中rcDNA负链冗余序列去除部位研究[D];重庆医科大学;2012年

2 刘飞;抗HBV药物的分子药效学评价模型以及减少HBV耐药的策略研究[D];中国协和医科大学;2010年

3 许君;抗乙型肝炎病毒药物体外筛选评价体系的建立及绿茶提取物抗乙肝病毒研究[D];中国科学院研究生院（武汉病毒研究所）;2007年

4 杨德刚;胡黄连苷抑制乙型肝炎病毒共价闭合环状DNA作用的体外研究[D];第二军医大学;2008年

5 赵克开;血清中嗜肝DNA病毒共价闭合环状DNA动态检测的实验和临床研究[D];第二军医大学;2007年

6 蒲春文;优化选择的串联序列amiRNA表达载体抗乙肝病毒的研究[D];大连医科大学;2011年

7 魏俊妮;胎盘细胞凋亡在HBsAg阳性孕妇PBMC母—胎转运机制中的作用[D];山西医科大学;2012年

相关硕士学位论文 前10条

1 周冬青;新型原位聚合酶链反应在检测肝组织中HBV cccDNA的临床应用价值研究[D];桂林医学院;2012年

2 赵旭;HBVcccDNA滚环扩增检测方法的建立[D];宁夏医科大学;2010年

3 李忠斌;慢性乙型肝炎耐药患者外周血单个核细胞HBV cccDNA耐药相关基因突变特点研究[D];中国人民解放军军医进修学院;2012年

4 陈建山;乙型肝炎病毒共价闭合环状DNA耐药相关位点变异检测方法的建立及应用[D];第二军医大学;2010年

5 白彦楼;HBV cccDNA水平及临床因素对判断肝细胞癌术后预后的价值[D];天津医科大学;2012年

6 姜然然;HBcAb阳性供肝组织内cccDNA检测及与肝移植术后乙肝复发的关系[D];天津医科大学;2013年

7 钟少华;慢性乙型肝炎患者肝细胞cccDNA变异与病毒学突破和复发关系的研究[D];广西医科大学;2013年

8 冯钧帅;血清cccDNA在阿德福韦酯治疗慢性乙型肝炎中的临床研究[D];兰州大学;2010年

9 张荣;HBV相关性肝病肝移植患者PBMCs及肝脏组织中HBVcccDNA检测[D];重庆医科大学;2011年

10 吴锋;HBV携带者血清HBVDNA及其标志物与肝组织cccDNA相关性的研究[D];中国医科大学;2009年

本文编号：2889259