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单纯疱疹病毒Ⅱ型潜伏相关转录体RL1序列抗凋亡作用的研究及其编码的microRNA的筛选

发布时间:2017-06-16 23:07

  本文关键词:单纯疱疹病毒Ⅱ型潜伏相关转录体RL1序列抗凋亡作用的研究及其编码的microRNA的筛选,由笔耕文化传播整理发布。


【摘要】:单纯疱疹病毒Ⅱ型(HSV-2)是人类疾病常见的病原体,在体内易引起持续潜伏感染,当免疫力低下时,可反复被激活,难以治愈。HSV-2的潜伏感染是生殖器疱疹易复发、难根治的主要原因。潜伏相关转录体(LAT)是HSV在潜伏感染时唯一大量存在且高表达的病毒RNA,LAT在HSV潜伏状态建立、维持和复活中发挥作用。目前有关LAT的作用假说很多,但具体是哪一种作用机制尚不明确。LAT不能编码蛋白质,但是LATs能够编码多个有功能的miRNA,microRNA能够通过与靶mRNA特异性的碱基配对,引起靶mRNA的降解或者抑制其翻译,从而对基因进行转录后表达的调控,miRNA可能在潜伏感染中发挥重要作用。在病毒潜伏期间LAT编码的miRNA对其靶基因进行干扰作用,抑制细胞凋亡,使病毒长期潜伏。 为此,本研究以HSV-2333基因组为模板PCR扩增HSV-2LAT RL1序列,构建重组真核表达载体pEGFP-RL1。通过脂质体和电转染两种方法转染将重组子转染进Vero细胞和PC12细胞,G418对重组子进行稳定筛选,确定稳定表达的细胞,研究重组子在Vero细胞GenBank及PC12细胞中的表达及其抗凋亡作用,并利用Real-time PCR的方法确定RL1所编码的microRNA,明确RL1是通过编码microRNA来执行抗凋亡功能的。 首先根据中的LAT RL1序列设计引物,以HSV-2333基因组为模板PCR扩增HSV-2LAT RL1片段,构建重组质粒pEGFP-RL1。 重组质粒转染入Vero细胞和PC12细胞,并通过RT-PCR和荧光显微镜确认LAT RL1序列在Vero细胞和PC12细胞中成功转录和表达。凋亡诱导剂放线菌素D(ActD)诱导建立细胞模型,重组质粒在转染试剂的作用下转染进Vero细胞和PC12细胞,G418对重组子进行抗性筛选,然后通过Hochest33342染色,荧光观察,,JC-1荧光染色从定性的角度确定RL1序列具有抗放线菌素D诱导的Vero细胞和PC12细胞的凋亡作用。 MTT结果表明转染了重组质粒pEGFP-RL1的Vero细胞和PC12细胞经放线菌素D凋亡诱导后细胞活性与未经任何处理的正常对照组相比,差异无统计学意义(P0.05),但高于放线菌素D诱导凋亡的细胞组及与转染空质粒。pEGFP-C2且放线菌素D诱导凋亡的细胞组,差异具有统计学意义(P0.05)。 流式结果表明,转染重组质粒pEGFP-RL1且经放线菌素D诱导凋亡组与正常对照组凋亡率差异无统计学意义(P0.05),而显著低于放线菌素D诱导凋亡组和转染空质粒pEGFP-C2且经放线菌素D诱导凋亡组,差异显著(P0.05)。 Caspase-3活性检测表明转染重组质粒的细胞组caspase-3活性与正常对照组无显著差异,而明显低于空质粒组差异有统计学意义(P 0.05)。 DNA Ladder重组质粒pEGFP-RL1且经放线菌素D诱导凋亡组与正常对照组未见凋亡条带,放线菌素D诱导凋亡组和转染空质粒pEGFP-C2且经放线菌素D诱导凋亡组出现大小不等的小片段。 ReaL-time PCR显示RL1序列能编码5种microRNA,(miR-H3, miR-H4-3p,miR-H4-5p,miR-H24和miR-H19),且在Vero细胞和在PC12细胞里面,这5中microRNA的表达量是有差异的,这说明microRNA的表达具有组织特异性。且LAT RL1主要是通过这5种microRNA来执行抗凋亡功能的。 综述以上研究结果表明,HSV-2LAT基因RL1片段具有抗放线菌素D在Vero和PC12细胞中诱导的细胞凋亡的功能。且此功能的发挥主要是通过RL1序列编码的microRNA来发挥的。本实验研究为探究有关HSV-2LAT介导的病毒的潜伏和复发的机制打下一定基础。
【关键词】:单纯疱疹病毒Ⅱ型 潜伏相关转录体 RL1 microRNA 抗凋亡
【学位授予单位】:华南理工大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2014
【分类号】:R373.11
【目录】:
  • 摘要5-7
  • ABSTRACT7-14
  • 英文缩略词表14-17
  • 第一章 绪论17-30
  • 1.1 单纯疱疹病毒Ⅱ型简述17-18
  • 1.2 HSV 的形态与结构18
  • 1.3 HSV-2 基因组结构和基因表达18-20
  • 1.3.1 HSV-2 基因组结构18-19
  • 1.3.2 HSV-2 的基因表达19-20
  • 1.4 单纯疱疹病毒的 LAT 基因20-21
  • 1.4.1 LAT 家族20
  • 1.4.2 LAT 的开放读码框(ORF)20-21
  • 1.4.3 LAT 的启动子21
  • 1.5 LAT 基因的作用机制21-27
  • 1.5.1 LAT 下调单纯疱疹病毒裂解基因的表达21-22
  • 1.5.2 LAT 的抗凋亡作用22-23
  • 1.5.3 LAT 抗凋亡作用的区域23
  • 1.5.4 LAT 抗凋亡作用的机制23-27
  • 1.5.4.1 LAT 通过编码蛋白质介导抗凋亡功能23-24
  • 1.5.4.2 潜伏相关转录体(LAT)通过编码 microRNA 执行抗凋亡功能24-27
  • 1.6 本课题主要内容及意义27-30
  • 1.6.1 本课题的研究意义27-29
  • 1.6.2 本课题的研究内容29-30
  • 第二章 单纯疱疹病毒Ⅱ型 LAT RL1 真核表达载体的构建30-49
  • 2.1 前言30
  • 2.2 主要实验材料30-34
  • 2.2.1 实验耗材和仪器30-31
  • 2.2.2 细胞、病毒株、菌株和质粒31-32
  • 2.2.3 主要试剂32
  • 2.2.4 溶液和培养基32-34
  • 2.3 技术路线34
  • 2.4 实验方法34-43
  • 2.4.1 复苏非洲绿猴肾细胞34
  • 2.4.2 传代非洲绿猴肾细胞34-35
  • 2.4.3 冻存非洲绿猴肾细胞35
  • 2.4.4 单纯疱疹病毒Ⅱ型培养35
  • 2.4.5 提取单纯疱疹病毒基因组 DNA35-37
  • 2.4.6 PCR 扩增单纯疱疹病毒Ⅱ型 LAT 基因 RL1 序列的37
  • 2.4.7 琼脂糖凝胶电泳鉴定 PCR 产物37-38
  • 2.4.8 凝胶回收纯化 PCR 产物38-39
  • 2.4.9 pEGFP-C2 真核表达质粒的扩增39-41
  • 2.4.9.1 大肠杆菌细胞感受态的制备39
  • 2.4.9.2 质粒 pEGFP-C2 转化39-40
  • 2.4.9.3 提取 pEGFP-C2 质粒40-41
  • 2.4.10 pEGFP-C2 空载体和单纯疱疹病毒Ⅱ型(HSV-2) LAT-RL1 序列的双酶切41
  • 2.4.11 双酶切产物的琼脂糖凝胶电泳验证41
  • 2.4.12 回收纯化双酶切的产物41
  • 2.4.13 单纯疱疹病毒Ⅱ型(HSV-2)潜伏相关转录体(LAT)RL1 序列和大肠杆菌质粒pEGFP-C2 连接41-42
  • 2.4.14 大肠杆菌 Top10 感受态细胞制备42
  • 2.4.15 连接产物的转化42
  • 2.4.16 阳性菌落 PCR 的初步鉴定42-43
  • 2.4.17 重组的真核表达载体大肠杆菌质粒 pEGFP-RL1 的提取43
  • 2.4.18 重组的真核表达载体大肠杆菌质粒 pEGFP-RL1 单双酶切鉴定43
  • 2.4.19 双酶切目的产物的琼脂糖凝胶电泳鉴定43
  • 2.4.20 重组真核表达载体 pEGFP-RL1 上 RL1 序列的测序鉴定43
  • 2.5 结果与讨论43-48
  • 2.5.1 Vero 细胞 CPE 病变43-44
  • 2.5.2 HSV-2 LAT 基因 RL1 序列的 PCR 扩增44
  • 2.5.3 阳性菌落的 PCR 鉴定44-45
  • 2.5.4 重组真核表达载体 pEGFP-C2/LAT RL1 的酶切和测序鉴定45
  • 2.5.5 重组真核表达载体 pEGFP-RL1 的测序鉴定45-48
  • 2.6 小结48-49
  • 第三章 单纯疱疹病毒Ⅱ型 LAT 基因 RL1 在真核细胞中的表达及鉴定49-61
  • 3.1 前言49
  • 3.2 主要实验材料49-51
  • 3.2.1 实验仪器和耗材49-50
  • 3.2.2 细胞、菌株和质粒50
  • 3.2.3 主要试剂50
  • 3.2.4 溶液50-51
  • 3.3 技术路线51
  • 3.4 实验方法51-57
  • 3.4.1 小提无内毒素质粒51-52
  • 3.4.2 质粒浓度的测定52
  • 3.4.3 Vero 细胞的培养52-53
  • 3.4.3.1 Vero 细胞的复苏52-53
  • 3.4.3.2 Vero 细胞的传代培养53
  • 3.4.3.3 Vero 细胞的冻存53
  • 3.4.4 PC12 细胞的培养53-54
  • 3.4.5 重组质粒转染 Vero 细胞和 PC12 细胞54-55
  • 3.4.6 RT-PCR 鉴定 LAT-RL1 转录55-57
  • 3.4.6.1 提取 Vero 和 PC12 细胞总的 RNA55-56
  • 3.4.6.2 逆转录得到第一链 cDNA56
  • 3.4.6.3 以逆转录所得的 cDNA 为模板进行 PCR56-57
  • 3.5 结果与讨论57-59
  • 3.5.1 Vero 细胞的培养57
  • 3.5.2 PC12 细胞的培养57-58
  • 3.5.3 质粒在 Vero 和 PC12 细胞中的表达58-59
  • 3.5.4 RT-PCR 检测 LAT- RL1 在 Vero 细胞中的表达59
  • 3.6 小结59-61
  • 第四章 单纯疱疹病毒Ⅱ型LAT-RL1片段对Vero细胞及PC12细胞的抗凋亡作用研究及 miRNA的筛选61-88
  • 4.1 前言61
  • 4.2 主要实验材料61-65
  • 4.2.1 仪器和设备61-62
  • 4.2.2 菌株、质粒和细胞62-63
  • 4.2.3 主要试剂63
  • 4.2.4 溶液63-65
  • 4.3 技术路线65
  • 4.4 实验方法65-75
  • 4.4.1 Vero 细胞及 PC12 细胞的的培养65
  • 4.4.2 质粒转染 Vero 和 PC12 细胞65-67
  • 4.4.3 G418 对筛选稳定转染的细胞67
  • 4.4.4 放线菌素 D(actinomycin D,ACTD)诱导 Vero 细胞及 PC12 细胞凋亡67-68
  • 4.4.5 MTT 法检测细胞增殖68
  • 4.4.6 流式细胞术检测细胞凋亡68
  • 4.4.7 Hoechst33342 荧光染色观察细胞凋亡68-69
  • 4.4.8 JC-1 细胞凋亡线粒体膜电位检测69-70
  • 4.4.9 DNA ladder 检测细胞凋亡70
  • 4.4.10 Caspase 3 凋亡蛋白检测70-71
  • 4.4.11 Vero 和 PC12 细胞总蛋白鉴定71-72
  • 4.4.11.1 Vero 和 PC12 细胞总蛋白的提取71
  • 4.4.11.2 SDS-聚丙烯酰胺凝胶鉴定、分离蛋白质71-72
  • 4.4.12 qRT-PCR 检测 HSV-2 LAT RL1 编码的 microRNA72-75
  • 4.4.12.1 引物的设计和合成73
  • 4.4.12.2 总 RNA 提取73
  • 4.4.12.3 逆转录实验73-74
  • 4.4.12.4 荧光定量 RT-PCR 检测方法的建立74
  • 4.4.12.5 统计学分析实验结果74-75
  • 4.5 结果与讨论75-85
  • 4.5.1 质粒 pEGFP-RL1 在 Vero 细胞中及 PC12 细胞中表达的荧光特点75
  • 4.5.2 放线菌素 D 诱导 Vero 细胞及 PC12 细胞凋亡模型的建立75-77
  • 4.5.3 电转化及 G418 细胞稳定表达筛选77
  • 4.5.4 MTT 法测重组质粒对 Vero 细胞及 PC12 细胞活性的影响77-78
  • 4.5.5 Hochest 33342 染色观察细胞凋亡78-79
  • 4.5.6 JC-1 荧光染色观察细胞凋亡79-80
  • 4.5.7 MTT 分析细胞增殖80-81
  • 4.5.8 流式细胞仪检测81-82
  • 4.5.9 DNA ladder 检测细胞凋亡82-83
  • 4.5.10 荧光分光光度计检测 Caspase3 活性83-84
  • 4.5.11 SDS-PAGE 检测蛋白的表达84
  • 4.5.12 qRT-PCR 检测稳定转染 pEGFP-RL1 的 Vero 细胞及 PC12 细胞中的 microRNA 表达84-85
  • 4.6 小结85-88
  • 结论与展望88-90
  • 结论88
  • 本论文的创新之处88
  • 展望88-90
  • 参考文献90-97
  • 攻读硕士学位期间取得的研究成果97-98
  • 致谢98-99
  • 附件99

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