当前位置:主页 > 医学论文 > 心血管论文 >

自杀基因ePNP诱导小鼠巨噬细胞凋亡的研究

发布时间:2018-08-30 11:26
【摘要】:研究背景及目的众多研究发现动脉粥样硬化(atherosclerosis,As)晚期巨噬细胞的凋亡造成As斑块形态学改变(尤其是帽/核比值的变小),影响斑块易损性,从而造成斑块不稳定,是导致各种心血管疾病的重要原因。As斑块中的巨噬细胞几乎都变成了泡沫细胞,巨噬细胞/泡沫细胞凋亡导致细胞外脂质核的发生和扩大,在脂质核的非细胞部分可发现凋亡残留体[1-3]。诱导巨噬细胞凋亡,对通过巨噬细胞凋亡建立As易损斑块模型进而了解As易损斑块发生发展的分子机制奠定良好基础。鉴于以往的众多研究已得出的结论,即巨噬细胞凋亡和斑块破裂的关系,从这层关系出发,如果能成功诱导巨噬细胞凋亡,那么就可以采取同样的方法诱导斑块内巨噬细胞凋亡来建立动脉粥样硬化易损斑块模型,从而建立一个体外可控可量化的斑块破裂模型,方法简单易行。因此,我们尝试一种方法来诱导巨噬细胞凋亡,为后期建立类似于人类As病变的易损斑块模型提供依据。大肠杆菌嘌呤核苷酸磷酸化酶(E.coli purine nucleoside phosphorylase,ePNP)基因有较强的细胞杀伤作用,因此一直是基因治疗的热点[1]。ePNP作为一种前药转换酶基因,能将某些腺嘌呤类似物,如fludarabine等转化成高毒性能自由穿透细胞膜的代谢产物,从而对细胞产生毒性作用,引起细胞死亡[4、5]。众多研究已经在肝癌,胰腺癌等肿瘤细胞中证实ePNP自杀基因系统良好的杀伤细胞作用[6-8]。由ePNP杀伤肿瘤细胞的原理,我们推测ePNP基因同样可以诱导巨噬细胞凋亡。因此,本实验拟采用巨噬细胞特异表达的ePNP转基因小鼠,探究自杀基因ePNP联合前体药物fludarabine对巨噬细胞凋亡的诱导作用。实验方法和结果1.自杀基因ePNP诱导转基因小鼠巨噬细胞凋亡(1)实验分ePNP转基因小鼠组和野生型小鼠组,在体外培养的各组小鼠腹腔巨噬细胞中分别加入浓度为0、0.125μg/ml、0.25μg/ml、0.5μg/ml、1.Oμg/ml和2.0μg/ml的前体药物氟达拉滨(fludarabine),采用活细胞计数试剂盒(CCK-8)检测腹腔巨噬细胞加药后的细胞存活率。CCK-8检测显示给药后ePNP小鼠腹腔巨噬细胞存活率明显下降,尤其在浓度为2.0μg/ml,细胞存活率仅为(10.8±0.8)%。(2)给ePNP转基因小鼠和野生型小鼠腹腔注射剂量分别为0、10mg/kg、20mg/kg、60mg/kg的fludarabine,一天两次,给药五天,采用流式细胞术检测加入fludarabine后腹腔巨噬细胞的凋亡情况。流式细胞术结果显示给药后其腹腔巨噬细胞凋亡明显增加,并且存在剂量效应关系。(3)给ePNP转基因小鼠和野生型小鼠腹腔注射剂量分别为0、10mg/kg、20mg/kg、60mg/kg的fludarabine,一天两次,共给药五天,取材(肺、脾),采用原位凋亡检测试剂盒(TUNEL法)检测加入fludarabine后组织巨噬细胞(肺、脾)的凋亡情况。TUNEL结果也显示给药后其肺、脾巨噬细胞凋亡明显增加,并且存在剂量效应关系。CCK-8、流式细胞术和TUNEL法均显示野生型小鼠给药后没有明显巨噬细胞凋亡。结果有统计学意义。2.SR-A1-ePNP 小鼠和 APOE-/-小鼠杂交培养 SR-A1-ePNP/APOE-/-将筛选出的SR-A1-ePNP转基因纯合子小鼠和APOE-/-小鼠杂交,获得的F1代中,经鉴定为ePNP阳性的小鼠,继续杂交,获得的F2代中小鼠,采用普通PCR鉴定ePNP基因和APOE-/-基因。后代中ePNP阳性和APOE基因敲除的小鼠即为目的小鼠。结论自杀基因ePNP能在前体药物fludarabine协同作用下,诱导SR-A1-ePNP转基因小鼠巨噬细胞凋亡。
[Abstract]:BACKGROUND AND OBJECTIVE Numerous studies have found that apoptosis of macrophages in advanced atherosclerosis (As) causes morphological changes of As plaque (especially the decrease of cap/nucleus ratio) and affects plaque vulnerability, resulting in plaque instability, which is an important cause of various cardiovascular diseases. Macrophage/foam cell apoptosis leads to the occurrence and expansion of extracellular lipid nuclei. Apoptosis residues can be found in the non-cellular part of the lipid nucleus [1-3]. Basis. In view of the conclusions of many previous studies, that is, the relationship between macrophage apoptosis and plaque rupture, from this relationship, if macrophage apoptosis can be successfully induced, then the same method can be used to induce apoptosis of intraplaque macrophages to establish Atherosclerotic Vulnerable Plaque model, thereby establishing a body. Therefore, we try to find a way to induce macrophage apoptosis to provide a basis for the later establishment of vulnerable plaque model similar to human As lesions. Escherichia coli purine nucleoside phosphorylase (ePNP) gene has stronger cells. As a prodrug converting enzyme gene, ePNP can transform some adenine analogues, such as fludarabine, into metabolites with high toxicity and free penetration through cell membrane, thus producing toxic effects on cells and causing cell death. It was confirmed that ePNP suicide gene system had a good killing effect on tumor cells [6-8]. According to the principle of ePNP killing tumor cells, we speculated that ePNP gene could also induce macrophage apoptosis. Therefore, this study was designed to explore the effect of ePNP suicide gene combined with fludarabine on macrophages by using macrophage-specific expression of ePNP transgenic mice. The suicide gene ePNP induced apoptosis of macrophages in transgenic mice (1) The suicide gene ePNP induced apoptosis of macrophages in transgenic mice and wild type mice (1) The ePNP transgenic mice and wild type mice were divided into two groups. The mice peritoneal macrophages were cultured in vitro with 0,0.125 ug/ml, 0.25 ug/ml, 0.5 ug/ml, 1.O ug/ml and 2.0 ug/ml precursors, respectively. CCK-8 assay showed that the survival rate of peritoneal macrophages in ePNP mice decreased significantly, especially at the concentration of 2.0 ug/ml, and the cell survival rate was only (10.8 0.8)%. (2) The survival rate of ePNP transgenic mice and wild-type mice was small. The apoptosis of peritoneal macrophages was detected by flow cytometry after intraperitoneal injection of fludarabine at doses of 0,10 mg/kg, 20 mg/kg and 60 mg/kg twice a day for five days. Fludarabine of 0,10 mg/kg, 20 mg/kg and 60 mg/kg were injected into abdominal cavity of gene mice and wild type mice twice a day for five days. The apoptosis of macrophages (lung and spleen) was detected by in situ apoptosis assay kit (TUNEL). CCK-8, flow cytometry and TUNEL showed that there was no significant macrophage apoptosis in wild-type mice. The results were statistically significant. E-/-mice were hybridized and identified as ePNP-positive mice in the F1 generation. F2 generation mice were hybridized and identified as ePNP gene and APOE-/-gene by ordinary PCR. The ePNP-positive and APOE-knockout mice in the offspring were the target mice. Conclusion The suicide gene ePNP can induce SR-A1-eP in synergy with the precursor drug fludarabine. Macrophages apoptosis in NP transgenic mice.
【学位授予单位】:北京协和医学院
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2017
【分类号】:R543.5

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 郑振群;;关于巨噬细胞的几个问题[J];山西医药杂志;1974年12期

2 ;豚鼠巨噬细胞经P_(204)处理后的抗石英细胞毒作用[J];国外医学参考资料(卫生学分册);1976年04期

3 邓侠进;;巨噬细胞的抗癌作用[J];遵义医学院学报;1979年02期

4 陆天才;;疾病对肺巨噬细胞的影响[J];煤矿医学;1982年01期

5 郭瑞清;祝彼得;;一种分离巨噬细胞的简单方法[J];滨州医学院学报;1990年02期

6 谢志坚;巨噬细胞异质性[J];医学综述;2001年06期

7 饶艳;运动及神经内分泌对巨噬细胞功能的调节[J];体育与科学;2002年05期

8 朱金元;;吸烟对肺巨噬细胞的影响[J];浙江医学教育;2003年01期

9 张俊峰;过氧化物酶体增殖物激活受体与单核/巨噬细胞系[J];医学综述;2004年03期

10 韦锦学;顾军;;巨噬细胞的激活诱导死亡[J];生命科学;2006年02期

相关会议论文 前10条

1 史玉玲;王又明;丰美福;;巨噬细胞激活作用的研究[A];中国细胞生物学学会第五次会议论文摘要汇编[C];1992年

2 吴国明;周辉;;巨噬细胞和创伤纤维化[A];2009年浙江省骨科学学术年会论文汇编[C];2009年

3 李奇;王海杰;;透明质酸对于淋巴结巨噬细胞运动的影响[A];解剖学杂志——中国解剖学会2002年年会文摘汇编[C];2002年

4 刘革修;欧大明;刘军花;黄红林;廖端芳;;丙丁酚在体外能抑制巨噬细胞脂质氧化介导的低密度脂蛋白氧化并调节氧化巨噬细胞的分泌功能[A];面向21世纪的科技进步与社会经济发展(下册)[C];1999年

5 叶金善;杨丽霞;郭瑞威;;环氧化酶-2/前列腺素E_2在血管紧张素Ⅱ刺激巨噬细胞表达细胞外基质金属蛋白酶诱导因子中的作用[A];第十三次全国心血管病学术会议论文集[C];2011年

6 秦帅;陈希;孔德明;;构建由绿色荧光标记巨噬细胞的转基因斑马鱼系[A];贵州省中西医结合内分泌代谢学术会论文汇编[C];2012年

7 武剑华;徐惠绵;;肿瘤相关巨噬细胞在胃癌中的相关研究[A];第9届全国胃癌学术会议暨第二届阳光长城肿瘤学术会议论文汇编[C];2014年

8 何军;;血凝素样氧化型低密度脂蛋白受体升高巨噬细胞内胆固醇水平[A];中华医学会第11次心血管病学术会议论文摘要集[C];2009年

9 宋盛;周非凡;邢达;;PDT诱导的凋亡细胞对巨噬细胞NO合成的影响[A];第七届全国光生物学学术会议论文摘要集[C];2010年

10 张磊;朱建华;黄元伟;姚航平;;血管紧张素Ⅱ对巨噬细胞(THP-1重细胞)凝集素样氧化低密度脂蛋白受体表达的影响[A];浙江省免疫学会第五次学术研讨会论文汇编[C];2004年

相关重要报纸文章 前10条

1 通讯员 李静 记者 胡德荣;恶性肿瘤巨噬细胞未必皆“恶人”[N];健康报;2014年

2 兰克;以尝试用巨噬细胞治瘫痪[N];科技日报;2000年

3 薛佳;免疫系统——人体的“卫士”[N];保健时报;2009年

4 记者 胡德荣;铁泵蛋白“维稳”铁代谢作用首次阐明[N];健康报;2011年

5 侯嘉 何新乡;硒的神奇功能[N];中国食品质量报;2003年

6 唐颖 倪兵 陈代杰;巨噬细胞泡沫化抑制剂研究快步进行[N];中国医药报;2006年

7 刘元江;新发现解释肿瘤为何易成“漏网之鱼”[N];医药经济报;2007年

8 本报记者 侯嘉 通讯员 何新乡;今天你补硒了吗[N];医药经济报;2003年

9 左志刚;升血小板药使用注意[N];医药养生保健报;2007年

10 本报记者 熊江雪;“自杀基因”挑战“癌王”[N];健康时报;2005年

相关博士学位论文 前10条

1 周赤燕;巨噬细胞MsrA对动脉粥样硬化的干预研究[D];武汉大学;2013年

2 章桂忠;TIPE2蛋白调控细胞增殖和炎症的机制研究[D];山东大学;2015年

3 张瑜;DKK1抑制巨噬细胞内脂质沉积及其相关分子机制[D];山东大学;2015年

4 孟涛;异丙酚对心脏收缩功能的抑制作用及其对巨噬细胞分泌功能调节的机制研究[D];山东大学;2015年

5 周兴;基于酵母微囊构建新型口服巨噬细胞靶向递送系统的研究[D];第三军医大学;2015年

6 蒋兴伟;Tim-3对巨噬细胞极化的调控机制研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2015年

7 刘伯玉;清道夫受体A介导小鼠巨噬细胞吞噬钩端螺旋体研究[D];上海交通大学;2013年

8 杨绍俊;miRNA-155介导ESAT-6诱导巨噬细胞凋亡的分子机制及其在结核诊断中的作用[D];第三军医大学;2015年

9 翟光耀;单核/巨噬细胞Ly6C~(low)亚群在心肌梗死后瘢痕形成期的抗炎特性研究[D];北京协和医学院;2014年

10 韩露;TRB3介导的脂肪组织巨噬细胞极化与糖尿病冠状动脉病变关系的研究[D];山东大学;2015年

相关硕士学位论文 前10条

1 于敏敏;自杀基因ePNP诱导小鼠巨噬细胞凋亡的研究[D];北京协和医学院;2017年

2 马春梅;AP0E~(-/-)小鼠TLR9介导巨噬细胞极化效应对动脉粥样硬化作用的研究[D];福建医科大学;2015年

3 张译丹;盐皮质激素受体拮抗剂调控巨噬细胞表型对实验性矽肺的作用[D];河北医科大学;2015年

4 卢文冉;HCV core蛋白作用的巨噬细胞培养上清对肝细胞生物学性状的影响[D];河北医科大学;2015年

5 李文建;载脂蛋白E影响巨噬细胞因子表达及分型的机制研究[D];河北医科大学;2015年

6 曹爽;高糖对巨噬细胞TLR4信号转导的调节作用[D];河北医科大学;2015年

7 宁程程;肿瘤相关巨噬细胞在子宫内膜癌雌激素敏感性中的作用及机制研究[D];复旦大学;2014年

8 高龙;PLD4在肿瘤相关巨噬细胞抑制结肠癌增殖中的作用研究[D];成都医学院;2015年

9 任虹;感染期子宫颈癌U14细胞荷瘤小鼠抑制巨噬细胞CCL5分泌的机制研究[D];河北医科大学;2015年

10 李美玲;双酚A对小鼠腹腔巨噬细胞极化影响的体外研究[D];安徽医科大学;2015年



本文编号:2212923

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/xxg/2212923.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户4820b***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com