Ang-(1-7)通过抑制NCX1/Ca 2+ /CaMKII通路拮抗AngⅡ诱导的成纤维细胞表型转化的实验研究
发布时间:2021-01-21 00:27
背景:成纤维细胞是心脏内的重要细胞组成成分,成纤维细胞的功能变化与心肌细胞联系紧密,直接影响到心肌的的发育、肥大、机械和电学的活动。心脏成纤维细胞的表型转化(fibroblast myofibroblast transition,FMT)与心肌炎症、心肌肥大以及心肌梗死预后密切相关。在外界刺激下,成纤维细胞增殖、分化,分泌大量的细胞外基质(extra-cellular matrix proteins,ECM),从而引起心脏纤维化,发生纤维化重构,诱发心律失常以及降低心脏功能。近年来发现钠/钙交换蛋白(Sodium/calcium exchange protein,NCX)、钙/钙调蛋白依赖性蛋白激酶II(Calcium/calmodulin dependent protein kinase II,CaMKII)是重要的介导FMT的信号分子,其中CaMKII直接介导了血管紧张素II(Angiotensin II,AngⅡ)诱导的FMT。本课题组前期已经证实心外膜高表达血管紧张素转化酶2(Angiotensin converting enzyme 2,ACE2)可以增加心房肌中血管紧张素-...
【文章来源】:重庆医科大学重庆市
【文章页数】:141 页
【学位级别】:博士
【文章目录】:
英汉缩略语名词对照
中文摘要
英文摘要
前言
第一部分 :Ang-(1-7)抑制NCX1及CaMKII活性降低AngⅡ诱导的成纤维细胞增殖和表型转化
1 主要材料和仪器设备
1.1 主要试剂和材料
1.2 主要试剂的配制
1.3 主要实验仪器
2 实验方法
2.1 新生SD乳鼠原代心脏成纤维细胞培养与鉴定
2.2 细胞实验分组
2.3 AngⅡ诱导成纤维细胞表型转化模型
2.4 成纤维细胞NCX1、NCX3亚型的表达
2.5免疫荧光检测α-SMA、KI67
2.6 DHE检测细胞内ROS
2.7 Western blot
2.8 细胞内钙离子检测
2.9 一氧化氮检测
2.10 定量PCR
2.11 统计学分析
3 结果
3.1 成纤维细胞鉴定结果
3.2 AngⅡ有效的药物浓度和处理时间
3.3 NCX1及NCX3在成纤维细胞及心脏中的表达
3.4 NCX1、CaMKII激活与成纤维细胞表型转化
3.5 .细胞内活性氧水平
3.6 Western blot结果
3.7 细胞内钙离子变化
3.8 定量PCR检测胶原交联相关基因的表达
4 讨论
小结
参考文献
第二部分 :Ang-(1-7)/eNOS通路激活抑制AngⅡ/CaMKII诱导的大鼠心脏纤维化重构
1 主要材料和仪器设备
1.1 主要试剂和材料
1.2 主要试剂的配制
1.3 主要实验仪器
2 实验方法
2.1 AngⅡ诱导的Sprague Dawley大鼠纤维化模型建立
2.2 模型组大鼠血压的检测
2.3 Western blot
2.4 病理组织学检查
3 结果
3.1 AngⅡ诱导的大鼠心脏纤维化重构
3.2 动物心脏DHE染色结果
3.3 动物心脏组化染色结果
3.4 动物心脏免疫荧光染色结果
3.5 动物心脏Western blot结果
4 讨论
小结
参考文献
第三部分 :Cx43依赖性的CaMKII和TGF-β1信号通路介导AngⅡ诱导的心脏成纤维细胞表型转化
1 主要材料和仪器设备
1.1 主要试剂和材料
1.2 主要实验仪器
2 实验方法
2.1 实验分组
2.2 Western blot检测
2.3 细胞荧光免疫双标检测Cx43与α-SMA
2.4siRNA转染干扰TGF-β1
2.5 免疫组化检测心肌组织Cx43的表达
2.6 免疫荧光双标检测心肌组织中Cx43与α-SMA的表达
3 结果
3.1 Ang-(1-7)及AIP抑制心机肥大及纤维化
3.2 抑制CaMKII活性恢复心室肌Cx43表达
3.3 抑制CaMKII激活增加成纤维细胞Cx43表达
3.4 Westren blot检测心肌中CaMKII的表达
3.5 AngⅡ促进体外培养的成纤维细胞Cx43表达
3.6 TGF-β1si-RNA抑制成纤维细胞Cx43的表达
3.7 抑制CaMKII活性降低成纤维细胞中Cx43、α-SMA的表达
4 讨论
小结
参考文献
全文总结
文献综述
参考文献
致谢
攻读博士学位期间完成的论文
本文编号:2990080
【文章来源】:重庆医科大学重庆市
【文章页数】:141 页
【学位级别】:博士
【文章目录】:
英汉缩略语名词对照
中文摘要
英文摘要
前言
第一部分 :Ang-(1-7)抑制NCX1及CaMKII活性降低AngⅡ诱导的成纤维细胞增殖和表型转化
1 主要材料和仪器设备
1.1 主要试剂和材料
1.2 主要试剂的配制
1.3 主要实验仪器
2 实验方法
2.1 新生SD乳鼠原代心脏成纤维细胞培养与鉴定
2.2 细胞实验分组
2.3 AngⅡ诱导成纤维细胞表型转化模型
2.4 成纤维细胞NCX1、NCX3亚型的表达
2.5免疫荧光检测α-SMA、KI67
2.6 DHE检测细胞内ROS
2.7 Western blot
2.8 细胞内钙离子检测
2.9 一氧化氮检测
2.10 定量PCR
2.11 统计学分析
3 结果
3.1 成纤维细胞鉴定结果
3.2 AngⅡ有效的药物浓度和处理时间
3.3 NCX1及NCX3在成纤维细胞及心脏中的表达
3.4 NCX1、CaMKII激活与成纤维细胞表型转化
3.5 .细胞内活性氧水平
3.6 Western blot结果
3.7 细胞内钙离子变化
3.8 定量PCR检测胶原交联相关基因的表达
4 讨论
小结
参考文献
第二部分 :Ang-(1-7)/eNOS通路激活抑制AngⅡ/CaMKII诱导的大鼠心脏纤维化重构
1 主要材料和仪器设备
1.1 主要试剂和材料
1.2 主要试剂的配制
1.3 主要实验仪器
2 实验方法
2.1 AngⅡ诱导的Sprague Dawley大鼠纤维化模型建立
2.2 模型组大鼠血压的检测
2.3 Western blot
2.4 病理组织学检查
3 结果
3.1 AngⅡ诱导的大鼠心脏纤维化重构
3.2 动物心脏DHE染色结果
3.3 动物心脏组化染色结果
3.4 动物心脏免疫荧光染色结果
3.5 动物心脏Western blot结果
4 讨论
小结
参考文献
第三部分 :Cx43依赖性的CaMKII和TGF-β1信号通路介导AngⅡ诱导的心脏成纤维细胞表型转化
1 主要材料和仪器设备
1.1 主要试剂和材料
1.2 主要实验仪器
2 实验方法
2.1 实验分组
2.2 Western blot检测
2.3 细胞荧光免疫双标检测Cx43与α-SMA
2.4siRNA转染干扰TGF-β1
2.5 免疫组化检测心肌组织Cx43的表达
2.6 免疫荧光双标检测心肌组织中Cx43与α-SMA的表达
3 结果
3.1 Ang-(1-7)及AIP抑制心机肥大及纤维化
3.2 抑制CaMKII活性恢复心室肌Cx43表达
3.3 抑制CaMKII激活增加成纤维细胞Cx43表达
3.4 Westren blot检测心肌中CaMKII的表达
3.5 AngⅡ促进体外培养的成纤维细胞Cx43表达
3.6 TGF-β1si-RNA抑制成纤维细胞Cx43的表达
3.7 抑制CaMKII活性降低成纤维细胞中Cx43、α-SMA的表达
4 讨论
小结
参考文献
全文总结
文献综述
参考文献
致谢
攻读博士学位期间完成的论文
本文编号:2990080
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/xxg/2990080.html
最近更新
教材专著