Fgf23表达影响小鼠DVT形成的研究

发布时间：2021-06-09 01:43

　　深静脉血栓形成（DVT）指血液在静脉内异常凝结,致使部分或完全阻塞官腔,造成重要器官栓塞,严重时威胁生命。DVT受多因素和复杂机制调控,涉及内皮细胞、血小板、白细胞三者之间的相互作用,它们的形态、功能变化,维持着局部静脉内皮微环境的动态平衡,决定着微环境是否向有利于血栓形成的方向发展,对凝血级联反应的触发起关键作用。然而,对疾病进展的分子病理生理学和机制仍知之甚少。Fgf23是一种骨源性磷尿激素,可能成为识别DVT患者的有用生物标志物,其与心血管、炎症和免疫相关。我们通过统计、动物组织实验和生物信息学进行多维数据分析。在研究样本中,D组（n=3）静脉内皮样本中的Fgf23表达较C组（n=3）有明显降低,血栓湿重及长度也都明显降低,其差异有统计学意义（P<0.05）。通过对Fgf23的研究,可能会对DVT的病理生理学产生新的生物学见解。并完善我们目前对DVT的理解和患者的管理。[目 的]1、小鼠Fgf23的表达是否对深静脉血栓的形成有影响。2、在小鼠上Klf15是否调控Fgf23基因的表达。3、Klf15是否通过影响Fgf23的表达进而调控DVT的形成。[方 法]实验一:狭窄法构建... 

【文章来源】：昆明医科大学云南省

【文章页数】：61 页

【学位级别】：硕士

【部分图文】：

图４鼠下腔静脉内皮细胞Ｆｇｆ２３的表达变化??ｕｒ．Ｅｒｏｎ?ｏｎｕｓｅｎｅｏｒ?ｖｎａｖａ?ｅｎｃｅｓ??

ｗｅｉｇｈ??ｖｖｅｉｇｈｔ／ｌｅｎｇｔｈ??２０－．?Ｉ—＾??ｅ?ｈ＾Ｈ??Ｉ１５＇?—麵?ｒ°＂?＿?＿ｕ．??＊?：ｌＩＬ?１１１?ｉ??，女?／?／?，＃?／，??＜／??图５．组小鼠血栓湿重、湿重长度比??Ｆｉｇｕｒｅ?５．?Ｗｅｔ?ｗｅｉｇｈｔ?ａｎｄ?ｗｅｔ?ｗｅｉｇｈｔ／ｌｅｎｇｔｈ?ｏｆ?ｍｉｃｅ?ｔｈｒｏｍｂｕｓ??实验二：狭窄法构建Ｋｉｎ?５基因敲除Ｃ５７ＢＬ／６纯合子小鼠深静脉血栓形成??模型，利用ｒｃａＨｉｍｃ－ＰＣＲ、ｑＰＣＲ检测下游Ｆｇｆ２３表达变化。??材料和方法??本课题组前期研宂发现，在小鼠ＤＶＴ梭型屮千扰Ｋｌｆｌ５表达后，静脉内皮??细胞Ｋｌｌ＇１５表达明Ｗ．卜＇降，相关分子如Ａｎｋｒｄｌ、Ｆｇｆ２３、丨Ｌ－１Ｐ、Ｍｍｐ－９等表达??随之变化，而血栓形成叫显增加，提示ＫＵ＇１５?ｈ『能迎过调控下游蕋因的农达来调??拧血柃的形成。木实验将继续在在动物实验中，通过静脉注射Ｆｇｆ２３－ｓｉＲＮＡ?｜?？??扰Ｋｌｆｌ５基函敲除Ｃ５７ＢＬ／６纯合子小鼠中的Ｆｇｆ２３基因表达，采用ｒｅａｌ－ｔｉｍｅ－ＰＣＲ、??ｑＰＣＲ检测卜＇游Ｆｇｆ２３农达免化。??１、实验材料??１．１实验动物选娶饲养??昆叨医科大学ＳＰＦ级实验动物房购买ＫＨ＇１５基因敲除Ｃ５７ＢＬ／６纯合子小鼠??（Ｃ５７ＢＬ／６－Ｋｌｆｌ５－／－）?１２?只，Ｃ５７ＢＬ／６?野生型小鼠?３?只，共?１５?只，ＳＰＦ?饲养，??分４笼，纯合子每笼４只，野生型每笼３只；体重１７－２０克，雌雄不限，随机分??组，予以灭菌瓜子及标准饲料混合饲养，饲养小鼠房间要求恒溫２２？２６°Ｃ，湿??３３??

ＮＡ－ＫＯ－２?１１?１９．４２?２５．?１４?２．?９６３２１５６??Ｆｇｆ２３－ｓｉＲＮＡ－ＫＯ－３?１２?１８．?５３?２６．９２?４．?５３２１５４９??ＤＶＴ－ＷＴ－１?１３?１８．７４?２４．?５８?５．?２１６３２５３??ＤＶＴ－ＷＴ－２?１４?１９．７８?２４．１１?６．?２１５３６５４??ＤＶＴ－ＷＴ－３?１５?１９．２９?２５．?９５?６．２５１３６５９??１０－．?＊?１??Ｓ）?８－?Ｔ?丁??Ｈｉ．??Ｃ＾°??图７．小鼠下腔静脉内皮细胞Ｆｇｆ２３的表达变化??Ｆｉｇｕｒｅ?７．ｐｒｅｓｓｉｏｎ?ｏｆ?Ｆｇｆ２３?ｉｎ?ｍｉｃｅ?ｉｎｆｅｒｉｏｒ?ｖｅｎａ?ｃａｖａ?ｅｎｄｏｔｈｅｌｉａｌ?ｃｅｌｌｓ??４小鼠血栓湿重、长度、湿重长度比??将所有分组内全部小鼠用颈椎脱臼法处死后，分离小鼠下腔静脉成栓段血??管，仔细分离血栓并编号计数；用精密电子天秤称重、电子游标卡尺测量长度。??各组小鼠血栓湿重、长度、湿重／长度均采用单因素方差分析，两两进行组间比??较。Ａ组小鼠未经造模，均未成栓。Ｂ组、Ｃ组、Ｄ组、Ｅ组血栓湿重分别为??１７．?８０±３．８０、１８．?５２±４．?１３、４．?７２土?１．８１、１４．?８０±３．?８０。Ｄ?组与?Ｃ?组血栓湿重??４０??


本文编号：3219653