当前位置:主页 > 医学论文 > 药学论文 >

铁蛋白-海藻酸钠包埋ACE抑制肽及细胞吸收机制的研究

发布时间:2020-09-26 17:30
   本文以马脾脱铁蛋白(Horse spleen apoferritin,HSF)和海藻酸钠(Sodium alginate,SA)作为纳米包埋载体,利用铁蛋白在极酸条件下可逆组装特性和海藻酸钠的控释作用,包埋血管紧张素转化酶(Angiotensin converting enzyme,ACE)抑制肽丙氨酸-组氨酸-亮氨酸-亮氨酸(Ala-His-Leu-Leu,AHLL),以期提高ACE抑制肽AHLL在消化系统中的吸收效果。以包封率为评价指标,优化实验条件。使用纳米粒径仪和透射电子显微镜观察纳米粒表征,运用光谱扫描比较包埋处理后蛋白质结构变化,研究紫外辐射、温度及pH值对纳米粒稳定性的影响。在模拟体外消化对AHLL纳米粒吸收效果后,建立并验证Caco-2细胞单层模型,运用该模型进行HSF-AHLL肠吸收机制研究。本文得出的主要结论如下:(1)制备纳米粒的最优条件是:载体铁蛋白浓度在1~2μM之间,多糖浓度10mg/L,AHLL的终浓度在100~200μg/mL范围内,可制备出包封率较高的纳米粒体系。通过粒径和电位测定,AHLL极有可能被包埋进HSF空腔中,且经过透射扫描电镜对其表征,表观上说明HSF-AHLL和HSF-SA-AHLL形成了稳定的纳米体系。(2)紫外光谱说明AHLL纳米粒具有与HSF类似的大分子共轭结构;荧光光谱说明AHLL纳米粒只是改变了铁蛋白在四重轴通道上的色氨酸微环境;从圆二色谱中可知:经过包埋处理后蛋白质的α-螺旋结构和β-转角结构含量显著减少,而β-折叠结构含量增加,说明包埋后的蛋白空间结构发生一定的变化,从而使蛋白质更加展开。紫外光照24 h后,HSF-AHLL和HSF-SA-AHLL的降解率比单独的AHLL分别降低了35.83%和43.86%;不同温度处理60 min,80℃处降解率分别降低了26.96%和38.51%,说明HSF-AHLL和HSF-SA-AHLL较游离的AHLL光照和热稳定性显著提高。pH值对纳米粒稳定性的影响说明,中性环境下HSF-AHLL纳米粒的稳定性最好。DSC实验说明:包埋处理后的铁蛋白结构更加展开,与AHLL氢键的相互作用加强,纳米粒的热稳定性更好。体外模拟胃肠道系统发现,由于在胃道的极酸性环境下HSF亚基会打开,HSF-AHLL相比AHLL单独进入消化系统,整体上看并没有提高ACE抑制活性;而HSF-SA-AHLL进入胃道后,SA的缓释保护作用使得AHLL不被胃蛋白酶酶解,同时HSF-AHLL顺利进入肠道,在肠道的中性条件下稳定性较好,从而有效吸收,ACE抑制活性显著提高。(3)本实验室建立的Caco-2细胞模型结果为:Caco-2细胞生长周期约为7~9 d,生长较为缓慢,传代的时间控制在4~5 d之间,消化时间控制在3~5 min之间;培养4~5 d,通过倒置显微镜观察Caco-2细胞形成致密的单层结构。培养16 d后Caco-2细胞会分化成形态上与小肠上皮细胞相似的单层模型,肠腔侧分化形成微绒毛与细胞间形成了完整的致密结构。其单层模型的跨膜电阻值基本保持在650?·cm~2左右,Caco-2细胞单层肠腔侧的碱性磷酸酶活性是基底侧的碱性磷酸酶活性的17.71倍,说明出现了明显的极化现象;荧光黄AP→BL侧的转运实验,其渗透系数也低于转运实验规定的1.0×10~(-6)cm/s。(4)运用验证过的Caco-2细胞模型研究HSF-AHLL纳米粒的细胞肠吸收机制结果为:通过MTT试验选择浓度为100~200μg/mL的HSF-AHLL进行细胞转运实验。同一时间内,HSF-AHLL纳米粒明显比单独的AHLL在Caco-2细胞单层模型上转运量大,且表观渗透系数(第120 min)也明显高于后者。HSF-AHLL的双向转运均对时间有明显的依懒性,且主动运输和被动运输同时存在。HSF-AHLL在AP→BL方向转运的表观渗透系数为26.97×10~(-6)cm/s,而BL→AP方向的为5.79×10~(-6)cm/s,AP侧到BL侧的转运速率远大于反向转运速率,说明HSF-AHLL在Caco-2细胞单层吸收过程中吸收作用大于外排作用且具有一定方向性。HSF-AHLL在Caco-2细胞模型中的转运与温度和pH值都有关,且对样品浓度有依赖性。在HSF-AHLL纳米粒中AHLL终浓度为100μg/mL,供液pH值为7.4,温度为37℃条件下,其转运渗透系数最高。加入外排作用的蛋白抑制剂的结果表明,AHLL是P-糖蛋白的外排底物且其外排主要是由MRP2转运蛋白介导的。内吞抑制剂和肽载体抑制剂对AHLL的转运没有显著影响,而脱氧胆酸钠能显著促进其转运,证明AHLL主要是通过细胞旁路转运穿过小肠上皮细胞的。而这两种抑制剂和脱氧胆酸钠对HSF-AHLL的转运吸收没有显著促进作用,可能其是通过其他载体介导转运的。
【学位单位】:浙江海洋大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:R943
【部分图文】:

示意图,铁蛋白,空间结构,示意图


图 1-2 铁蛋白空间结构示意图Fig 1.2 Schematic diagram of ferritin spatial structure1.2.3 铁蛋白的功能铁蛋白在生物体内扮演着重要角色,其调节体内铁平衡是通过储存和释放铁离子的方式。当机体察觉 Fe2+浓度过高时,Fention 反应启动,产生自由基[47]。羟基自由基由于其超强的氧化能力剧烈反应,使细胞成分改变,并损失细胞完整性而使心脏、肝脏、肾脏等机体组织受损,促使患癌的风险大大增加。尤其是,脑部沉积了过量的铁,会造成中枢神经系统受到伤害,易患上帕金森和阿尔茨海默症等疾病。而铁蛋白通过氧化、移动、矿质铁心的形成和生长(去毒反应)[48],而将体内多余的Fe2+贮存在铁蛋白内部,来保护机体免受损伤[49]。因此,铁蛋白的双重功能维持着铁元素在体内的动态平衡。研究得出,植物铁蛋白中的 EP 肽段与铁离子的氧化沉淀及释放活性有关。豌豆铁蛋白(PSF)在铁浓度很高时,其中的 EP 会使 Fe2+氧化沉淀;同时 EP 片段特有的酶活,使铁蛋白发生自降解,这一过程中铁离子会快速释放出来,这样种子生长需求

色谱图,空白,色谱图,平衡盐溶液


第二章 ACE 抑制肽 AHLL 纳米粒的制备果与分析HLL 含量分析方法的建立标准曲线实验的色谱条件下,AHLL 的保留时间为 8.97 min(图 2-2)。精E 活性肽 AHLL,用 HBSS 平衡盐溶液配制浓度为 20 mg/mL 的一系列浓度标样(5、10、50、100、200μg/mL)。以峰面积对质出在空白HBSS中AHLL的标准曲线为y=5.14466x+2.2248(3R2μg/mL 范围内线性关系良好。

细胞生长曲线,Caco-2细胞,倒置显微镜,形态


4-1 不同时间段 Caco-2 细胞生长曲线图rowth curve of Caco-2 monolayers at differen层的形态学观察养瓶中的 Caco-2 细胞,细胞在瓶中贴的融合,形成单层结构,显微镜下可清胞间连接紧密,形态呈 铺路石 状3 6 9 12 15 18 21 时间/d

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 罗鹏;周金玲;何东平;潘思轶;;葵花籽ACE抑制肽的体内降压活性初步研究[J];粮食与油脂;2019年02期

2 何荣海;马海乐;余筱洁;;条斑紫菜ACEI抑制肽的超滤分离与离子交换纯化![J];农业机械学报;2012年02期

3 段秀;张玉锋;庄永亮;;食源性血管紧张素转化酶抑制肽研究进展[J];食品工业科技;2012年20期

4 管骁;彭剑秋;金周筠;沈宇;;食源性血管紧张素转化酶抑制肽的研究进展[J];食品与发酵工业;2011年07期

5 于一丁;于志鹏;赵文竹;刘静波;;血管紧张素转化酶抑制肽稳定性研究[J];食品工业科技;2010年01期

6 鲁军;任迪峰;王建中;TANOKURA Masaru;;螺旋藻源血管紧张素转化酶抑制肽的纯化和鉴定[J];生物化学与生物物理进展;2010年05期

7 李勇ng;黄文祥;朱卫民;李崇智;张德梅;;β-内酰胺酶抑制肽的活性研究[J];中国抗生素杂志;2010年04期

8 夏树华;王璋;;反相高效液相色谱/基质辅助激光解吸电离飞行时间质谱分离鉴定螺蛳血管紧张素转换酶抑制肽[J];色谱;2007年01期

9 安桂香;庄桂东;徐振凯;姚明经;迟玉森;;食物中血管紧张素转化酶抑制肽的研究进展[J];食品研究与开发;2006年06期

10 徐榕榕,陶冠军,李进伟,杨严俊;高效液相色谱测定血管紧张素转换酶抑制肽的活性[J];河南工业大学学报(自然科学版);2005年04期

相关会议论文 前10条

1 于一丁;于志鹏;赵文竹;刘静波;;血管紧张素转化酶抑制肽稳定性研究[A];2009食品科技(北京)论坛会议指南[C];2009年

2 王菲;张燕;王二雷;王作昭;刘静波;;蛋清源凝血酶抑制肽的纯化[A];中国食品科学技术学会第八届年会暨第六届东西方食品业高层论坛论文摘要集[C];2011年

3 薛勇;薛长湖;许萍;张香治;赵雪;李兆杰;;中国毛虾蛋白水解物中血管紧张素转移酶抑制肽的研究[A];中国食品科学技术学会第五届年会暨第四届东西方食品业高层论坛论文摘要集[C];2007年

4 刘贺煜;刘锦辉;郭春雪;玄明;张月;黄炎;姜媛媛;王莹;;不同结构的人血管内皮抑制肽抗肿瘤筛选试验[A];第十三届中国实验动物科学年会论文集[C];2017年

5 伍强;刘高强;;灵芝菌丝体中ACE抑制肽的分离纯化及其结构鉴定[A];中国菌物学会2018年学术年会论文汇编[C];2018年

6 苏盛亿;付颖寰;;小米ACE抑制肽的制备及其降血压活性研究[A];中国食品科学技术学会第十五届年会论文摘要集[C];2018年

7 吴俊杰;谢德伟;谢静莉;魏东芝;;底物型血管紧张素转化酶抑制肽的抑制机理研究[A];第十四届全国营养与保健食品科学大会暨研发科技创新专题研讨会会议论文汇编[C];2018年

8 陶瑶;吴琼;王桃梅;赵俊香;陈琨;陶秀娟;高清菡;范彦娜;杨建军;;枸杞ACE抑制肽对SHR大鼠的降压作用及机制研究[A];中国营养学会第十次特殊营养学术会议论文集[C];2017年

9 操德群;徐年军;;海洋藻类蛋白源ACE抑制肽研究进展[A];全国第二届海洋与陆地多糖多肽及天然创新药物研发学术会议论文集[C];2015年

10 马丽;卢奎;徐扬;;固相法合成ACE抑制肽类似物[A];河南省化学会2010年学术年会论文摘要集[C];2010年

相关重要报纸文章 前2条

1 本报记者 高泓娟;沙丁鱼ACE抑制肽或有望成为辅助降血压保健食品[N];中国食品报;2016年

2 科文;人类血液中真有艾滋克星吗?[N];科技日报;2007年

相关博士学位论文 前10条

1 罗鹏;葵花籽ACE抑制肽的分离纯化、结构分析与稳态化研究[D];华中农业大学;2018年

2 Naveed Hussain;糖巨肽蛋白源DPP-4抑制肽的制备、鉴定及抑制机理研究[D];中国农业科学院;2019年

3 周红丽;南瓜籽蛋白血管紧张素转化酶抑制肽的研究[D];湖南农业大学;2012年

4 黎观红;食物蛋白源血管紧张素转化酶抑制肽的研究[D];江南大学;2005年

5 李云;乳源酵母发酵牛乳产血管紧张素转换酶抑制肽的研究[D];浙江大学;2015年

6 郑亚军;油棕粕谷蛋白-2血管紧张素转化酶抑制肽制备与降血压活性研究[D];陕西师范大学;2016年

7 舒国伟;羊乳源ACE抑制肽制备、分离纯化及鉴定[D];陕西科技大学;2016年

8 赵元晖;海地瓜蛋白水解物中ACE抑制肽的分离纯化及合成[D];中国海洋大学;2009年

9 翟爱华;高活性米糠蛋白ACE抑制肽的制备及降血压效果研究[D];沈阳农业大学;2015年

10 张艳萍;贻贝蛋白中ACE抑制肽的制备及其构效关系研究[D];浙江工商大学;2011年

相关硕士学位论文 前10条

1 于丁一;鱿鱼足抗氧化与ACE抑制肽的活性研究及在线筛选[D];浙江海洋大学;2019年

2 夏伟荣;铁蛋白-海藻酸钠包埋ACE抑制肽及细胞吸收机制的研究[D];浙江海洋大学;2019年

3 马菲菲;银杏种仁ACE抑制肽的分离纯化、鉴定及抑制机理的研究[D];合肥工业大学;2019年

4 何伟炜;金枪鱼黄嘌呤氧化酶抑制肽的分离鉴定及其作用机制初探[D];华南理工大学;2019年

5 吴长平;大豆ACE抑制肽的选择性制备及其作用机理研究[D];华南理工大学;2019年

6 孙姗姗;罗非鱼鱼皮胶原制备及其ACE抑制肽释放规律的研究[D];厦门大学;2018年

7 谢雪琼;鲢鱼肌肉脯氨酰内肽酶及抑制肽的研究[D];集美大学;2019年

8 马莹;乳清蛋白源ACE抑制肽的分离纯化与结构鉴定[D];天津商业大学;2019年

9 柯丽娟;鲍鱼内脏胶原ACE抑制肽的分离纯化及其理化性质的研究[D];福建农林大学;2015年

10 吴迪;醋蛋中ACE抑制肽的酶法制备、分离纯化及其活性保护[D];安徽农业大学;2017年



本文编号:2827269

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/yiyaoxuelunwen/2827269.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户5500e***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com