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MP1基因在辽宁绒山羊皮肤的表达研究

发布时间:2017-04-19 17:16

  本文关键词:MP1基因在辽宁绒山羊皮肤的表达研究,由笔耕文化传播整理发布。


【摘要】:辽宁绒山羊是我国特有的品种,并且是禁止基因外流的宝贵资源,其羊绒产量居全国首位,因此,研究与羊绒相关基因的功能就更具实际生产意义。前期,我们实验室通过建库、测通获得了辽宁绒山羊的新基因MP1(MEK Partner 1)的全长序列,首先对MP1基因进行生物信息学分析,检测其核酸及氨基酸的同源性,建立进化树等。然后通过RT-PCR检测MP1基因在各组织中的表达,再利用qPCR方法检测其在毛囊生长的不同时期的初、次级毛囊中的表达含量,最后对绒山羊兴盛期皮肤进行原位杂交并对其进行表达位点分析。为进一步研究MP1基因是否与羊绒细度之间存在某种关系,利用本实验室已有的Noggin基因RNA干扰的慢病毒,感染辽宁绒山羊皮肤细胞后,再利用qPCR检测其对MP1基因表达的影响,为培育出具有优良经济性状的绒山羊提供一定的分子理论基础。结果如下:(1)MP1基因编码的蛋白质包含124个氨基酸,分子量为13.64 KD,是一个疏水性蛋白。MP1含有α螺旋结构(25.81%)、延伸链结构(33.87%)和无规卷曲(40.32%)。无跨膜结构域,无信号肽。MPl的氨基酸序列包含一个保守的MAPKKl-Int结构域,含有有3个可能成为磷酸化位点的Ser。RT-PCR检测结果显示:仅在皮肤、心脏中MP1基因有表达,而在肝、肾、肺、脾中未发现其表达。qPCR检测毛囊在兴盛期时,MP1基因在次级毛囊的表达量为初级毛囊的1.65倍,退行期MP1基因在次级毛囊的表达量为初级毛囊的3.25倍。原位杂交分析发现:MP1在内根鞘上有明显的表达,在毛干、外根鞘以及毛囊乳突中无表达。(2)成功构建出Noggin基因RNAi的慢病毒载体,Noggin基因被干扰后,qPCR检测发现MP1基因起负调控作用,MP1基因的相对表达量出现上调的趋势。由以上结果可以得出以下结论:(1)通过对MP1基因在生物信息学,荧光定量以及原位杂交等方面的研究,推测MP1对绒山羊皮肤细胞的生长发育产生影响,可能与毛囊的生成及再上皮化过程有关,且并具有能够使羊毛变细的作用。(2)推测MP1基因可能存在于Noggin基因表达调控的下游,并通过其与Noggin基因之间存在的某种关系,实现BMP-MAPK途径共同作用来调节绒山羊的表皮及毛囊的的稳态和发育过程。
【关键词】:辽宁绒山羊 MP1 荧光定量 原位杂交 RNAi 慢病毒
【学位授予单位】:辽宁师范大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:S827
【目录】:
  • 摘要3-4
  • Abstract4-9
  • 引言9
  • 1 实验背景介绍9-15
  • 1.1 辽宁绒山羊9
  • 1.2 MP1基因及其研究进展9-11
  • 1.2.1 MAPK信号通路及支架蛋白9-10
  • 1.2.2 MP1基因10-11
  • 1.3 RNA干扰技术11-12
  • 1.3.1 RNA干扰的发现11-12
  • 1.3.2 RNAi的作用机制12
  • 1.3.3 RNAi载体的选择与应用12
  • 1.3.4 RNAi的应用12
  • 1.4 研究的目的及意义12-13
  • 1.5 研究技术路线13-14
  • 1.6 本研究项目的特色与创新14-15
  • 1.6.1 特色14
  • 1.6.2 创新14-15
  • 2 MP1基因在毛囊生长不同时期的表达分析15-35
  • 2.1 实验材料及样本采集15-16
  • 2.1.1 主要实验仪器设备15
  • 2.1.2 主要实验试剂及耗材15
  • 2.1.3 样本的采集15-16
  • 2.2 实验方法16-22
  • 2.2.1 MP1基因全长测通16
  • 2.2.2 生物信息学分析16-17
  • 2.2.3 初、次级毛囊的分离17
  • 2.2.4 初次级毛囊总RNA的提取17-18
  • 2.2.5 总RNA的检测18
  • 2.2.6 RNA反转录成cDNA18-19
  • 2.2.7 RT-PCR检测19-20
  • 2.2.8 qPCR检测20
  • 2.2.9 原位杂交20-22
  • 2.3 结果22-33
  • 2.3.1 MP1基因的生物信息学分析22-30
  • 2.3.2 RNA提取30-31
  • 2.3.3 qPCR31-32
  • 2.3.4 原位杂交32-33
  • 2.4 讨论33-35
  • 3 慢病毒感染后MP1基因的表达研究35-43
  • 3.1 实验材料35
  • 3.1.1 实验所用细胞及病毒液35
  • 3.1.2 主要试剂、仪器与耗材35
  • 3.2 实验方法35-38
  • 3.2.1 辽宁绒山羊的原代皮肤细胞培养35
  • 3.2.2 Noggin基因干扰慢病毒及阴性病毒感染羊皮肤细胞35-36
  • 3.2.3 提取病毒感染后的细胞中的总RNA36
  • 3.2.4 RNA反转录成cDNA36
  • 3.2.5 Lenti-EGFP-Noggin-miR慢病毒感染羊皮肤细胞后MP1基因的qPCR检测36-38
  • 3.3 结果38-41
  • 3.3.1 感染病毒前,正常皮肤细胞的镜检照片38
  • 3.3.2 慢病毒感染靶细胞(感染48小时后)38-39
  • 3.3.3 RNA抽提电泳图39-40
  • 3.3.4 Lenti- Noggin-EGFP-miR慢病毒感染羊皮肤细胞后MP1基因的qPCR检测40-41
  • 3.4 讨论41-43
  • 4 注意事项43-44
  • 结论44-45
  • 参考文献45-49
  • 附录A MP1基因的开放阅读框49-50
  • 附录B MP1基因在各个时期初次级毛囊中荧光定量的扩增曲线及溶解曲线50-53
  • 附录C 病毒液感染后qPCR检测的各组扩增曲线及溶解曲线53-54
  • 攻读硕士期间发表论文与获奖情况54-55
  • 致谢55

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本文编号:316761

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