尼罗罗非鱼Jarid2基因的克隆鉴定及高温诱导对其表达变化的影响研究
发布时间：2021-07-13 19:08
低等脊椎动物的性别决定方式主要包括三种:基因型性别决定（GSD）、环境依赖型性别决定（ESD）、基因-环境依赖型性别决定（GSD+ESD）,其中环境依赖型性别决定中温度的影响较为关键,又称之为温度依赖型性别决定（TSD）。在温度依赖型性别决定中,对爬行动物的研究较深入,但对鱼类方面的研究较少。有研究发现温度是鱼类性别决定中影响最大且最关键的一类环境因素,很多鱼类都属于基因-温度依赖型性别决定（GSD+TSD）类型,其中尼罗罗非鱼的性别决定就属于这种性别决定方式,它不仅受基因的控制,还受温度的影响。尼罗罗非鱼是我国出口量最大的养殖鱼类,其雄鱼的生长速度和繁殖能力都显著高于雌鱼,在养殖过程中提高雄鱼比例可以有效提高产量。因此,研究尼罗罗非鱼性逆转对提高其经济效益具有重大的意义。Jarid2是一种跟性别有关的基因,并且在有关龟类的研究中已经证明Jarid2参与温度性别决定,但是在尼罗罗非鱼中还没有相关研究。在由雌变雄的性逆转过程中,尼罗罗非鱼性别相关基因Jaird2发生了怎样的变化,对这个问题的研究有助于揭示高温诱导的性逆转的发生机制,为提高尼罗罗非鱼的雄性率提供理论基础。基于此,本研究拟在...
【文章来源】：山东农业大学山东省
【文章页数】：53 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
尼罗罗非鱼基因组DNAFig.1GenomicDNAelectrophoresismapofNiletilapia
尼罗罗非鱼Jarid2基因的克隆鉴定及高温诱导对其表达变化的影响研究3.1尼罗罗非鱼DNA的提取及雌雄鉴定采用试剂盒的方法，提取尼罗罗非鱼个体的基因组DNA，此过程包括雌性个体和雄性个体。将提取的部分基因组DNA进行电泳检测，电泳结束后用凝胶成像仪观察，所获得的图像如图1所示，由图可见提取的基因组DNA条带清晰且完整，经分光光度计的浓度测定发现所提取的基因组DNA浓度均在200-300μg/mL之间，并且OD260/OD280的比值均在1.8与2.0之间，完全符合PCR反应的模板要求，可进行下一步试验。图1尼罗罗非鱼基因组DNAFig.1GenomicDNAelectrophoresismapofNiletilapia注：M:DL5000DNAMarkerNote:M:DL5000DNAMarker3.2通过性别连锁分子标记鉴定雌雄为获得正常家系对照雄鱼组，本实验采用性别特异分子标记引物通过PCR反应来检测尼罗罗非鱼正常家系的遗传性别，将PCR产物进行电泳检测结果如图2所示，雌性尼罗罗非鱼有一条长度为1151bp的条带，图中标为XX，雄性尼罗罗非鱼包含两条分别为1151bp和711bp的条带，图中标为XY。图2尼罗罗非鱼雌雄鉴定Fig.2ElectrophoretogramofmaleandfemaleidentificationofNiletilapia注：M：DL2000DNAMarker：XX：雌鱼；XY：雄鱼Note:M：DL2000DNAMarker：XX：FemaleNiletilapia；XY：MaleNiletilapia3结果与分析22
连接Fig.3Resultsofconn
【参考文献】：
期刊论文
[1]鱼类性腺发育及产卵类型研究进展[J]. 徐钢春,鲍明明,杜富宽,徐跑. 长江大学学报(自科版). 2017(06)
[2]鱼类性别决定及其控制技术的研究进展[J]. 于建华,任绍杰,李树国,常杰. 黑龙江畜牧兽医. 2017(01)
[3]JARID2对牛卵丘细胞H3K9me3、H3K27me3的甲基化修饰作用[J]. 徐嘉君,岳媛,李红波,闫向民,杜玮,周振勇,张金山,张杨,姜昊,张嘉保. 中国兽医学报. 2016(05)
[4]2015年罗非鱼产业发展趋势分析[J]. 袁永明,袁媛,代云云,贺艳辉,张红燕. 中国渔业经济. 2015(02)
[5]鱼类性别异形和性别决定的遗传基础及其生物技术操控[J]. 梅洁,桂建芳. 中国科学:生命科学. 2014(12)
[6]尼罗罗非鱼仔鱼个体发育及性腺分化的发育[J]. 陈兴汉,刘晓春,蒙子宁,张勇,林浩然,叶卫. 热带生物学报. 2012(03)
[7]高温诱导对尼罗罗非鱼性别分化及生长的影响[J]. 党广成,刘羽清,付佩胜,程安达,刘洋,赵燕,朱永安,宋憬愚,季相山. 渔业科学进展. 2011(05)
[8]鱼类性别决定的影响因素[J]. 田佳,陈芸,王艺磊,张雅芝. 生命科学. 2010(10)
[9]泥鳅的性腺分化及温度对性腺分化的影响[J]. 陈玉红,林丹军,尤永隆. 中国水产科学. 2007(01)
[10]鱼类精巢发育的研究进展[J]. 王成武,王树迎,宋卉,张怀菊. 山东畜牧兽医. 2004(02)
硕士论文
[1]温度对鲫鱼性别决定的影响及分子机制探讨[D]. 岳敏娟.福建师范大学 2009
本文编号：3282632
【文章来源】：山东农业大学山东省
【文章页数】：53 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
尼罗罗非鱼基因组DNAFig.1GenomicDNAelectrophoresismapofNiletilapia
尼罗罗非鱼Jarid2基因的克隆鉴定及高温诱导对其表达变化的影响研究3.1尼罗罗非鱼DNA的提取及雌雄鉴定采用试剂盒的方法，提取尼罗罗非鱼个体的基因组DNA，此过程包括雌性个体和雄性个体。将提取的部分基因组DNA进行电泳检测，电泳结束后用凝胶成像仪观察，所获得的图像如图1所示，由图可见提取的基因组DNA条带清晰且完整，经分光光度计的浓度测定发现所提取的基因组DNA浓度均在200-300μg/mL之间，并且OD260/OD280的比值均在1.8与2.0之间，完全符合PCR反应的模板要求，可进行下一步试验。图1尼罗罗非鱼基因组DNAFig.1GenomicDNAelectrophoresismapofNiletilapia注：M:DL5000DNAMarkerNote:M:DL5000DNAMarker3.2通过性别连锁分子标记鉴定雌雄为获得正常家系对照雄鱼组，本实验采用性别特异分子标记引物通过PCR反应来检测尼罗罗非鱼正常家系的遗传性别，将PCR产物进行电泳检测结果如图2所示，雌性尼罗罗非鱼有一条长度为1151bp的条带，图中标为XX，雄性尼罗罗非鱼包含两条分别为1151bp和711bp的条带，图中标为XY。图2尼罗罗非鱼雌雄鉴定Fig.2ElectrophoretogramofmaleandfemaleidentificationofNiletilapia注：M：DL2000DNAMarker：XX：雌鱼；XY：雄鱼Note:M：DL2000DNAMarker：XX：FemaleNiletilapia；XY：MaleNiletilapia3结果与分析22
连接Fig.3Resultsofconn
【参考文献】：
期刊论文
[1]鱼类性腺发育及产卵类型研究进展[J]. 徐钢春,鲍明明,杜富宽,徐跑. 长江大学学报(自科版). 2017(06)
[2]鱼类性别决定及其控制技术的研究进展[J]. 于建华,任绍杰,李树国,常杰. 黑龙江畜牧兽医. 2017(01)
[3]JARID2对牛卵丘细胞H3K9me3、H3K27me3的甲基化修饰作用[J]. 徐嘉君,岳媛,李红波,闫向民,杜玮,周振勇,张金山,张杨,姜昊,张嘉保. 中国兽医学报. 2016(05)
[4]2015年罗非鱼产业发展趋势分析[J]. 袁永明,袁媛,代云云,贺艳辉,张红燕. 中国渔业经济. 2015(02)
[5]鱼类性别异形和性别决定的遗传基础及其生物技术操控[J]. 梅洁,桂建芳. 中国科学:生命科学. 2014(12)
[6]尼罗罗非鱼仔鱼个体发育及性腺分化的发育[J]. 陈兴汉,刘晓春,蒙子宁,张勇,林浩然,叶卫. 热带生物学报. 2012(03)
[7]高温诱导对尼罗罗非鱼性别分化及生长的影响[J]. 党广成,刘羽清,付佩胜,程安达,刘洋,赵燕,朱永安,宋憬愚,季相山. 渔业科学进展. 2011(05)
[8]鱼类性别决定的影响因素[J]. 田佳,陈芸,王艺磊,张雅芝. 生命科学. 2010(10)
[9]泥鳅的性腺分化及温度对性腺分化的影响[J]. 陈玉红,林丹军,尤永隆. 中国水产科学. 2007(01)
[10]鱼类精巢发育的研究进展[J]. 王成武,王树迎,宋卉,张怀菊. 山东畜牧兽医. 2004(02)
硕士论文
[1]温度对鲫鱼性别决定的影响及分子机制探讨[D]. 岳敏娟.福建师范大学 2009
本文编号：3282632
本文链接：https://www.wllwen.com/shoufeilunwen/zaizhiyanjiusheng/3282632.html
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