当前位置:主页 > 医学论文 > 畜牧兽医论文 >

基质蛋白氨基酸位点突变的新型重组水泡性口炎病毒构建及研究

发布时间:2020-10-24 00:28
   重组水泡性口炎病毒(recombinant vesicular stomatitis virus,rVSV)因其可以高效的表达外源蛋白、在病毒感染时为宿主提供有效的保护以及可以诱发机体产生强的细胞免疫和体液免疫应答等优点而被广泛用于疫苗和肿瘤治疗研究。但是VSV在小鼠中具有神经毒性,且当VSV直接注射到牛和马的脑中时,会引起一些神经系统疾病。因此,野生型的VSV在使用上存在一定的生物安全风险。因此,我们急需对VSV载体疫苗进行改造,以期得到对宿主无致病性或致病性较低的rVSV。VSV的基质蛋白M是一种多功能蛋白,在病毒感染过程中参与宿主转录、核质转运和翻译。野生型VSV的M蛋白可以通过抑制宿主I型干扰素(IFN-α、IFN-β)的表达而抑制宿主的先天性免疫应答,因此,M蛋白与VSV的致病性密切相关。研究表明,M蛋白的第51位甲硫氨酸突变为精氨酸(VSV_(M51R))或发生缺失(VSV_(?M51))的重组VSV,抑制宿主基因表达的能力降低且致病性减弱。此外,Hoffmann等研究也表明,M蛋白的第221、226位氨基酸位点是两个有潜在致弱功能的氨基酸位点,然而这两个位点在VSV致病性形成上的确切意义,尤其在动物体内还未有详细的探讨和研究。为此,本文针对该病毒基质蛋白M的第221、226位氨基酸进行了定点突变,制备了新型重组VSV。突变位点是第221位缬氨酸(V)突变为苯丙氨酸(F),第226位丝氨酸(S)突变为精氨酸(R)。利用体外试验和体内试验对新型重组病毒的致病性进行了研究。其中体外实验有:(1)在PC3和PEF细胞中进行的多步生长曲线测定;(2)不同病毒诱导细胞I型干扰素表达;(3)不同M蛋白突变株感染对宿主细胞基因表达抑制效率研究。体内试验中,我们选用BABL/c小鼠来评估不同重组VSV的致病性,主要衡量指标包括接种病毒后,小鼠体重变化、致死率以及小鼠肺和脑组织中病毒载量的测定。体外试验结果表明,相比野生型VSV以及221、226单位点突变VSV,221、226双位点突变重组VSV病毒(VSV_(M221,226))的增殖能力显著降低,其致弱效应可能是由于病毒感染有效激活宿主细胞产生I型干扰素所致。在小鼠体内试验中,VSV_(M221,226)较野生型VSV以及221、226单位点突变VSV致病力明显下降。VSV_(M221,226)有希望成为一个安全、有效的疫苗载体。
【学位单位】:上海交通大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2018
【中图分类】:S852.65;Q78
【部分图文】:

示意图,病毒结构,位点突变,基质蛋白


上海交通大学硕士学位论文VM221、VSVM226、VSVM221,226质粒的构建利用基因克隆的方法构建了基质蛋白氨基酸位点突变的 pVSV(21、pVSVM226和 pVSVM221,226),接着通过反向遗传技术获得对应的SVM221、VSVM226和 VSVM221,226)。其中,M221 是指基质蛋白第 221)突变为苯丙氨酸(F),M226 是指基质蛋白第 226 位丝氨酸(S)(R),而 M221,226 是指这两个位点同时发生突变。如图 2-1 所示

重叠PCR,条带,产物,糖基化蛋白


(b)图 2-2 重叠 PCR 的结果Fig.2-2 The results of overlapping PCR第一轮 PCR M. DNA Marker;1.引物 P1 和 P2 的 PCR 产物P3 和 P8 的 PCR 产物(F2)第二轮 PCR M. DNA Marker;1. 引物 P1 和 P8 的 PCR 产物因片段);f overlapping PCR. M. DNA Marker; 1. PCR products of p(F1);2. PCR products of primers P3 and P8 (F2);d of overlapping PCR. M. DNA Marker; 1. PCR products oP8 (Mutated M gene fragments);鉴定特征谱带显现为四条不同大小的蛋白条带,分别为一个糖基化蛋白,其目的条带约为 60 kDa,N 与 P为一条条带,其蛋白的分子量大小约 47 kDa,M 蛋染 VSVXN2、VSVM221、VSVM226及 VSVM221,226的 IB后制备的样品进行 Western blot 鉴定,其中一抗为

生长曲线,多步,生长曲线,滴度


图 3-1 PC3 细胞中多步生长曲线Fig.3-1 Multi-step growth curve of recombinant VSVs in PC3 cellsVSVXN2、VSVM221、VSVM226及 VSVM221,226在 PEF 中的多不生长曲线如图,野生型 VSV 可以在 PEF 细胞中有效的复制。在感染的 12~24h 内,VSV的细胞上清的滴度从 1.6±0.3×103pfu/mL 上升至 3.6±0.5×105pfu/mL,VSVM现较为一致的上升趋势,从 1.6±0.3×103pfu/mL 上升至 2.3±0.1×105pfu/mVM221从 8.9±0.2×102pfu/mL 上升至 3.6±0.4×104pfu/mL,然而,VSVM221,226胞后,细胞上清中病毒滴度一直保持平稳,即 VSVM221,226在 PEF 细胞中不
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 张雪;娄丽;陈阳;周晓丽;刘钊;贾赟;孙颖杰;;水泡性口炎病毒N蛋白原核表达及免疫原性分析[J];中国畜牧兽医;2017年09期

2 史久华;水泡性口炎病毒治疗白血病[J];国外医学.预防.诊断.治疗用生物制品分册;2000年06期

3 周学章;高丰;贺文琦;;水泡性口炎病毒G蛋白抗原决定区片段基因在大肠杆菌中的表达[J];中国兽医学报;2006年05期

4 王海霞,郑增忍,龚振华,张彦明,孙淑芳,李葳,李玉清,蒋正军,郭福生,宫云浩;应用RT-PCR方法快速检测水泡性口炎病毒[J];中国动物检疫;2004年03期

5 史百芬,张咏南;减毒水泡性口炎病毒作为疫苗载体[J];国外医学.预防.诊断.治疗用生物制品分册;2000年03期

6 吴昊;赵秋华;孙郭艳;柯勇;毕波;方心葵;孙涛;;基质蛋白第221、226位氨基酸位点发生突变的重组水泡性口炎病毒构建和致病性研究[J];畜牧与兽医;2018年04期

7 王皓帆;;单链IL-23修饰的水泡性口炎病毒在体内外表现出溶瘤活性[J];中国病理生理杂志;2011年01期

8 周学章;高丰;宋德光;李元刚;;水泡性口炎病毒抗原决定簇单克隆抗体研究[J];中国预防兽医学报;2007年07期

9 杨桂梅,徐自忠,高洪;水泡性口炎研究进展[J];云南畜牧兽医;2004年02期

10 靳喜朋;褚秀玲;霍惠玲;;水泡性口炎的发病机制和临床诊治[J];张家口农专学报;2003年02期


相关博士学位论文 前1条

1 潘伟;水泡性口炎病毒M蛋白抑制宿主抗病毒反应机制的研究[D];吉林大学;2018年


相关硕士学位论文 前10条

1 吴昊;基质蛋白氨基酸位点突变的新型重组水泡性口炎病毒构建及研究[D];上海交通大学;2018年

2 吴红波;水泡性口炎病毒基质蛋白在结肠癌种植模型中的抗肿瘤实验研究[D];四川大学;2007年

3 宋坤;表达扎伊尔型埃博拉病毒囊膜糖蛋白重组水泡性口炎病毒的构建[D];中国农业科学院;2013年

4 闻静;猪Mx1 cDNA分子的克隆、表达和鉴定[D];扬州大学;2009年

5 薛晓娟;表达水泡性口炎病毒G蛋白重组腺病毒的构建与免疫原性分析[D];中国农业科学院;2015年

6 韩岩岩;VSV糖蛋白酵母双杂交诱饵载体的构建和初步鉴定[D];吉林大学;2009年

7 王占锋;水泡性口炎的RT-PCR及ELISA诊断方法建立[D];吉林大学;2008年

8 齐兵;水泡性口炎病毒新型突变株的构建及毒性的研究[D];浙江理工大学;2015年

9 郭广洋;鹌鹑α、γ干扰素克隆、原核表达及抗病毒活性分析[D];东北林业大学;2016年

10 张明;以水泡性口炎病毒VSV为载体的结核疫苗VSV-846的免疫作用及机制探讨[D];苏州大学;2015年



本文编号:2853754

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/dongwuyixue/2853754.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户52f4c***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com