家猪Ⅲ型干扰素基因家族性质及干扰素λ,δ,ω家族的抗病毒功能研究
发布时间:2021-02-01 05:24
通过BLAST方法,我们从GenBank中获得了家猪面型干扰素PoIFN-?J,-入3的标准序列,并设计特异性引物,从猪肾细胞PK-15中调取了家猪千扰素PoIFN-、l,43的cDNA序列。使用软件进行序列分析,并通过构建不同物种的IFN-?^系统发生树,揭示了各亚型么间的进化关系。为了进一步分析PoIFN-人家族的性质,构建了pcDNA3.1/myc-战s(-)B/PoIFN-、s真核表达载体,并进行表达及性质研究。首先检测了在BHK-21细胞中转录及翻译水平的表达情况,发现R)IFN-化分别具有1个及2个N端-糖基化位点。其次,鉴定了PoIFN-Xs在猪肾细胞旧RS-2及PK-15细胞中对poly I:C、FMDV、PRV的应答表达谱。此外,检测了PoIFN-Xs在扭艮S-2中诱导抗病毒基因及细胞因子的表达情况,结果显示PoIFN-?^可显著诱导MX、OAS、PKR等ISGs及细胞因子正-6、TNF-a的表达。再者,抗病毒实验表明,PoIFN-?^s在PK-15/PRV及IBRS-2/FMDV系统均具有低于P〇IFN-al2的抗病毒活性。本研究测定了化IFN-、-0),-S家族在...
【文章来源】:复旦大学上海市 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:88 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图1:?IFN表达模式及启动子示意图(KOTENKO?SV.,2011)??4??
IFN-XR1表达,大约是角质形成细胞的3倍;在T细胞,高表达量和低表达量均有??检出,单核细胞也表现出很低的受体水平??所有的II型细胞因子均能通过STATs和JAK途径进行信号转导(图2)?P01。配??体-受体复合物招募完成后,Jakl和Tyk2介导受体链磯酸化,在含磯酸化酪氨酸??激酶基序的IFN-化1胞内区形成STAT1和STAT2的作用位点。I型或m型干扰素??介导的信号传递导致转录因子复合物投G巧的形成;ISGF3聚合后将转移到核内,??并与ISGs启动子区域的ISRE相结合,从而诱导抗病毒活性,并在某些细胞上调??MHC?I抗原的表达PW。除STAT-JAK途径外,I型和曲型干扰素还可诱导其他信??5??
糖基化情况。真核表达的PoIFN-U糖基化蛋白大小约为30旺),未糖基化条带约??为25kD;?PoIFN-?3完全糖基化蛋白大小约为35kD,未糖基化条带约为20旺),??此外存在一条约30吐)的不完全糖基化条带(图6)。运表明PoIFN-M,->u3分别??存在1个与2个糖基化位点,与软件预测结果一致。???kDa?Marker?Control?PolFN-?X?3?P〇IFN-?X?1??35-?’巧?‘?'Pij*??25-?一??巧一顯..??图6.?IFN上清Wes化rn-blot结果??蛋白分子量标记/实验蛋白条带分别在白光/化学发光模式拍摄。+/-分别表示使用或未使用??N-糖基化抑制剂Tunicamycin处理,*示糖基化蛋白条带,#示未糖基化蛋白条带。??1.4.4?FoIFN-Xs各亚型病毒诱导表达谱??病毒感染细胞后,通常会诱导干扰素的表达。为了解猪细胞对病毒诱导的曲??型IFN应答,我们检测了?FMDV、PRV?W及poly?I:C处理细胞后,:PoIFN-M,-入3??的mRNA水平。在阴性对照中,:PoIFN-al2与化IFN-M的表达量显著高于??PoIFN-?3的本底水平(未显示)。在旧RS-2轴胞中,poly?I:C对PoIFN-化-X3??有显著诱导作用,且化高于2411,其中PoIFN-、3表达量的升高最为明显(图7A);??FMDV可显著诱导化IFN-M表达
本文编号:3012248
【文章来源】:复旦大学上海市 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:88 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图1:?IFN表达模式及启动子示意图(KOTENKO?SV.,2011)??4??
IFN-XR1表达,大约是角质形成细胞的3倍;在T细胞,高表达量和低表达量均有??检出,单核细胞也表现出很低的受体水平??所有的II型细胞因子均能通过STATs和JAK途径进行信号转导(图2)?P01。配??体-受体复合物招募完成后,Jakl和Tyk2介导受体链磯酸化,在含磯酸化酪氨酸??激酶基序的IFN-化1胞内区形成STAT1和STAT2的作用位点。I型或m型干扰素??介导的信号传递导致转录因子复合物投G巧的形成;ISGF3聚合后将转移到核内,??并与ISGs启动子区域的ISRE相结合,从而诱导抗病毒活性,并在某些细胞上调??MHC?I抗原的表达PW。除STAT-JAK途径外,I型和曲型干扰素还可诱导其他信??5??
糖基化情况。真核表达的PoIFN-U糖基化蛋白大小约为30旺),未糖基化条带约??为25kD;?PoIFN-?3完全糖基化蛋白大小约为35kD,未糖基化条带约为20旺),??此外存在一条约30吐)的不完全糖基化条带(图6)。运表明PoIFN-M,->u3分别??存在1个与2个糖基化位点,与软件预测结果一致。???kDa?Marker?Control?PolFN-?X?3?P〇IFN-?X?1??35-?’巧?‘?'Pij*??25-?一??巧一顯..??图6.?IFN上清Wes化rn-blot结果??蛋白分子量标记/实验蛋白条带分别在白光/化学发光模式拍摄。+/-分别表示使用或未使用??N-糖基化抑制剂Tunicamycin处理,*示糖基化蛋白条带,#示未糖基化蛋白条带。??1.4.4?FoIFN-Xs各亚型病毒诱导表达谱??病毒感染细胞后,通常会诱导干扰素的表达。为了解猪细胞对病毒诱导的曲??型IFN应答,我们检测了?FMDV、PRV?W及poly?I:C处理细胞后,:PoIFN-M,-入3??的mRNA水平。在阴性对照中,:PoIFN-al2与化IFN-M的表达量显著高于??PoIFN-?3的本底水平(未显示)。在旧RS-2轴胞中,poly?I:C对PoIFN-化-X3??有显著诱导作用,且化高于2411,其中PoIFN-、3表达量的升高最为明显(图7A);??FMDV可显著诱导化IFN-M表达
本文编号:3012248
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