PRL基因在小尾寒羊母羊不同组织中的表达分析
发布时间：2021-03-06 16:48
本实验旨在研究催乳素（PRL）基因在小尾寒羊母羊不同组织中的表达规律。选择42月龄、体重（73.2±2.0）kg、体况良好的小尾寒羊空怀母羊5只,屠宰后采集垂体、下丘脑、肾、子宫、卵巢、淋巴和乳腺组织,用实时荧光定量PCR方法检测各组织中PRL mRNA的相对表达量。结果表明:PRL mRNA在小尾寒羊母羊不同组织中的表达量由高到低依次为:垂体、下丘脑、淋巴、肾、乳腺、卵巢、子宫,其中,PRL mRNA在垂体和下丘脑中的表达量极显著高于淋巴、肾、乳腺、卵巢和子宫,垂体中PRL mRNA的表达量极显著高于下丘脑,而淋巴、肾、乳腺、卵巢、子宫中PRL mRNA表达量差异不显著。
【文章来源】：中国畜牧杂志. 2020,56(10)北大核心
【文章页数】：5 页
【部分图文】：
总RNA凝胶电泳图
血管活性肠肽（VIP）是下丘脑分泌的PRL释放因子，受卵巢分泌的雌激素（E2）和孕激素（P4）调控。VIP与其受体（Vasoactive Intestinal Polypeptide Receptor,VIPR）结合是引起PRL重新合成与分泌的信号转导机制的第一步[16-17]。Bredow等[18]研究表明，外源注射VIP能提高下丘脑中PRL m RNA表达水平，说明VIP能促进PRL基因表达。郑嫩珠等[19]研究发现，VIPR基因在垂体中表达量最高，其次是下丘脑，卵巢中最低。本研究表明，绵羊PRL m RNA在下丘脑和垂体中均有表达，且垂体表达量最高，其垂体表达量显著高于下丘脑，与郑嫩珠等[19]研究的VIPR表达规律一致。魏茹华[20]研究表明，在鹅休产期垂体和下丘脑中PRL m RNA表达量极显著高于卵巢，与本实验结果一致，说明在哺乳动物和家禽中PRL生理功能及表达规律具有相似性。Picazo等[21]通过对西班牙美利奴羊注射溴隐亭来减少PRL分泌，发现卵巢中直径为2～3 mm的卵泡数量显著减少。Nakamura等[22]研究发现在卵母细胞和颗粒细胞共培养体系中加入PRL后，抑制了E2的产生并刺激促卵泡素（FSH）诱导P4产生，说明卵巢中PRL与早期卵泡发育和卵巢颗粒细胞甾体激素的分泌有关。图3 小尾寒羊各组织PRL m RNA相对表达水平
小尾寒羊各组织PRL m RNA相对表达水平
【参考文献】：
期刊论文
[1]光控对内蒙古绒山羊血液中褪黑激素和催乳素及产绒性能的影响[J]. 杨敏,宋伸,陈潇飞,玛哈巴·肉孜,蒋琳,马月辉. 家畜生态学报. 2017(12)
[2]绵羊H-FABP基因不同组织表达差异研究[J]. 赵雪,曹阳,周国利,金海国,赵玉民. 黑龙江畜牧兽医. 2014(05)
[3]黑番鸭血管活性肠肽受体-1基因（VIPR-1）的cDNA克隆及其组织表达特性分析[J]. 郑嫩珠,陈晓燕,陈晖,朱志明,缪中纬,辛清武,王正朝,卢立志. 农业生物技术学报. 2012(05)
[4]宁夏滩母羊的生殖激素变化规律研究[J]. 周桂云,柴君秀,王和平,马乐天. 现代农业科技. 2009(23)
[5]催乳素对人B淋巴细胞IgG基因表达影响的实验研究[J]. 孙翔,王辉. 陕西医学杂志. 2008(11)
[6]催乳素保护人B淋巴细胞免其凋亡的实验研究[J]. 孙翔,王辉. 陕西医学杂志. 2007(07)
[7]催乳素结构与功能研究进展[J]. 张耀,郭定宗. 动物医学进展. 2007(05)
[8]退化期的乳腺凋亡及其调节机理[J]. 狄和双,阎晓东,王根林. 畜牧与兽医. 2007(03)
[9]催乳素对人B淋巴细胞增殖功能的影响[J]. 孙翔,孙清河,王辉. 新乡医学院学报. 2006(02)
[10]子宫内膜催乳素功能及信号转导机制[J]. 王海燕. 国外医学.妇产科学分册. 2003(06)
博士论文
[1]应用RNA干扰技术敲除催乳素受体研究自分泌催乳素对激活的Jurkat细胞的免疫调控作用[D]. 许东明.福建医科大学 2008
硕士论文
[1]鹅生殖周期催乳素基因（PRL）mRNA表达规律的研究[D]. 魏茹华.安徽农业大学 2009
[2]催乳素基因多态性及其与小尾寒羊高繁殖力相关性的研究[D]. 代鸥.四川农业大学 2007
本文编号：3067453
【文章来源】：中国畜牧杂志. 2020,56(10)北大核心
【文章页数】：5 页
【部分图文】：
总RNA凝胶电泳图
血管活性肠肽（VIP）是下丘脑分泌的PRL释放因子，受卵巢分泌的雌激素（E2）和孕激素（P4）调控。VIP与其受体（Vasoactive Intestinal Polypeptide Receptor,VIPR）结合是引起PRL重新合成与分泌的信号转导机制的第一步[16-17]。Bredow等[18]研究表明，外源注射VIP能提高下丘脑中PRL m RNA表达水平，说明VIP能促进PRL基因表达。郑嫩珠等[19]研究发现，VIPR基因在垂体中表达量最高，其次是下丘脑，卵巢中最低。本研究表明，绵羊PRL m RNA在下丘脑和垂体中均有表达，且垂体表达量最高，其垂体表达量显著高于下丘脑，与郑嫩珠等[19]研究的VIPR表达规律一致。魏茹华[20]研究表明，在鹅休产期垂体和下丘脑中PRL m RNA表达量极显著高于卵巢，与本实验结果一致，说明在哺乳动物和家禽中PRL生理功能及表达规律具有相似性。Picazo等[21]通过对西班牙美利奴羊注射溴隐亭来减少PRL分泌，发现卵巢中直径为2～3 mm的卵泡数量显著减少。Nakamura等[22]研究发现在卵母细胞和颗粒细胞共培养体系中加入PRL后，抑制了E2的产生并刺激促卵泡素（FSH）诱导P4产生，说明卵巢中PRL与早期卵泡发育和卵巢颗粒细胞甾体激素的分泌有关。图3 小尾寒羊各组织PRL m RNA相对表达水平
小尾寒羊各组织PRL m RNA相对表达水平
【参考文献】：
期刊论文
[1]光控对内蒙古绒山羊血液中褪黑激素和催乳素及产绒性能的影响[J]. 杨敏,宋伸,陈潇飞,玛哈巴·肉孜,蒋琳,马月辉. 家畜生态学报. 2017(12)
[2]绵羊H-FABP基因不同组织表达差异研究[J]. 赵雪,曹阳,周国利,金海国,赵玉民. 黑龙江畜牧兽医. 2014(05)
[3]黑番鸭血管活性肠肽受体-1基因（VIPR-1）的cDNA克隆及其组织表达特性分析[J]. 郑嫩珠,陈晓燕,陈晖,朱志明,缪中纬,辛清武,王正朝,卢立志. 农业生物技术学报. 2012(05)
[4]宁夏滩母羊的生殖激素变化规律研究[J]. 周桂云,柴君秀,王和平,马乐天. 现代农业科技. 2009(23)
[5]催乳素对人B淋巴细胞IgG基因表达影响的实验研究[J]. 孙翔,王辉. 陕西医学杂志. 2008(11)
[6]催乳素保护人B淋巴细胞免其凋亡的实验研究[J]. 孙翔,王辉. 陕西医学杂志. 2007(07)
[7]催乳素结构与功能研究进展[J]. 张耀,郭定宗. 动物医学进展. 2007(05)
[8]退化期的乳腺凋亡及其调节机理[J]. 狄和双,阎晓东,王根林. 畜牧与兽医. 2007(03)
[9]催乳素对人B淋巴细胞增殖功能的影响[J]. 孙翔,孙清河,王辉. 新乡医学院学报. 2006(02)
[10]子宫内膜催乳素功能及信号转导机制[J]. 王海燕. 国外医学.妇产科学分册. 2003(06)
博士论文
[1]应用RNA干扰技术敲除催乳素受体研究自分泌催乳素对激活的Jurkat细胞的免疫调控作用[D]. 许东明.福建医科大学 2008
硕士论文
[1]鹅生殖周期催乳素基因（PRL）mRNA表达规律的研究[D]. 魏茹华.安徽农业大学 2009
[2]催乳素基因多态性及其与小尾寒羊高繁殖力相关性的研究[D]. 代鸥.四川农业大学 2007
本文编号：3067453
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