蛋氨酸和生物素对体外培养绒山羊次级毛囊生长的影响
发布时间：2021-12-16 16:12
本研究旨在探讨蛋氨酸和生物素对绒山羊次级毛囊体外生长和形态的影响及作用。采用酶法和体外机械分离技术分离绒山羊次级毛囊,挑选出形态完整的次级毛囊用于毛囊体外培养。试验1:采用单因素试验设计,将分离出来的完整毛囊随机分为5组,每组4个重复,每个重复12根毛囊,共240根次级毛囊,对照组为Williams E基础培养液,试验组在基础培养液中依次添加7.5、15.0、30.0和60.0 mg/L蛋氨酸。试验2:采用单因素试验设计,将分离出来的完整毛囊随机分为4组,每组3个重复,每个重复10根毛囊,共120根次级毛囊,对照组为Williams E基础培养液,试验组在基础培养液中依次添加0.25、0.50和1.00 mg/L生物素。2个试验的毛囊均培养7 d,培养期间每隔24 h测量毛囊生长长度,并拍照测定其形态,试验结束后测定毛囊DNA合成量。试验1结果表明:与对照组比,15.0 mg/L蛋氨酸组次级毛囊累计长度和生长速度显著提高（P<0.05）,毛球部形态保持最好。且15.0 mg/L蛋氨酸组的次级毛囊DNA含量最高。试验2结果表明:与对照组相比,0.50 mg/L生物素组次级毛囊累计长...
【文章来源】：动物营养学报. 2020,32(09)北大核心CSCD
【文章页数】：8 页
【部分图文】：
图1 分离完整的次级毛囊
在Met、生物素不同添加水平的培养条件下，毛囊的生长长度、生长速度以及毛球部的形态情况均有所不同，体外培养次级毛囊形态变化见图2。对照组的次级毛囊体外培养至第4天，毛球形态逐渐变的不规则，并且毛母质与毛乳头二者之间的界限开始变得模糊，毛囊生长速度从这时候开始逐渐变缓慢（图2-B）。体外培养次级毛囊第7天时，次级毛囊毛球部位结构变得松散且逐渐模糊，毛母质开始萎缩并与毛乳头距离变大（图2-C）。30.0 mg/L Met组毛囊形态变化第4天（图2-D）毛囊毛乳头细胞分裂增殖使毛干及内外根鞘延长，毛乳头与毛母质界限逐渐模糊，外层真皮鞘上皮细胞结构松散，但不如对照组明显，结缔组织鞘无明显变化。培养第7天（图2-E），毛乳头与毛母质界限模糊，但仍能看清毛乳头轮廓，毛干与内皮根鞘之间和毛球部结构层次的界限模糊。0.25 mg/L生物素组次级毛囊体外培养至第4天时（图2-F），毛囊形态发生明显变化，内外根鞘界限不清晰，在培养第7天时毛囊整体结构变得更加模糊松散（图2-G），但不如对照组明显。培养到第7天时（图2-I),0.5 mg/L生物素促进了毛乳头和毛母质细胞分裂增殖。2.2 添加Met对体外培养次级毛囊生长长度和DNA含量的影响
由表1可知，添加Met对体外培养的绒山羊次级毛囊的DNA含量呈显著的二次曲线关系（P<0.05）。其回归方程为y=-0.024 7x2+1.569 2x+45.232(R2=0.690 8），根据拟合曲线得出Met最适添加水平为31.77 mg/L。随着Met添加水平的提高，次级毛囊DNA含量呈低-高-低的趋势，其中15.0 mg/L Met促次级毛囊DNA合成效果最好，与对照组相比，平均每根次级毛囊DNA含量提高了76.44%。2.3 添加生物素对体外培养次级毛囊生长长度和DNA含量的影响
【参考文献】：
期刊论文
[1]妊娠期绒山羊母羊饲粮添加过瘤胃蛋氨酸对羔羊绒毛品质的影响[J]. 高晔,闫海龙,闫玉清,牛春红,陈玉林. 家畜生态学报. 2019(08)
[2]陕北白绒山羊皮肤毛囊形态结构及其特征参数与产绒性状的相关性分析[J]. 史雷,屈雷,刘锦旺,朱海鲸,李陇平,黄帅. 中国畜牧兽医. 2018(10)
[3]VEGF对体外培养绒山羊次级毛囊外根鞘细胞的影响[J]. 张婧婧,王德光,周小兵,高晔,何晓琳,陈玉林,张恩平. 畜牧兽医学报. 2018(06)
[4]蛋氨酸对70日龄吉林白鹅产绒性能及IGF-Ⅰ基因mRNA相对表达量的影响[J]. 刘逍,滕战伟,娄玉杰. 中国畜牧杂志. 2017(01)
[5]LiCl对绒山羊毛囊生长和β-catenin表达的影响[J]. 刘海静,刘海英,杨桂芹,董维国. 沈阳农业大学学报. 2016(06)
[6]褪黑激素对内蒙古绒山羊初级毛囊体外培养影响的研究[J]. 张铁佳,王岩,王琳,吴静,史振丹,赵艳红. 中国农业大学学报. 2016(11)
[7]不同培养条件对水貂毛囊体外培养的影响[J]. 南韦肖,张海华,司华哲,万春孟,周宁,李光玉,娄玉杰. 畜牧与兽医. 2016(05)
[8]不同蛋氨酸水平对獭兔各项指标的影响[J]. 堵光莹,畅丽芳,迟玉杨,刘畅,邵大富,沈景林,柏明娜,王多伽,彭易柱. 饲料研究. 2014(05)
[9]不同条件对绒山羊体外培养初级毛囊生长的影响[J]. 李蘅,李金泉,曹贵方,张文广. 安徽农业科学. 2008(36)
[10]不同的体外培养条件对绵羊毛囊生长的影响[J]. 汪长寿,曹贵方. 安徽农业科学. 2008(10)
博士论文
[1]生长獭兔毛囊发育规律及蛋氨酸调控机制研究[D]. 吴振宇.山东农业大学 2016
硕士论文
[1]初步探究雄激素对和田羊毛囊及角蛋白的影响[D]. 王洪阳.塔里木大学 2019
本文编号：3538439
【文章来源】：动物营养学报. 2020,32(09)北大核心CSCD
【文章页数】：8 页
【部分图文】：
图1 分离完整的次级毛囊
在Met、生物素不同添加水平的培养条件下，毛囊的生长长度、生长速度以及毛球部的形态情况均有所不同，体外培养次级毛囊形态变化见图2。对照组的次级毛囊体外培养至第4天，毛球形态逐渐变的不规则，并且毛母质与毛乳头二者之间的界限开始变得模糊，毛囊生长速度从这时候开始逐渐变缓慢（图2-B）。体外培养次级毛囊第7天时，次级毛囊毛球部位结构变得松散且逐渐模糊，毛母质开始萎缩并与毛乳头距离变大（图2-C）。30.0 mg/L Met组毛囊形态变化第4天（图2-D）毛囊毛乳头细胞分裂增殖使毛干及内外根鞘延长，毛乳头与毛母质界限逐渐模糊，外层真皮鞘上皮细胞结构松散，但不如对照组明显，结缔组织鞘无明显变化。培养第7天（图2-E），毛乳头与毛母质界限模糊，但仍能看清毛乳头轮廓，毛干与内皮根鞘之间和毛球部结构层次的界限模糊。0.25 mg/L生物素组次级毛囊体外培养至第4天时（图2-F），毛囊形态发生明显变化，内外根鞘界限不清晰，在培养第7天时毛囊整体结构变得更加模糊松散（图2-G），但不如对照组明显。培养到第7天时（图2-I),0.5 mg/L生物素促进了毛乳头和毛母质细胞分裂增殖。2.2 添加Met对体外培养次级毛囊生长长度和DNA含量的影响
由表1可知，添加Met对体外培养的绒山羊次级毛囊的DNA含量呈显著的二次曲线关系（P<0.05）。其回归方程为y=-0.024 7x2+1.569 2x+45.232(R2=0.690 8），根据拟合曲线得出Met最适添加水平为31.77 mg/L。随着Met添加水平的提高，次级毛囊DNA含量呈低-高-低的趋势，其中15.0 mg/L Met促次级毛囊DNA合成效果最好，与对照组相比，平均每根次级毛囊DNA含量提高了76.44%。2.3 添加生物素对体外培养次级毛囊生长长度和DNA含量的影响
【参考文献】：
期刊论文
[1]妊娠期绒山羊母羊饲粮添加过瘤胃蛋氨酸对羔羊绒毛品质的影响[J]. 高晔,闫海龙,闫玉清,牛春红,陈玉林. 家畜生态学报. 2019(08)
[2]陕北白绒山羊皮肤毛囊形态结构及其特征参数与产绒性状的相关性分析[J]. 史雷,屈雷,刘锦旺,朱海鲸,李陇平,黄帅. 中国畜牧兽医. 2018(10)
[3]VEGF对体外培养绒山羊次级毛囊外根鞘细胞的影响[J]. 张婧婧,王德光,周小兵,高晔,何晓琳,陈玉林,张恩平. 畜牧兽医学报. 2018(06)
[4]蛋氨酸对70日龄吉林白鹅产绒性能及IGF-Ⅰ基因mRNA相对表达量的影响[J]. 刘逍,滕战伟,娄玉杰. 中国畜牧杂志. 2017(01)
[5]LiCl对绒山羊毛囊生长和β-catenin表达的影响[J]. 刘海静,刘海英,杨桂芹,董维国. 沈阳农业大学学报. 2016(06)
[6]褪黑激素对内蒙古绒山羊初级毛囊体外培养影响的研究[J]. 张铁佳,王岩,王琳,吴静,史振丹,赵艳红. 中国农业大学学报. 2016(11)
[7]不同培养条件对水貂毛囊体外培养的影响[J]. 南韦肖,张海华,司华哲,万春孟,周宁,李光玉,娄玉杰. 畜牧与兽医. 2016(05)
[8]不同蛋氨酸水平对獭兔各项指标的影响[J]. 堵光莹,畅丽芳,迟玉杨,刘畅,邵大富,沈景林,柏明娜,王多伽,彭易柱. 饲料研究. 2014(05)
[9]不同条件对绒山羊体外培养初级毛囊生长的影响[J]. 李蘅,李金泉,曹贵方,张文广. 安徽农业科学. 2008(36)
[10]不同的体外培养条件对绵羊毛囊生长的影响[J]. 汪长寿,曹贵方. 安徽农业科学. 2008(10)
博士论文
[1]生长獭兔毛囊发育规律及蛋氨酸调控机制研究[D]. 吴振宇.山东农业大学 2016
硕士论文
[1]初步探究雄激素对和田羊毛囊及角蛋白的影响[D]. 王洪阳.塔里木大学 2019
本文编号：3538439
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