E 2 促进输卵管上皮细胞β-防御素1表达通路及转录组学分析
发布时间：2022-02-19 08:41
防御素是一种广泛存在于生物界的可以杀死细菌、真菌或者病毒等微生物并有抗肿瘤活性的短肽,是先天性免疫系统的重要组成部分。研究表明,绵羊血液中雌激素的变化会引起其生殖器官β-防御素1（sheep beta defensin 1 SBD-1）表达量的变化,并呈正相关。进行体外雌激素对绵羊输卵管上皮细胞内SBD-1表达调控机制的研究,对研究雌激素和粘膜免疫的关系意义较大。本实验通过RT-qPCR技术检测不同浓度的17-β雌二醇（17β-estrodiol E2）、作用不同时间后对培养的绵羊输卵管上皮细胞SBD-1表达的影响,确定出适合的添加剂量和时间。实验结果表明,10-8mol/L为E2刺激最佳的浓度,3.5 h为其最高表达量时间点,与对照组0h相比有显著性升高（P<0.05）,3.5h后随着时间的增加,SBD-1的表达量逐渐降低,但均高于对照组。通过对E2作用培养的输卵上皮细胞进行转录组学分析,结果表明,在所有差异基因中共有619个富集到GO-Term中,其中显著性富集到生物过程的基因有氧化还原过...
【文章来源】：内蒙古农业大学内蒙古自治区
【文章页数】：57 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
PI3K-Akt通路Fig.1PI3K-AktPathway
PI3K/Akt 信号传导通路是生物机体中一个关键的调节通路，随着研究的深入，与其有关的下游通路也相继被人们发现。而与它相关的下游关键蛋白也逐渐被人们重视起来，进行更深入的研究。例如 NF-κB、GSK-3β、m TOR、Bad、MDM2、Caspase9、P70S6K、FKHR 等[36]。这些通路的相关生物学功能，对生物体既有好的促进作用，同时对生物体也有坏的一面，通过对该通路进行更加深入的研究，了解它的作用机制和所有相关的关键蛋白的调节机制，为药物开发和疾病治疗提供理论知识。1.6 MAPK 信号通路的研究进展1.6.1 MAPK 信号通路的概述MAPK 是一类广泛存在于哺乳动物体内的一类丝/苏氨酸蛋白激酶，主要有ERK1/2、ERK5、JNK 和 p38 四个亚族。在真核细胞内，MAPK 通过转录因子磷酸化而改变基因的表达水平，参与介导胚胎发育、细胞生长、增殖、分化、凋亡等多种复杂的生物功能[38]。MAPK 通路可以被细胞外的信号或刺激所激活，如物理应激、生长因子、炎症因子、细菌和病毒等。该通路采用经典的三级激酶级联传递信号的方式[38]。具体过程如下图 2 所示。
图 3 体外培养输卵管上皮细胞Fig.3 The character of oviduct epithelial cellE2细胞毒性检测培养绵羊输卵管上皮细胞的活性和添加 E2等对细行检测，如图 4、5 所示，体外添加 E2细胞的活和增殖无明显差异，说明添加一定量的 E2等对细后续实验。
【参考文献】：
期刊论文
[1]转录组在肿瘤中的应用及进展[J]. 陈柳,华清泉. 中国医药导报. 2016(06)
[2]长链非编码RNA及其在家畜中的应用与展望[J]. 蔡含芳,李明勋,陈宏. 中国牛业科学. 2015(06)
[3]高通量转录组测序技术及其在鳞翅目昆虫上的应用[J]. 杨帆,黄立华,张爱兵. 昆虫学报. 2014(08)
[4]PI3K/Akt信号通路介导的细胞凋亡机制研究进展[J]. 潘蓉蓉,金永喜,朱文宗. 浙江中西医结合杂志. 2013(01)
[5]防御素的生物学特性及其抗病基因工程[J]. 付蓝宝,于嘉林,刘伟华. 遗传. 2011(05)
[6]防御素的研究进展和应用前景[J]. 刘媛媛,赵宝华. 中国医药生物技术. 2009(04)
[7]非编码RNA的研究进展[J]. 贾栋. 中国农学通报. 2009(13)
[8]蒙古绵羊雌性生殖道β-防御素（sBD-1）的序列分析及组织表达[J]. 唐博,曹贵方,吕东媛,杜晨光. 中国兽医学报. 2008(08)
[9]哺乳动物防御素的研究进展及其应用前景[J]. 许钦坤,赵翠燕. 饲料博览(技术版). 2007(01)
[10]猪β-防御素的研究进展及其应用前景[J]. 金海丽,许梓荣. 饲料博览. 2002(11)
博士论文
[1]PI3K/Akt信号通路调控胞内布鲁氏菌16M存活的分子机制研究[D]. 张俊波.石河子大学 2014
[2]17-β雌二醇调控绵羊输卵管上皮细胞β-防御素1基因表达过程中NF-κB信号通路的研究[D]. 温世勇.内蒙古农业大学 2014
[3]半滑舌鳎和牙鲆的转录组测序及初步分析[D]. 王文基.中国海洋大学 2014
[4]17β-雌二醇对绵羊输卵管上皮细胞β-防御素基因表达的影响及可能的信号通路[D]. 包图雅.内蒙古农业大学 2010
硕士论文
[1]益生菌对雏鸡免疫器官免疫功能及β-防御素-1mRNA表达的影响[D]. 张迪.东北农业大学 2015
[2]抗菌肽在纺织品抗菌整理中的应用[D]. 陈蓉.青岛大学 2010
[3]家蚕EST分析系统的构建及初步分析[D]. 刘玉明.浙江大学 2005
本文编号：3632582
【文章来源】：内蒙古农业大学内蒙古自治区
【文章页数】：57 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
PI3K-Akt通路Fig.1PI3K-AktPathway
PI3K/Akt 信号传导通路是生物机体中一个关键的调节通路，随着研究的深入，与其有关的下游通路也相继被人们发现。而与它相关的下游关键蛋白也逐渐被人们重视起来，进行更深入的研究。例如 NF-κB、GSK-3β、m TOR、Bad、MDM2、Caspase9、P70S6K、FKHR 等[36]。这些通路的相关生物学功能，对生物体既有好的促进作用，同时对生物体也有坏的一面，通过对该通路进行更加深入的研究，了解它的作用机制和所有相关的关键蛋白的调节机制，为药物开发和疾病治疗提供理论知识。1.6 MAPK 信号通路的研究进展1.6.1 MAPK 信号通路的概述MAPK 是一类广泛存在于哺乳动物体内的一类丝/苏氨酸蛋白激酶，主要有ERK1/2、ERK5、JNK 和 p38 四个亚族。在真核细胞内，MAPK 通过转录因子磷酸化而改变基因的表达水平，参与介导胚胎发育、细胞生长、增殖、分化、凋亡等多种复杂的生物功能[38]。MAPK 通路可以被细胞外的信号或刺激所激活，如物理应激、生长因子、炎症因子、细菌和病毒等。该通路采用经典的三级激酶级联传递信号的方式[38]。具体过程如下图 2 所示。
图 3 体外培养输卵管上皮细胞Fig.3 The character of oviduct epithelial cellE2细胞毒性检测培养绵羊输卵管上皮细胞的活性和添加 E2等对细行检测，如图 4、5 所示，体外添加 E2细胞的活和增殖无明显差异，说明添加一定量的 E2等对细后续实验。
【参考文献】：
期刊论文
[1]转录组在肿瘤中的应用及进展[J]. 陈柳,华清泉. 中国医药导报. 2016(06)
[2]长链非编码RNA及其在家畜中的应用与展望[J]. 蔡含芳,李明勋,陈宏. 中国牛业科学. 2015(06)
[3]高通量转录组测序技术及其在鳞翅目昆虫上的应用[J]. 杨帆,黄立华,张爱兵. 昆虫学报. 2014(08)
[4]PI3K/Akt信号通路介导的细胞凋亡机制研究进展[J]. 潘蓉蓉,金永喜,朱文宗. 浙江中西医结合杂志. 2013(01)
[5]防御素的生物学特性及其抗病基因工程[J]. 付蓝宝,于嘉林,刘伟华. 遗传. 2011(05)
[6]防御素的研究进展和应用前景[J]. 刘媛媛,赵宝华. 中国医药生物技术. 2009(04)
[7]非编码RNA的研究进展[J]. 贾栋. 中国农学通报. 2009(13)
[8]蒙古绵羊雌性生殖道β-防御素（sBD-1）的序列分析及组织表达[J]. 唐博,曹贵方,吕东媛,杜晨光. 中国兽医学报. 2008(08)
[9]哺乳动物防御素的研究进展及其应用前景[J]. 许钦坤,赵翠燕. 饲料博览(技术版). 2007(01)
[10]猪β-防御素的研究进展及其应用前景[J]. 金海丽,许梓荣. 饲料博览. 2002(11)
博士论文
[1]PI3K/Akt信号通路调控胞内布鲁氏菌16M存活的分子机制研究[D]. 张俊波.石河子大学 2014
[2]17-β雌二醇调控绵羊输卵管上皮细胞β-防御素1基因表达过程中NF-κB信号通路的研究[D]. 温世勇.内蒙古农业大学 2014
[3]半滑舌鳎和牙鲆的转录组测序及初步分析[D]. 王文基.中国海洋大学 2014
[4]17β-雌二醇对绵羊输卵管上皮细胞β-防御素基因表达的影响及可能的信号通路[D]. 包图雅.内蒙古农业大学 2010
硕士论文
[1]益生菌对雏鸡免疫器官免疫功能及β-防御素-1mRNA表达的影响[D]. 张迪.东北农业大学 2015
[2]抗菌肽在纺织品抗菌整理中的应用[D]. 陈蓉.青岛大学 2010
[3]家蚕EST分析系统的构建及初步分析[D]. 刘玉明.浙江大学 2005
本文编号：3632582
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