转录因子Nkx2.5、ISL-1的表达与小鼠胚胎心脏的早期发育
本文关键词:转录因子Nkx2.5、ISL-1的表达与小鼠胚胎心脏的早期发育 出处:《山西医科大学》2010年硕士论文 论文类型:学位论文
更多相关文章: Nkx2.5 ISL-1 第二生心区 胚胎心脏 脏壁中胚层
【摘要】: 研究背景:胚胎心脏的形态发生受不同信号系统和转录因子的调节,在独特的信号系统和转录因子调节下,构成第一生心区的胚盘头端两侧生心中胚层随胚盘卷折,在腹侧中央融合为原始心管,分化为成体心脏左心室的原基,而胚胎心脏的流出道、右心室、部分心房则由前肠腹侧,称之为第二生心区的间充质分化为心肌前体细胞,进而分化为心肌细胞,不断添加到心管的动脉端和静脉端而形成。应用转基因和基因敲除等技术发现,转录因子Nkx2.5和ISL-1是调控第一和第二生心区心肌前体细胞分化发育的重要蛋白,Nkx2.5和ISL-1基因突变或基因敲除引发先天性心脏畸形或胚胎死亡,但Nkx2.5和ISL-1蛋白在正常胚胎心脏早期发育过程中的表达差异、时空表达规律以及在第二生心区的时空分布特点尚未见系统报道。探讨心脏形态发生过程中转录因子Nkx2.5,ISL-1蛋白在第一、第二生心区以及心脏发育早期的时空表达特点,可以为进一步研究心脏发育机制提供可靠的实验依据。 研究目的:探讨转录因子Nkx2.5、ISL-1的表达和小鼠胚胎早期心脏发育的关系。 研究方法:胚龄7.5-13d小鼠胚胎心脏连续石蜡切片,用抗α-平滑肌肌动蛋白(a-SMA)抗体,抗心肌肌球蛋白重链(MHC)抗体,抗转录因子ISL-1抗体,抗Nkx2.5抗体,进行免疫组织化学染色。 研究结果:小鼠胚胎发育第7.5d,转录因子Nkx2.5在生心板显较强表达,而心肌特异性蛋白MHC及SMA的表达明显滞后。胚龄8-12d小鼠胚胎,随心脏外形建立,Nkx2.5与MHC的表达模式趋于相同,在心脏各部表达逐渐增强。IS1-1开始表达于胚龄8d时原始心管的心背系膜及前肠腹侧、心包腔背侧壁脏壁中胚层间充质。胚龄9d,Nkx2.5阳性表达从原始心管动脉端延伸至咽周围心包腔背侧壁脏壁中胚层及轴旁中胚层,参与流出道心肌的发育。胚胎发育10d后,大部分心背系膜消失,ISL-1阳性间充质细胞的数量随发育明显增加,在前肠腹侧形成连续的ISL-1阳性细胞带,将流出道远端和心房心背系膜相连。胚龄11-12d,心管经右侧成襻等形态发生过程,心脏外形基本建立,流出道远端出现Nkx2.5和MHC表达阴性,SMA和ISL-1表达阳性区域。ISL-1阳性细胞的数量在胚胎11-12d达顶峰,尤以动脉端数量增加明显。胚胎发育13d后,Nkx2.5和ISL-1在心脏和前肠腹侧间充质的表达强度下降。 研究结论:Nkx2.5是原始生心区生心板心肌前体细胞表达较早的特异性标记蛋白。Nkx2.5在第二生心区的表达有时空特异性,主要限于胚胎发育第9d,心管头端咽周脏壁中胚层和轴旁中胚层,是第二生心区心肌前体细胞亚群,参与流出道心肌发育。第二生心区ISL-1阳性心肌前体细胞出现于胚胎发育第8d的心背系膜和前肠腹侧脏壁中胚层,其数量在胚胎11-12d达顶峰,提示小鼠胚胎发育8-12d是第二生心区心肌前体细胞向心肌分化并向发育中的心脏添加心肌细胞,驱动心管完成心脏成襻以及形态发生过程的关键时期。胚胎发育11-12d,第二生心区间充质细胞开始分化为升主动脉和肺动脉干的平滑肌。
[Abstract]:Background: the morphology of cardiac embryogenesis regulated by different transcription factors and signaling system, with the regulation of signal system and unique transcription factor, a life of heart area blastoderm head end on both sides of cardiogenic mesoderm with the blastoderm folded, primitive heart tube in the ventral central fusion, differentiate into the left ventricle of the heart. Fetal heart primordia, and right ventricular outflow tract, atria part from ventral to the foregut, called the second heart field mesenchymal differentiation into myocardial precursor cells, and then differentiated into myocardial cells, continue to add to the arterial and venous end to end heart tube formation. Application of transgenic and knockout technology found that the transcription factor Nkx2.5 and ISL-1 protein is an important regulation of the first and second heart myocardial precursor cells differentiation, Nkx2.5 and ISL-1 gene mutation or gene knockout lead to congenital heart malformations or embryo death, but Nkx2.5 Differential expression of ISL-1 protein in normal and early embryonic development in the process of the heart, and the temporal and spatial expression of the heart in second spatial distribution characteristics have not been reported. The transcription factor Nkx2.5 on heart morphogenesis, ISL-1 protein in the first and second heart field and early heart development the spatiotemporal expression characteristics, can provide reliable experimental basis for further study on the mechanism of heart development.
Objective: To investigate the relationship between the expression of transcription factor Nkx2.5, ISL-1 and the early embryonic development of mouse embryos.
Research methods: embryonic heart 7.5-13d mice embryo continuous paraffin section, using anti alpha smooth muscle actin (a-SMA) antibody, anti cardiac myosin heavy chain (MHC) antibody, anti transcription factor ISL-1 antibody, anti Nkx2.5 antibody, immunohistochemical staining.
Results: the 7.5d mouse embryo development, transcription factor Nkx2.5 in heart plate significantly strong expression and expression of cardiac specific protein MHC and SMA was significantly delayed. 8-12d embryonic mouse embryos, with heart shape, the expression pattern of Nkx2.5 and MHC tend to be the same, in the heart of the expression of.IS1-1 increased gradually began to express in dorsal mesocardium and ventral foregut detected 8D primitive heart tube, dorsal pericardial cavity splanchnic mesoderm derived mesenchymal 9D. The embryo age, the positive expression of Nkx2.5 in arteries from primitive heart tube end is extended to peripharyngeal pericardial cavity dorsal ectoderm splanchnic mesoderm and paraxial, participate in the cardiac outflow tract the development of embryo development. After 10d, most dorsal mesocardium disappeared, the number of ISL-1 positive mesenchymal cells increased significantly with the development, the formation of ISL-1 positive cells in a continuous band ventral to the foregut, the distal part of the outflow tract and atrial dorsal mesocardium embryonic heart connected. 11-12d Tube loop morphogenesis via right heart shape, basically established, the distal part of the outflow tract of Nkx2.5 and negative expression of MHC, SMA and ISL-1 expression of the number of positive area of.ISL-1 positive cells peaked in embryonic 11-12d, especially in the artery end increased obviously. The embryonic development of 13D, decreased expression levels of Nkx2.5 and ISL-1 in the heart and ventral to the foregut mesenchyme.
Conclusion: Nkx2.5 is the primary heart field cardiac precursor cells in the early marker of.Nkx2.5 has spatio-temporal expression in the second heart field, mainly confined to the embryonic development of the 9D, the heart tube end peripharyngeal Zangbi mesoderm and paraxial mesoderm, second heart myocardial precursor cells in the subgroup of outflow tract myocardial development. Second heart ISL-1 positive cardiac progenitor cells appeared dorsal mesocardium and ventral foregut visceral mesoderm in embryonic development in 8D, the number reached a peak in the embryo development of mouse embryo 8-12d 11-12d, that is second heart myocardium before heart somatic cell differentiation into cardiomyocytes in addition to the development of myocardial cells, driving the heart tube to complete heart into a critical period and loop morphogenesis of embryonic development. 11-12d, second heart field mesenchymal cells begin to differentiate into ascending aorta and pulmonary artery smooth Smooth muscle.
【学位授予单位】:山西医科大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2010
【分类号】:R329.1
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 赵四海;郑华东;楚雍烈;林燕;张春芳;陈正兰;朱虹;杨鹏辉;刘恩岐;;两种小鼠胚胎移植方法的比较[J];第四军医大学学报;2007年06期
2 黄萍;刘伟信;赵成元;王丽;王颖佳;;不同冷冻保护剂和冷冻方法对小鼠胚胎发育的影响[J];实用医院临床杂志;2007年04期
3 吴珊珊;赵海波;武雁;张建芳;陈必良;;褪黑素对小鼠2-细胞期胚胎发育的影响[J];现代生物医学进展;2011年06期
4 应乐华;;胚胎生长中三种重要的物质[J];国外医学情报;1980年19期
5 卢丽华,朱伟杰,李菁;盐酸克仑特罗对小鼠胚胎体外发育的影响[J];生殖与避孕;2003年01期
6 田英,石川仁,山内彻;母鼠有机磷农药暴露对着床前期小鼠胚胎的细胞遗传学及生长发育的影响(英文)[J];环境与职业医学;2004年05期
7 刘少锋,周梁,李华伟,沈云珍;胚胎小鼠耳蜗感觉上皮的形态发生[J];中国耳鼻咽喉-头颈外科;2005年07期
8 熊吉信;刘小春;杨春江;刘兆轩;;小鼠胚胎干细胞饲养层的制备及两种不同饲养层的比较[J];江西医学院学报;2006年04期
9 周生来;董婉维;郑志红;杨葳;张梅英;史晓萍;王禄增;;胚胎冷冻技术应用于抗菌肽转基因小鼠的保种传代[J];中国比较医学杂志;2007年08期
10 段淑红;刘凯;尹海燕;赵世斗;刘丰韬;;凝集素受体WGA、RCA和ECL在过量维甲酸致昆明小鼠腭裂发生中的作用[J];山东大学学报(医学版);2009年06期
相关会议论文 前10条
1 周咏春;李康樗;张杰;刘军叶;郭国祯;;EMP对小鼠胚胎肢芽细胞的影响[A];中国毒理学会第二届全国中青年学者科技论坛会议论文集[C];2007年
2 谢辉蓉;夏国良;卜淑敏;雷蕾;汪建红;;促减数分裂甾醇可能参与调节小鼠胚胎卵巢卵泡发生[A];中国生理学会第21届全国代表大会暨学术会议论文摘要汇编[C];2002年
3 徐平;;实验大鼠、小鼠胚胎的缓慢冷冻和玻璃化冷冻的比较研究[A];中国实验动物学会青年科技协会第二届学术研讨会论文汇编[C];2001年
4 刘烈刚;刘恭平;姚平;郝丽萍;杨雪峰;孙秀发;朱清华;;维生素A缺乏对小鼠胚胎Hox-3.5mRNA表达的影响及其与胚胎发育关系的研究[A];中国营养学会第九次全国营养学术会议论文摘要汇编[C];2004年
5 孔英;石英;陈巍;燕秋;朱正美;;小鼠胚胎Le~Y寡糖抗原的分泌及其功能意义[A];第八届全国复合糖生物化学与分子生物学学术会议论文摘要论文集[C];2004年
6 谢利剑;黄国英;赵晓晴;齐春华;彭涛;周国民;;Cx40、Cx45在Cx43基因敲除小鼠胚胎心脏时表达的研究[A];中华医学会第十四次全国儿科学术会议论文汇编[C];2006年
7 倪华;;小鼠胚胎着床的分子调控[A];中国生理学会张锡钧基金会第八届全国青年优秀生理学学术论文综合摘要[C];2003年
8 谢利剑;黄国英;赵晓晴;齐春华;彭涛;周国民;;Cx40、Cx45在Cx43基因敲除小鼠胚胎心脏时空表达的研究[A];2006(第三届)江浙沪儿科学术会议暨浙江省儿科学术年会论文汇编[C];2006年
9 邢岩江;谷甜甜;黄治军;贺洪娟;吴琼;;UbcM2基因在小鼠胚胎中的表达分析[A];“细胞活动 生命活力”——中国细胞生物学学会全体会员代表大会暨第十二次学术大会论文摘要集[C];2011年
10 黄丽芳;周琨;胡采红;王芳;孙汉英;刘文励;;E10~E12期间小鼠胚胎心脏内皮细胞特性及与造血干细胞扩增相关分子变化水平的研究[A];第12届全国实验血液学会议论文摘要[C];2009年
相关重要报纸文章 前10条
1 记者 周襄楠;我校师生在美国《科学》杂志发表论文[N];新清华;2004年
2 冯卫东;科学家分离出人类胚胎中胚层祖细胞[N];科技日报;2010年
3 本报记者 何屹;幼时母为主,大了父决定[N];科技日报;2010年
4 本报记者 孔德芳;孟安明:忙并快乐着[N];科技日报;2006年
5 张忠霞;首次!大鼠胚胎中成功提取干细胞[N];医药经济报;2009年
6 刘道安;细胞产品国家工程研究中心启用间充质干细胞库[N];健康报;2007年
7 记者 刘道安 通讯员 李运红 赵迎;因肿瘤死亡居儿童死因第二位[N];中国中医药报;2005年
8 朱国荣;五岁前为儿童肿瘤多发期[N];大众卫生报;2005年
9 本报记者 余戈;贵州“小春虫”震惊世界[N];北京科技报;2004年
10 麦迪信;克隆技术将肿瘤转化为胚胎[N];医药经济报;2003年
相关博士学位论文 前10条
1 蔡玉瑾;胚胎心流出道的形态发生与呼吸内胚层发育偶联[D];山西医科大学;2012年
2 乔爱秀;胚胎心脏传导系的发育[D];山西医科大学;2012年
3 钮炜西;小鼠胚胎脐血管的造血功能研究[D];第三军医大学;2012年
4 井然;Cypher和ENH在小鼠早期心脏发育中的作用及其分子机制[D];中南大学;2012年
5 刘伟信;胚胎冷冻保存技术应用研究[D];四川大学;2006年
6 赵珏;转录因子Spr2调控中胚层形成和神经外胚层后部化[D];清华大学;2004年
7 高娇;小鼠胚胎造血前体细胞的表面标志研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2011年
8 黄丽芳;小鼠胚胎E10~E12造血扩增部位的探寻及其分子作用机制的研究[D];华中科技大学;2009年
9 陈炜;大鼠骨髓间充质干细胞转染Nkx2.5、GATA4、TBX5启动心肌细胞分化机制的实验研究[D];河北医科大学;2012年
10 杨艳萍;胚胎心脏流出道的分隔与重塑[D];山西医科大学;2009年
相关硕士学位论文 前10条
1 冯先玲;转录因子Nkx2.5、ISL-1的表达与小鼠胚胎心脏的早期发育[D];山西医科大学;2010年
2 李韧;小鼠胚胎循环血的造血潜能分析[D];中国人民解放军军事医学科学院;2011年
3 李兆麟;中胚层疗法治疗雄激素脱发疗效观察[D];安徽医科大学;2010年
4 丁晓燕;小鼠胚胎体外侵袭人卵巢癌细胞HO8910PM机制研究[D];重庆医科大学;2011年
5 陈冬波;CD43表达与造血干细胞发育的相关性研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2011年
6 吴凤宇;人输卵管上皮细胞共培养和表皮生长因子对小鼠受精卵体外发育影响[D];天津医科大学;2006年
7 赵磊;流体剪切力对小鼠胚胎成骨细胞增殖及细胞周期的影响[D];兰州大学;2010年
8 蒲荻;转录因子Tbx18在小鼠胚胎心脏发育中的表达及作用研究[D];重庆医科大学;2012年
9 杨曦;小鼠胚胎发育过程中肝脏差异蛋白质组分析[D];重庆医科大学;2005年
10 时小艳;小鼠原始生殖细胞(PGCs)中组蛋白H2A变体的分布[D];南京农业大学;2008年
,本文编号:1407560
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/shiyanyixue/1407560.html