当前位置:主页 > 医学论文 > 实验医学论文 >

非清髓性预处理诱导小鼠心脏移植免疫耐受的研究

发布时间:2018-08-21 20:34
【摘要】: 目的:(1)通过比较各种不同的预处理方案,筛选出一种低毒性、适合临床实验、能诱导出长期稳定的供者特异性免疫耐受等优点的预处理方案,为进一步临床实验提供可靠的实验依据。(2)探讨移植早期残余宿主抗供者抗原的成熟T细胞在急性排斥反应、造血干细胞增殖与免疫耐受中的作用,以更好地指导建立有效、可行的诱导免疫耐受的方案。 方法:(1)建立小鼠耳后心脏移植模型。全身X线照射(TBI)、注射抗胸腺细胞血清(ATS)与输注供者C57BL/6(H-2b)骨髓细胞(5.0×10~6)等不同组合,给予受者BALB/C(H-2d)小鼠进行不同预处理,共11组,然后进行心脏移植,术后不给任何免疫抑制治疗。10倍放大镜下观察心脏跳动情况,心脏跳动完全停止视为排斥反应。骨髓移植后28天常规检测外周血中嵌合体。(2)受体BALB/C小鼠分三组,分别给予TBI(800cGy)+ BMT、TBI(450cGy)+BMT、ATS+TBI(450cGy)+BMT三种不同的方案,分别于BMT后第7、第14、第21、第28、第42天检测其外周血、脾脏、胸腺中嵌合体。(3)分别以T细胞敲除小鼠(C57BL/6TCRα-KO)与正常C57BL/6小鼠作为受体,给予同样的TBI(450cGy)+BMT预处理,然后进行心脏移植。BMT后28天常规检测血中嵌合体。 结果:(1)移植心脏存活时间的比较:给予ATS+亚致死量TBI(450cGy)+骨髓移植(BMT)联合预处理,效果最好,与致死量TBI(800cGy)+骨髓移植(BMT)联合预处理相比,没有显著性差异(p0.05)。而TBI(450cGy)+骨髓移植(BMT)组的移植心平均存活时间仅22.1±9.4天,与前2组对比呈显著性差异(p0.001)。其他仅给予ATS或/和TBI、ATS+BMT等预处理的对照组,其移植心脏均在早期出现排斥反应。(2)外周血中嵌合体分析:给予TBI(450/800cGy)+BMT与ATS+TBI(450cGy)+BMT预处理组,BMT后28天均完全异体细胞嵌合,嵌合率99%,它们之间没有显著性差异(p0.05)。但TBI(800cGy)+ BMT与ATS+TBI(450cGy)+BMT组的嵌合体中,供者T细胞比例明显高于TBI(450cGy)+BMT组,呈显著性差异(p0.001),说明前两组预处理方案易于使供者T细胞增殖。ATS+ +BMT(无TBI)组,术后28天未能检测出嵌合体,说明单纯使用ATS嵌合体形成不稳定,消失早。在对照组中,TBI(450cGy)预处理组,术后28天血中T细胞比例明显低于单独ATS(无TBI)预处理组,呈显著性差异(p0.01),说明TBI可以有效地杀伤受者T细胞。(3)BMT后早期(第7天):TBI(450cGy)+BMT预处理组,在外周血与脾脏中均可看到受体本身T细胞存活,在胸腺中几乎为受体自身细胞,而TBI(800cGy)+ BMT、ATS+TBI(450cGy)+BMT两组,在外周血中几乎看不到受体本身T细胞,在脾脏中仅看到极少数,在胸腺中已出现较多供者细胞嵌合。(4)予TBI(450cGy)+BMT预处理的C57BL/6TCRα-KO小鼠组,其移植心脏全部获得长期存活,BMT后28天获完全异体细胞嵌合,而给予同样预处理的C57BL/6小鼠其移植心脏存活时间短,BMT后28天嵌合体形成不稳定,其中大多数嵌合率10%。两者均呈显著性差异(p0.001)。说明:无T细胞宿主可以使供者造血干细胞在同等预处理条件下易于植活,形成较稳定的嵌合体,诱导长期的供者特异性免疫耐受。 结论:(1)持久的供者造血干细胞嵌合体是诱导供-受者特异性长期稳定免疫耐受的重要条件。(2)移植早期彻底清除或灭活受体抗供体抗原的成熟T细胞,不但有利于避免早期急性排斥反应,而且有利于供者造血干细胞的植活,以获得持久稳定的异体造血干细胞嵌合体与中枢性免疫细胞克隆清除,诱导特异性长期耐受。(3)亚致死量放射治疗仍是目前用于灭活受体成熟T细胞、提高供者造血干细胞植货活、形成嵌合体最有效、经济、方便的主要手段之一。(4)本研究表明:移植前ATS+TBI(450cGy)+BMT预处理方案效果最佳,可诱导供者特异性长期免疫耐受,并无GVHD、感染、慢性排斥反应等并发症。此方案在各项治疗时间安排上比较适合于临床,可供临床应用借鉴,有重要的实用价值和指导意义。
[Abstract]:Objective: (1) By comparing various pretreatment schemes, a low toxicity, suitable for clinical trials, can induce long-term stable donor-specific immune tolerance and other advantages of the pretreatment scheme, to provide a reliable experimental basis for further clinical trials. (2) To explore the early residual host antigen in the transplantation of mature T cells. The role of acute rejection, hematopoietic stem cell proliferation and immune tolerance in order to better guide the establishment of an effective and feasible scheme for inducing immune tolerance.
Methods: (1) The model of heart transplantation was established in mice after ear transplantation. Total body X-ray irradiation (TBI), injection of anti-thymocyte serum (ATS) and infusion of donor C57BL/6 (H-2b) bone marrow cells (5.0 *10~6) were given to recipient BALB/C (H-2d) mice with different pretreatment. After heart transplantation, no immunosuppressive therapy was given. Chimerism in peripheral blood was detected routinely 28 days after bone marrow transplantation. (2) BALB/C mice were divided into three groups and given TBI (800cGy) + BMT, TBI (450cGy) + BMT, ATS + TBI (450cGy) + BMT, respectively, on the 7th, 14th, 21st, 28th and 42nd days after BMT. Chimeras in peripheral blood, spleen and thymus were measured. (3) T-cell knockout mice (C57BL/6TCR alpha-KO) and normal C57BL/6 mice were used as recipients respectively, and the same TBI (450cGy) + BMT pretreatment was given. The blood chimeras were routinely detected 28 days after BMT.
Results: (1) Comparing the survival time of transplanted heart: The combined pretreatment of ATS + sub-lethal dose TBI (450cGy) + bone marrow transplantation (BMT) was the best, and there was no significant difference (p0.05) compared with the combined pretreatment of lethal dose TBI (800cGy) + bone marrow transplantation (BMT). Chimerism analysis in peripheral blood: TBI (450/800 cGy) + BMT and ATS + TBI (450 cGy) + BMT preconditioning groups, BMT 28 days after BMT were completely allogeneic chimerism, chimerism rate was 99%. There was no significant difference between the two groups (p0.05). However, in the chimeras of TBI (800cGy) + BMT and ATS + TBI (450cGy) + BMT groups, the donor T cell ratio was significantly higher than that of TBI (450cGy) + BMT group (p0.001), indicating that the two preconditioning regimens were easy to proliferate donor T cells. TBI (450cGy) + BMT pretreatment group, 28 days after operation, the proportion of T cells in blood was significantly lower than that of ATS (without TBI) pretreatment group, showing significant difference (p0.01), indicating that TBI can effectively kill the recipient T cells. (3) Early after BMT (7th day): TBI (450cGy) + BMT pretreatment group, in peripheral blood and BMT pretreatment group. In the spleen, the T cells of the receptor itself survived, and in the thymus they were almost the recipient cells. In the TBI (800cGy) + BMT, ATS + TBI (450cGy) + BMT groups, the T cells of the receptor itself could hardly be seen in the peripheral blood, only a few in the spleen, and more donor cells were chimerized in the thymus. (4) TBI (450cGy) + BMT pretreated C57BL / BMT. In 6TCR alpha-KO mice, all the transplanted hearts survived for a long time, and complete allogeneic chimerism was obtained 28 days after BMT. However, C57BL/6 mice given the same pretreatment had a short survival time, and the chimerism formation was unstable 28 days after BMT. Most of the chimerism rates were 10%. There was a significant difference between the two groups (p0.001). Donor hematopoietic stem cells can be easily transplanted under the same pretreatment conditions to form stable chimeras and induce long-term donor-specific immune tolerance.
CONCLUSIONS: (1) Persistent donor-recipient hematopoietic stem cell chimerism is an important condition for inducing donor-recipient specific long-term stable immune tolerance. (2) Complete removal or inactivation of mature T cells from recipient antigen at early stage of transplantation is beneficial not only to avoid early acute rejection, but also to the transplantation and survival of donor-recipient hematopoietic stem cells. (3) Sublethal radiation therapy is still one of the most effective, economical and convenient methods for inactivating mature T cells of recipients, improving donor hematopoietic stem cell transplantation and forming chimeras. Pre-ATS+TBI(450cGy)+BMT preconditioning regimen has the best effect and can induce donor-specific long-term immune tolerance without GVHD, infection, chronic rejection and other complications.
【学位授予单位】:福建医科大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2008
【分类号】:R392

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 刘忠国,温端改;建立嵌合体诱导器官移植免疫耐受的研究进展[J];国外医学.泌尿系统分册;2005年06期

2 陈伟;刘德贵;;异体复合组织移植中免疫耐受的诱导[J];西南国防医药;2008年05期

3 叶明佶;谢续标;彭龙开;;骨髓细胞输注诱导的免疫耐受[J];中国组织工程研究与临床康复;2010年05期

4 王志余;葛永超;郑涛;赵晓武;吴书一;郭全喜;赵兴华;;亲属活体肾和造血干细胞联合移植诱导免疫耐受研究[J];医药论坛杂志;2009年23期

5 林国安;周一平;杨晓东;王国亮;;嵌合体大鼠诱导异种皮肤移植免疫耐受的初步研究[J];中华烧伤杂志;2007年03期

6 林国安;周一平;杨晓东;王国亮;;造血细胞嵌合体供者诱导异种移植物的免疫耐受☆[J];中国临床康复;2006年21期

7 孙建军;曲青山;王振璞;陈国勇;苗书斋;蔡文利;邢利;;骨髓干细胞在肾移植中诱导免疫耐受的机制探讨[J];山东医药;2009年36期

8 王谦;李立;李晓延;陈刚;;输注同基因骨髓间充质干细胞联合脾组织移植诱导肝移植大鼠的免疫耐受[J];中国组织工程研究与临床康复;2010年18期

9 史永照;李先兴;施晓敏;丁国善;傅志仁;;小剂量FK506作用下同种脾组织移植诱导大鼠原位肝移植术后免疫耐受的机制[J];第二军医大学学报;2006年09期

10 顾冰;马保根;房佰俊;宋永平;;异体脂肪源间充质干细胞移植后稳定嵌合体的形成及免疫耐受的诱导[J];河南职工医学院学报;2008年05期

相关会议论文 前10条

1 陈宝安;毕延智;张琰;丁家华;高冲;孙耘玉;程坚;王骏;赵刚;;非清髓性骨髓移植诱导异基因小鼠免疫耐受的实验研究[A];2005年华东六省一市血液病学学术会议暨浙江省血液病学学术年会论文汇编[C];2005年

2 陈宝安;毕延智;张琰;丁家华;高冲;孙耘玉;程坚;王骏;赵刚;;非清髓性骨髓移植诱导异基因小鼠免疫耐受的实验研究[A];第10届全国实验血液学会议论文摘要汇编[C];2005年

3 罗斌;李非;孙家邦;James Shapiro;;非肥胖型糖尿病小鼠的稳定嵌合体不能诱导胰岛移植的免疫耐受[A];中华医学会第十一届全国胰腺外科学术研讨会论文汇编[C];2006年

4 潘];郭晓玲;蔡圣鑫;董作仁;;G-CSF诱导异基因造血干细胞移植供者T细胞免疫耐受机制初探[A];第12届全国实验血液学会议论文摘要[C];2009年

5 何飞;袁利亚;陈国安;高琳淋;戎吉平;;造血干细胞移植诱导特异性免疫耐受[A];2005年华东六省一市血液病学学术会议暨浙江省血液病学学术年会论文汇编[C];2005年

6 郭坤元;吴秉毅;宋朝阳;陈永乐;张立成;王三斌;李玉华;吴岚晓;鹿全意;苏毅;;调节双信号向T细胞的传递诱导异基因骨髓移植免疫耐受[A];中华医学会第八次全国血液学学术会议论文汇编[C];2004年

7 冯洒然;黄一虹;;化学修饰与抗OX40L单抗双诱导移植物免疫耐受的实验研究[A];第12届全国实验血液学会议论文摘要[C];2009年

8 王贵强;;从慢性乙型肝炎发病机理谈治疗策略[A];第二届传染病诊治高峰论坛暨2009年浙江省感染病、肝病学术年会论文汇编[C];2009年

9 何焰;赵国胜;黄飞;周庆申;叶岳;;骨髓移植后血型开米拉的疑难配血[A];中国输血1999年年会暨纪念ABO血型发现100周年学术交流论文专辑[C];1999年

10 郭力;邵琳琳;刘新光;彭军;侯明;;血小板MHCⅠ类抗原分子介导CD61特异性细胞毒性T细胞免疫耐受的机制研究[A];第13届全国实验血液学会议论文摘要[C];2011年

相关重要报纸文章 前10条

1 李水根;骨髓移植+中药可治白血病[N];健康报;2006年

2 邹爱军;谁能挽救小凯丽的生命?[N];大众卫生报;2003年

3 张献怀;鸡尾酒骨髓移植法获成功[N];保健时报;2006年

4 通讯员 张献怀 雷永升;为一白血病患者骨髓移植成功[N];光明日报;2000年

5 丁运昭 马广一;救命骨髓一路绿灯[N];中国国门时报;2005年

6 赖自力 记者 张平 谢松;“半相合”骨髓移植成全母救子[N];南昌日报;2006年

7 梅杰;并非只有骨髓移植才能挽救白血病患儿[N];中国消费者报;2007年

8 瑞金医院 顾卫琼;骨髓移植内分泌共治糖尿病[N];上海中医药报;2009年

9 记者 李振辉,通讯员 黄治才、宁习源;干细胞移植南方医院破百例[N];广东科技报;2006年

10 衣晓峰邋靳万庆;急性白血病患儿别轻易移植骨髓[N];中国中医药报;2007年

相关博士学位论文 前10条

1 陈家松;非清髓性预处理诱导小鼠心脏移植免疫耐受的研究[D];福建医科大学;2008年

2 赵鸿;未成熟树突状细胞联合骨髓移植诱导大鼠异体肾移植免疫耐受的研究[D];复旦大学;2003年

3 李秀东;小鼠骨髓间充质干细胞诱导异基因肝移植模型大鼠免疫耐受的研究[D];吉林大学;2008年

4 齐战;1.嵌合体诱导与肺移植后闭塞性细支气管炎 2.海藻糖在气管低温保存中的保护作用和机制[D];山东大学;2005年

5 刘阳;自身免疫性糖尿病模型鼠免疫耐受机制异常的研究[D];吉林大学;2006年

6 祝哲诚;免疫抑制剂联合供体骨髓输注诱导大鼠肝移植免疫耐受的实验研究[D];复旦大学;2003年

7 王伟;诱导免疫耐受治疗心脏移植后排斥反应的实验研究[D];山东大学;2004年

8 刘丹;STZ诱导1型糖尿病模型免疫耐受机制异常的研究[D];吉林大学;2005年

9 刁畅;脾细胞联合抗CD154单抗的非清髓异基因骨髓移植诱导大鼠胰腺移植耐受[D];昆明医学院;2008年

10 徐东亮;核因子-κB寡聚脱氧核苷酸诱骗剂处理的供受者树突状细胞诱导免疫耐受的实验研究[D];复旦大学;2004年

相关硕士学位论文 前10条

1 杨华;混合嵌合体在异种心脏移植产生免疫耐受作用中的实验研究[D];苏州大学;2006年

2 王智;供体脾细胞输注诱导大鼠异体肢体移植耐受的实验研究[D];中南大学;2008年

3 毕延智;非清髓性骨髓移植诱导异基因小鼠免疫耐受的实验研究[D];东南大学;2005年

4 杨海燕;树突状细胞诱导半相合骨髓移植免疫耐受的实验研究[D];广西医科大学;2007年

5 马骁;共刺激分子在非清髓性造血干细胞移植免疫耐受中的作用[D];苏州大学;2003年

6 裴夫瑜;造血干细胞嵌合体在异种骨髓移植中的实验研究[D];中国人民解放军第一军医大学;2003年

7 唐湘凤;持久稳定混合嵌合体诱导免疫耐受在异种骨髓移植中作用的研究[D];第一军医大学;2004年

8 武小娟;异种造血嵌合体预防急性GVHD的作用机制[D];第一军医大学;2005年

9 朱勇;巨噬细胞在混合嵌合体诱导异种免疫耐受中作用的实验研究[D];苏州大学;2007年

10 杜璇;HLA-G在异基因造血干细胞移植中诱导免疫耐受的初步研究[D];南方医科大学;2009年



本文编号:2196275

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/shiyanyixue/2196275.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户a0bd5***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com