微小隐孢子虫Rhomboid蛋白抗原定位与免疫保护性研究
[Abstract]:Cryptosporidium (Cryptosporidium) is a parasitic protozoa, mainly parasitic in human and other mammalian gastrointestinal tract, poultry respiratory tract and other mucosal epithelial cells, causing Cryptosporidiosis. The disease is widely distributed, the infection rate of human and animal is high, and the harm is serious. The main clinical characteristic of the disease is severe watery diarrhea. At present, more than 200 drugs have been tested for the treatment of the disease, but there are no special drugs. Through the research of Cryptosporidium subunit vaccine and nucleic acid vaccine, some scholars think that the effective vaccine has certain effect on the prevention and cure of the disease. The key lies in the selection of effective vaccine candidate antigens. Rhomboid protein is an important protein which invades and adheres to host cells and is expected to be a candidate antigen for vaccine. In order to study the immune protection of Cryptosporidium microsporidium Rhomboid gene against Cryptosporidium minimus infection, the open reading frame of Rhomboid gene was predicted from genomic cDNA of Cryptosporidium minimus by bioinformatics technique, and primers were designed. The Rhomboid gene was amplified from the total RNA of Cryptosporidium minimus Changchun strain and cloned into prokaryotic expression vector to express the recombinant Rhomboid protein of Cryptosporidium minimus. At the same time, Rhomboid gene of Cryptosporidium minimus was cloned into eukaryotic expression vector by DNA recombination technique to construct nucleic acid vaccine. The recombinant Rhomboid protein of Cryptosporidium minimus and the nucleic acid vaccine were immunized to test the immune protection of mice. The results showed that the open reading frame of 1395bp was amplified and the homology of nucleotide and amino acid was 99.9% and 99.66% respectively by Blast comparison. The recombinant fusion protein of 51KDa was confirmed to be reactive by, Western blot assay, and the specific protein was detected by indirect immunofluorescence in Hela cells transfected with recombinant plasmid. The results of Western blot test showed that the antibody titer of recombinant Rhomboid protein increased with the increase of immunization times. Compared with the control group, the difference was very significant (P0.01). There was no significant difference in the number of CD4, CD8 T lymphocytes between the experimental group and the control group (P0.05). The mice in the test group had a protective effect against Cryptosporidium minimus infection, the oocyst excretion was obviously reduced, the excretion time was shortened by 2 days, and the worm abatement rate was 65.48. The results of immune protection test showed that the titer of specific antibody in the test group was significantly higher than that in the control group (P0.01), while the number of CD4 and CD8 T lymphocytes was not significantly different from that of the control group (P0.05). The oocyst excretion of the test group was obviously reduced, the excretion time was shortened by 2 days, and the worm reduction rate was 63.1%.
【学位授予单位】:吉林大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2009
【分类号】:R392
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 逯兆喜;吴亮;姜旭淦;沈玉娟;傅行礼;涂国华;李礼;陈盛霞;曹建平;;安氏隐孢子虫在HCT-8和AGS细胞中增殖效果的研究[J];中国人兽共患病学报;2011年06期
2 ;[J];;年期
3 ;[J];;年期
4 ;[J];;年期
5 ;[J];;年期
6 ;[J];;年期
7 ;[J];;年期
8 ;[J];;年期
9 ;[J];;年期
10 ;[J];;年期
相关会议论文 前10条
1 吴慧玲;范希玲;乐淑君;;Double Opposing-rhomboid Flaps for Closing Circular Defect on Special Position of Face[A];中华医学会整形外科学分会第十一次全国会议、中国人民解放军整形外科学专业委员会学术交流会、中国中西医结合学会医学美容专业委员会全国会议论文集[C];2011年
2 吴慧玲;范希玲;乐淑君;;Double Opposing-rhomboid Flaps for Closing Circular Defect on Special Position of Face[A];中华医学会整形外科学分会第十一次全国会议、中国人民解放军整形外科学专业委员会学术交流会、中国中西医结合学会医学美容专业委员会全国会议论文集[C];2011年
3 吴慧玲;王萃;乐淑君;王守界;;Double Opposing-rhomboid Flaps for Closing Circular Defect on Special Position of Face[A];2011年浙江省整形美容学术会议论文汇编[C];2011年
4 秦培兰;米荣升;黄燕;周鹏;张国恩;苏庆美;呼高伟;曹薇;陈兆国;;微小隐孢子虫CP15-P23-CP15/60基因的融合表达及其抗血清的制备[A];中国畜牧兽医学会兽医公共卫生学分会第三次学术研讨会论文集[C];2012年
5 李建华;张西臣;尹继刚;杨举;田宗成;;微小隐孢子虫病毒S-dsRNA基因在大肠 杆菌中的高效表达[A];中国动物学会第七届全国青年寄生虫学工作者学术讨论会论文摘要集[C];2002年
6 刁玉梅;宫鹏涛;李建华;苏利波;杨举;李赫;张国才;张西臣;;微小隐孢子虫病毒衣壳蛋白单克隆抗体的制备及初步应用[A];中国畜牧兽医学会家畜寄生虫学分会第六次代表大会暨第十一次学术研讨会论文集[C];2011年
7 尹继刚;张西臣;李建华;何宏轩;杨举;田宗成;万敏;王延钊;;抗微小隐孢子虫子孢子表膜单克隆抗体的制备及初步鉴定[A];中国动物学会第七届全国青年寄生虫学工作者学术讨论会论文摘要集[C];2002年
8 耿艺介;高世同;黄达娜;黄薇;张锦周;孙微;张仁利;;食品水源中微小隐孢子虫18S rRNA鉴定方法的研究[A];全国寄生虫学与热带医学学术研讨会论文集[C];2006年
9 李建华;张西臣;尹继刚;杨举;;微小隐孢子虫病毒L-dsRNA基因原核表达载体的构建及表达[A];中国动物学会原生动物学分会第十二次学术讨论会论文摘要汇编[C];2003年
10 薛霞;张西臣;李建华;尹继刚;杨举;阎广谋;;微小隐孢子虫Cpgp40/15基因的真核表达及其免疫保护性研究[A];中国动物学会原生动物学分会第十二次学术讨论会论文摘要汇编[C];2003年
相关重要报纸文章 前3条
1 常正山;鼠类是传播多种人兽共患寄生虫病的罪魁祸首[N];大众科技报;2008年
2 黄才刚;隐孢子虫检测技术革新[N];健康报;2002年
3 郑剑宁/编译;压舱水——一个潜在的公共卫生问题[N];中国国门时报(中国出入境检验疫报);2002年
相关博士学位论文 前5条
1 肖丹;微小隐孢子虫粘附相关蛋白基因的筛选及免疫保护性研究[D];吉林大学;2010年
2 姚龙泉;微小隐孢子虫粘附相关蛋白基因的筛选、表达及免疫保护性研究[D];吉林大学;2006年
3 郑君;柔嫩艾美耳球虫Rhomboid蛋白与微线蛋白相互作用的研究[D];吉林大学;2011年
4 王秋悦;柔嫩艾美耳球虫rhomboid基因重组卡介苗的构建及其免疫保护性研究[D];吉林大学;2009年
5 陈兆国;上海地区动物隐孢子虫病分子流行病学调查及微小隐孢子虫miRNA的初步鉴定[D];中国农业科学院;2011年
相关硕士学位论文 前10条
1 吴玲;微小隐孢子虫Rhomboid蛋白抗原定位与免疫保护性研究[D];吉林大学;2009年
2 殷驰;微小隐孢子虫粘附相关蛋白基因的筛选及免疫特性研究[D];吉林大学;2010年
3 牛姝婉;微小隐孢子虫转运蛋白免疫原性及微小隐孢子虫和鸵鸟源小鼠隐孢子虫寄生部位初步研究[D];河南农业大学;2011年
4 秦培兰;微小隐孢子虫CP15-P23-CP15/60三价亚单位疫苗和核酸疫苗的制备及其免疫保护性研究[D];中国农业科学院;2012年
5 刁玉梅;微小隐孢子虫病毒衣壳蛋白单克隆抗体的制备及初步应用[D];吉林大学;2011年
6 范大为;乳酸菌和大肠杆菌对微小隐孢子虫感染BALB/c鼠的影响[D];吉林大学;2012年
7 薛霞;微小隐孢子虫Cpgp40/15基因的真核表达及其免疫保护性研究[D];中国人民解放军军需大学;2003年
8 石泉;在干酪乳杆菌中微小隐孢子虫p23基因的表达及其应用[D];内蒙古农业大学;2010年
9 郭晓雯;微小隐孢子虫CP405/CP585双价核酸疫苗的研究[D];吉林大学;2011年
10 刘慧;微小隐孢子虫端粒重复序列鉴定与端粒酶活性检测[D];吉林大学;2007年
,本文编号:2293191
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/shiyanyixue/2293191.html