CIB1在VEGF诱导的MSCs成血管分化过程中的作用研究
发布时间:2017-04-27 06:07
本文关键词:CIB1在VEGF诱导的MSCs成血管分化过程中的作用研究,由笔耕文化传播整理发布。
【摘要】:目的: 1.人脐带间充质干细胞的分离培养和鉴定。 2. CIB1在VEGF诱导的MSCs成血管分化过程中的作用研究。 方法: 1.取剖宫产足月新生儿脐带,在无菌超净工作台中采用组织贴壁法分离提取原代hUC-MSCs用0.25%胰蛋白酶消化、传代,利用流式细胞术对hUC-MSCs的免疫表型和周期进行检测,取第3-5代细胞进行实验。同时进行成脂肪细胞的诱导分化。 2.本实验以hUC-MSCs为对象,应用构建好的CIB1慢病毒载体对其进行转染,实验分四组,正常hUC-MSCs诱导组;CIB1慢病毒载体转染hUC-MSCs诱导组,此组又分为NC感染诱导组、pGV-siCIB1感染诱导组;空白对照组,,即正常hUC-MSCs空白对照。首先,进行合理的实验设计分组确定最适的慢病毒感染复数MOI。采用MTT的实验方法观察CIB1慢病毒载体转染hUC-MSCs后细胞的增殖情况,流式细胞仪对各组实验细胞的生长周期进行获取。应用基质胶上三维血管形成实验和Dil-ac-LDL的吸收实验使各组细胞的成血管能力得以检测,最后应用细胞爬片的免疫荧光技术对血管内皮细胞的标志物CDH5、CD34和FLK-1的基因表达进行鉴定。 结果: 1.成功分离提取hUC-MSCs,流式细胞仪测定发现其几乎全部都处于分化前阶段,可以很好分化生长。细胞表面标记测定发现hUC-MSCs高表达CD29,阳性率达92.62㳠;高表达CD44和CD105,阳性率分别为88.83㳠和91.87㳠;高表达CD130,92.45㳠; CD45低表达,1.46㳠,低表达HLA-DR,2.06㳠。对其多想分化能力进行测定,发现其可以分化为脂肪细胞,油红O染色阳性,并表达该细胞特定的细胞标志LPL和Leptin。 2.成功地对CIB1抑制表达的慢病毒载体感染hUC-MSCs的MOI进行测定,最适MOI为20。完成感染以后细胞周期以及细胞生存活性的检测,发现感染后G2/M期pGV-siCIB1感染组细胞所占比例较NC感染组明显升高。说明RNAi下调CIB1表达使细胞阻滞在G2/M期。MTT结果显示,pGV-siCIB1感染组细胞的生存活性明显下降,NC感染组变化不明显。进行成血管内皮细胞的条件诱导21天发现,随着时间延长其类似于血管内皮细胞样的管腔结构明显增加,到21天时几乎布满显微镜下整个视野,在基质胶上同样也出现三维的管腔结构,对乙酰标记的人低密度脂蛋白的吸收以较诱导前大幅度增大,同时血管内皮细胞的表面标记CD34、CDH5和FLK-1与诱导前的阴性结果不一样,出现阳性表达。不但形态与血管内皮细胞一样,其细胞活性以及细胞表面表达的标记都与血管内皮细胞一致。而CIB1抑制表达组则不会发生上述变化,既没有管腔结构的出现,也不表达小血管内皮细胞标记CD34,血管内皮细胞标记CDH5和FLK-1。对Dil-ac-LDL的吸收也没有增加。空载体组诱导后实验结果过与正常hUC-MSCs诱导后的结果几乎一致,证明了CIB1在hUC-MSCs在分化为血管内皮细胞的过程中起了重要的作用。 结论: 1.成功提取分离人脐带间充质干细胞并对其表型进行鉴定分析,为后期实验做准备。 2.CIB1在VEGF诱导MSCs成血管分化中分子通道上起着重要的作用。
【关键词】:人脐带间充质干细胞 血管内皮细胞生长因子 CIB1 血管分化
【学位授予单位】:青海大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2014
【分类号】:R329.2
【目录】:
- 摘要4-6
- Abstract6-10
- 缩略语表10-11
- 前言11-13
- 第一章 HUC MSCS 的分离、培养、鉴定和诱导分化研究13-23
- 1.1 实验材料与仪器13-14
- 1.1.2 实验材料和试剂13
- 1.1.3 主要仪器13
- 1.1.4 常用试剂的配制13-14
- 1.2 实验方法14-18
- 1.2.1 hUC-MSCs 原代细胞的分离提取14-15
- 1.2.2 流式细胞仪对 hUC-MSCs 的表型检测15
- 1.2.3 流式细胞仪对 hUC-MSCs 的周期检测15
- 1.2.4 hUC-MSCs 成脂肪细胞诱导分化15-18
- 1.3 统计学分析18
- 1.4 结果18-20
- 1.4.1 hUC MSCs 原代细胞的提取培养及形态观察18
- 1.4.2 流式细胞仪对 hUC-MSCs 的表型检测18-19
- 1.4.3 流式细胞仪对 hUC-MSCs 的周期检测19
- 1.4.4 hUC-MSCs 成脂肪细胞诱导分化19-20
- 1.5 讨论20-22
- 1.6 结论22-23
- 第二章 CIB1 在 VEGF 诱导的 HUC MSCS 成血管分化过程中的作用研究23-40
- 2.1 实验材料与仪器23-24
- 2.1.1 主要材料与试剂23
- 2.1.2 主要仪器23-24
- 2.1.3 实验常用实际的配制24
- 2.2 实验方法24-30
- 2.2.1 pGV-siCIB1 感染人脐带间充质干细胞最适感染复数(MOI)的确定24-25
- 2.2.2 pGV-siCIB1 体外感染 hUC-MSCs25
- 2.2.3 pGV-siCIB1 体外感染 hUC-MSCs 后 CIB1 沉默效应在蛋白水平的体现25-27
- 2.2.4 流式法测 pGV-siCIB1 体外感染 hUC-MSCs 后的细胞周期27-28
- 2.2.6 VEGF 和 bFGF 条件培养基的诱导28-29
- 2.2.7 Matrigel 基质胶上血管形成实验29
- 2.2.8 Dil-Ac-LDL 的吸收实验29
- 2.2.9 细胞爬片免疫荧光实验29-30
- 2.3 统计学分析30
- 2.4 结果30-37
- 2.4.1 pGV-siCIB1 体外感染 hUC-MSCs 最适 MOI 的确定30-31
- 2.4.2 pGV-siCIB1 体外感染 hUC-MSCs 后 CIB1 沉默效应在蛋白水平的体现31
- 2.4.3 流式法测 pGV-siCIB1 体外感染 hUC-MSCs 后的细胞周期31-32
- 2.4.4 MTT 法流式法测 pGV-siCIB1 体外感染 hUC-MSCs 后的细胞活性32-33
- 2.4.5 VEGF 和 bFGF 条件培养基的诱导33-34
- 2.4.6 Matrigel 基质胶上血管形成实验34
- 2.4.7 Dil-Ac-LDL 的吸收实验34-35
- 2.4.8 细胞爬片免疫荧光实验35-37
- 2.5 讨论37-39
- 2.6 结论39-40
- 参考文献40-44
- 致谢44-45
- 附录45-52
- 综述52-61
- 参考文献58-61
- 作者简历与攻读学位期间取得的研究成果61
【参考文献】
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