当前位置:主页 > 医学论文 > 心血管论文 >

Kallistatin调节动脉粥样硬化炎症及构建靶向巨噬细胞黑色素纳米探针的研究

发布时间:2020-11-09 05:42
   第一部分Kallistatin抗动脉粥样硬化炎症及机制研究目的:探讨组织激肽释放酶结合蛋白(kallistatin,KS)抑制动脉粥样硬化炎症的作用及其可能的机制。方法:利用颈总动脉分支结扎(PLCA)+高脂饮食的方法建立ApoE~(-/-)小鼠颈动脉粥样硬化模型。分别用腺病毒介导人KS cDNA(Ad.HKS)和空载腺病毒(Ad.Null)转染小鼠,术后14天和28天经核磁共振成像(MRI)检测动脉粥样硬化斑块进展,利用免疫组化、实时定量PCR检测斑块内炎症巨噬细胞M1/M2分型。进一步利用人KS蛋白(HKS)干预RAW264.7巨噬细胞,Real-time PCR检测M1/M2分型;使用Krüppel样因子4(KLF4)小干扰RNA(siRNA)阻断其信号通路。Western blot、流式细胞分析检测KLF4对HKS调节M1/M2分型的作用。结果:Ad.HKS转染后小鼠体内可高表达人KS蛋白。MRI及免疫组化显示KS抑制动脉粥样硬化斑块的形成且抑制炎症细胞聚集。免疫荧光及PCR显示M1巨噬细胞标志物一氧化氮合酶(iNOS)和单核细胞趋化蛋白(MCP-1)表达下降,M2巨噬细胞标志物精氨酸酶1(Arg1)和白细胞介素10(IL-10)表达升高。RAW264.7巨噬细胞的研究显示,KLF4 siRNA可阻断KS对M1/M2巨噬细胞分化调节作用。结论:KS可通过KLF4调节M1/M2巨噬细胞的分化,抑制炎症反应从而抑制动脉粥样硬化斑块的形成。第二部分黑色素纳米显像剂89Zr-RGD-MNP的构建及对动脉粥样硬化的活体成像研究目的:设计合成一种以黑色素纳米颗粒为载体,可靶向至动脉粥样硬化αⅴβ3的正电子发射计算机断层显像(PET)显像剂89Zr-RGD-MNP,并应用于动脉粥样硬化活体成像检测其效果。方法:以超小型水溶性黑色素纳米颗粒(MNP)为载体,共轭连接环状c(RGDf C)蛋白,鳌合放射性核素89Zr制备靶向动脉粥样硬化巨噬细胞受体αⅴβ3的黑色素显像剂。通过透射电镜(TEM)、动态光散射(DLS)检测其基本形态、结构和平均水合粒径,MTT法检测其细胞毒性,Fontana-Masson银染色检测其对巨噬细胞的靶向性。动脉分支结扎法建立动脉粥样硬化小鼠模型,尾静脉注射显像剂,不同时间点PET成像检测其成像效果,成像后利用γ放射性检测仪检测显像剂在各组织分布情况。结果:制备出黑色素纳米探针89Zr-RGD-MNP。TEM检测显示其形态规则、DLS平均水合粒径10 nm且分布均匀。MTT法显示其对细胞活性无明显影响,Fotana-Masson银染色显示对巨噬细胞靶向性高。PET成像显示显像剂可在动脉粥样硬化部位高度聚集,并可被特异性阻断剂阻断。体内放射性分布显示动脉粥样硬化血管放射性(5.29%±0.78%)明显高于空白对照血管(2.11%±1.55%)。结论:成功制备出性能稳定,粒径较小、分散性好、生物安全性高的黑色素显像剂。能够成功用于动脉粥样硬化的活体PET显像,有望成为一种新型的检测动脉粥样硬化的显像剂。
【学位单位】:东南大学
【学位级别】:博士
【学位年份】:2018
【中图分类】:R543.5
【部分图文】:

动脉粥样硬化模型,颈动脉,分支,异氟烷


图 1.1 颈动脉分支结扎建立动脉粥样硬化模型的方法。6)术后清理手术创面,缝合皮肤。待动物苏醒后置于 SPF 级动物房内,20~25℃,灯光开闭各 12 h,继续予高脂饮食。2.2 7.0 T 核磁共振成像采用德国 Bruker7.0TMicro-MR 成像系统,在小鼠术后 14d 及 28d 进行核磁共振扫描。1)用 3-4%浓度异氟烷诱导麻醉小鼠,仰卧位放置于专用扫描床内,异氟烷以 1-2% 浓度 0.3-0.5L/min 流量持续麻醉,呼吸监测调整呼吸频率在 40 次/分左右以确保像图像质量。2)MR 定位像扫描,使小鼠颈部置于磁场中心,为确保不同扫描时间点 MR图像可以匹配,扫描时以主动脉弓为起点。采用 T2 及 PD 加权成像序列,具体参数如下:PD-T2:TR 1206.9 ms, TE 12.8/34.2 ms, FOV 2.5 × 2.5 cm, FA 180°,矩阵

序列,转录水平,管腔狭窄,斑块


图 1.3 实时定量 PCR 检测 28 天时 ApoA1mRNA 的转录水平。A. 血管组织,B. 肝脏组织。*P<0.05,Ad. HKS vsAd. Null。3.3 HKS 抑制动脉粥样硬化斑块进展动物分别在建模后14天、28天行MRI检测。MRI采用德国Bruker 7.0 TMicro-MR成像系统,T2-PD双回波序列。如图1.4所示,正常对照侧血管在T2WI上呈低信号,在PDWI上呈等信号,术侧血管在T2WI和PDWI信号均增强。在14天时,可见动脉内膜增厚,管腔狭窄;28天时,管腔狭窄可见明显加重。Ad. HKS组管腔直径(14天 0.44 ± 0.04 mm,28天 0.34 ± 0.07 mm)和斑块体积(14天0.35 ±0.06 mm3,28天0.59 ±0.15 mm3)明显小于Ad. Null组(血管直径14天 0.44 ± 0.04 mm,28天 0.34 ± 0.07 mm 和斑块体积 14天0.35 ±0.06mm3,28天0.59 ±0.15 mm3)。

MRI图像,进展情况,动脉粥样硬化,管壁厚度


52图 1.4 Ad. Null 和 Ad. HKS 组术后 14 天及 28 天的颈部血管动脉粥样硬化进展情况的 MRI图像。MSME-PD 为质子加权像,MSME-T2 为 T2 加权像。A. 术后 14 天显示,两组图像上均有左侧(手术侧)血管管腔 PD 及 T2 信号增高,管壁增厚,较对侧狭窄,但 Ad. HKS 组管壁厚度明显小于 Ad. Null 组。B. 术后 28 天显示,两组左侧血管管壁厚度均增加, Ad.HKS 组管壁厚度仍然小于 Ad.Null 组。 C. 两组左侧血管管腔直径的比较。D. 两组斑块体积的比较。mean 士 SD *P < 0.05,Ad. HKS vsAd. Null。3.4 HKS 抑制颈动脉斑块炎症血管HE染色显示管腔狭窄与MRI结果相符合。CD68染色显示Ad. HKS组14天时CD68阳性细胞占5.88 ± 3.20%,28天时占16.89 ±9.12%;Ad. Null组14天时CD68阳性细胞占22.76 ±5.72%,28天时占32.30 ±8.11% (n = 10, P < 0.05,图1.5)。结果表明Ad. HKS组的斑块内巨噬细胞明显少于Ad. Nul组。肝脏CD68染色显示Ad. HKS组14天时CD68阳性细胞占2.79 ±1.12%斑块面积,28天时占4.32 ±1.32%;Ad. Null组14天时CD68阳性细胞占8.23 ±3.72%,28
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 廖成水;毛福超;程相朝;;巨噬细胞极化在微生物感染中的作用研究进展[J];中国预防兽医学报;2019年03期

2 邢士刚;;巨噬细胞在慢性阻塞性肺疾病发病机制中的作用研究[J];中国实用医药;2019年12期

3 付威;姜英;王婷玉;张赫;董佳琦;万朋;;巨噬细胞极化与肿瘤的研究进展[J];吉林医药学院学报;2019年02期

4 巢汝;黄靓;屈顺林;张弛;;巨噬细胞能量代谢与动脉粥样硬化[J];生命的化学;2018年03期

5 崔凡;穰真;王有为;杨戈;;AIDS患者巨噬细胞对白念珠菌的吞噬和灭活功能研究[J];中国麻风皮肤病杂志;2017年04期

6 孟董超;王东;宋娟;卢彦珍;;巨噬细胞极化在冠状动脉粥样硬化发生发展中的作用研究进展[J];长治医学院学报;2017年02期

7 李雪岩;杨玉玉;陈君;;中药抗巨噬细胞泡沫化的研究进展[J];药学与临床研究;2017年05期

8 袁锋;尚茹茹;张锦;温婷;李爱萍;刘晓红;;巨噬细胞极化与动脉粥样硬化[J];中华临床医师杂志(电子版);2015年22期

9 高双英;吴静;杨贵丽;;结肠癌肿瘤相关巨噬细胞的浸润和MMP-2的表达、血管生成关系的研究[J];中国免疫学杂志;2016年03期

10 龚立博;索艳荣;王学岭;郭茂娟;;基于巨噬细胞亚型分化探讨中医药防治动脉粥样硬化的研究进展?[J];中国中医基础医学杂志;2016年05期


相关博士学位论文 前10条

1 李华;结核分枝杆菌诱导的人巨噬细胞蛋白质组研究及快生菌构建探索[D];华中农业大学;2017年

2 范婷婷;TIPE2调控调节性T细胞胸腺外迁及M2巨噬细胞极化的分子机制研究[D];中国科学院大学(中国科学院深圳先进技术研究院);2018年

3 成雪;酪蛋白糖肽抑制巨噬细胞炎症反应的分子机制研究[D];中国农业大学;2015年

4 邵柏棕;巨噬细胞β-arrestin-1在动脉粥样硬化和多发性硬化中的作用及机制研究[D];中国人民解放军海军军医大学;2018年

5 施翔翔;巨噬细胞CCL20和IL-17的调控机制及其与冠心病的关系研究[D];南方医科大学;2018年

6 朱启金;高糖刺激巨噬细胞源外泌体对肾小球系膜细胞的作用及机制研究[D];安徽医科大学;2018年

7 吕丹;缓释Ⅵ型胶原诱导巨噬细胞极化促进大鼠坐骨神经缺损再生的应用研究[D];天津医科大学;2017年

8 谭炳合;Lgr4介导的巨噬细胞极化在肿瘤发生发展中的作用及机制研究[D];华东师范大学;2016年

9 于瀚卿;肝癌细胞对巨噬细胞的内质网应激信号传递及内质网应激巨噬细胞外泌体对肝癌细胞凋亡的影响和机制[D];安徽医科大学;2018年

10 岳瑞超;MAP诱导内质网应激介导的巨噬细胞凋亡及其对小鼠感染M.bovis的影响[D];中国农业大学;2019年


相关硕士学位论文 前10条

1 高梦娜;β型叶酸受体阳性巨噬细胞作为肝纤维化分期诊疗标志物及SPECT成像的应用[D];厦门大学;2017年

2 丁丁;人CD163+巨噬细胞通过IL-17A调节动脉粥样硬化的研究[D];厦门大学;2017年

3 张金夏;巨噬细胞ATP6V0d2在肥胖病程发展中的作用[D];华中科技大学;2018年

4 胡丹丽;激肽释放酶-1过表达通过选择性调节巨噬细胞的极化延缓心脏衰老[D];华中科技大学;2018年

5 吴晓玲;TFF2调控脂多糖诱导的巨噬细胞活化并拮抗炎症的功能与机制[D];厦门大学;2017年

6 王义乾;骨髓诱导分化巨噬细胞的制备及组蛋白甲基化修饰对巨噬细胞释放IL-6和TNF-α的影响[D];南方医科大学;2015年

7 刘英光;GPR120受体在巨噬细胞功能调节中的作用[D];遵义医学院;2018年

8 高弘斐;外周血间充质干细胞对巨噬细胞和Th17/Treg细胞平衡的体外调节研究[D];遵义医学院;2018年

9 尹学红;脂肪间充质干细胞促进M1型巨噬细胞向M2型巨噬细胞转化[D];内蒙古科技大学包头医学院;2016年

10 李依蔓;位于内置网上的蛋白Herpud1调节IL-4诱导的巨噬细胞极化和迁移[D];重庆医科大学;2018年



本文编号:2875977

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/xxg/2875977.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户92344***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com