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应用CRISPR/Cas9技术在植物乳杆菌中进行基因编辑的研究

发布时间:2020-12-10 14:10
  乳酸菌是一类与人的身体健康密切相连的微生物。随着完成全基因组测序的乳酸菌种类越来越多,功能性基因的研究也越来越重要。CRISPR/Cas9基因编辑技术由于实验简单、操作容易、节省时间等优势,可以精确、高效地对基因组进行敲除或者修饰,已经在不同物种中迅速发展起来并得到广泛应用,但是在乳酸菌中的研究报道不多。葡糖胺-6-磷酸合成酶(Glucosamine-6-phosphate synthase,GlmS)是氨基已糖代谢途径(HBP)的催化酶,终产物是N-乙酰-D-葡糖胺(GlcNAc)和氨基葡萄糖(GlcN)。本实验室前期研究表明glmS1基因是植物乳杆菌WCFS1编码GlmS的重要基因,glmS1基因缺陷菌在不添加氨基葡糖的培养基中无法生长。本研究将选用glmS1基因作为CRISPR/Cas9基因编辑技术的目的基因,构建并验证植物乳杆菌WCFS1基因编辑系统,为进一步开展更多乳酸菌的功能基因的编辑奠定基础。本研究首先分别成功构建了含Cas9、recT基因的pMT019和含tracrRNA的ptracrRNA两种质粒。随后通过对启动子结构进行优化,确定了含诱导型启动子PSPPQ的pMT0... 

【文章来源】:南京师范大学江苏省 211工程院校

【文章页数】:81 页

【学位级别】:硕士

【部分图文】:

应用CRISPR/Cas9技术在植物乳杆菌中进行基因编辑的研究


图1.2三种CRISPR-Cas系统的Cas蛋白??-

序列,外源,细菌,表达阶段


般长度为几个碱基,与原间隔序列紧邻。一般情况下PAM序列为NGG。在适应阶段,??细菌对首次入侵的外源DNA进行识别,寻找潜在PAM序列以确定原间隔序列,其??次将其整合到CRISPR的两个相邻的重复序列之间,形成间隔序列(图1.3)。因此,??可以通过间隔序列的位置来判断细菌整合外源基因的时间先后[79】。值得注意的是,在??适应阶段Casl和Cas2两种核酸酶都是不可缺少的,有研宄表明,将细菌Cos7和??Cm2两个基因中的任意一个敲除后细菌都无法获得间隔序列@]。??在表达阶段,当己被宿主获得间隔序列的外源DNA再次进入宿主菌时,CRISPR??的表达被诱导上调…1,从而激发宿主菌的CRISPR/Cas9系统发挥免疫作用[82],其中??间隔序列和重复序列被转录成前体RNA?(Pre-crRNA),最后Pre-crRNA被剪切加工??形成成熟的crRNA,成熟的crRNA、tracrRNA与Cas9蛋白形成核糖核蛋白复合物[83]??(图?1.4)。??在干扰阶段,表达阶段形成的核糖核蛋白复合物识别外源DNA并与之结合,对??外源DNA的特定位点进行切割

序列,阶段,靶向,双链


mm?剪切??图1.4CRISPR/Cas9的表达阶段??Figl.4?Expression?of?the?CRISPR/Cas9?system?in?bacteria??第三阶段:靶向干抗?〇??扫描耙点g歹!i?(?3?tracrRNA??^mm?Cas9?1?[???rn^m???crRNA???--■■■-■-?-???????双链外源DNA?PAM?Protospacer??j?靶点序列配对??tracrRNA--h.??f?\?Cas9???pam/?、?^??氺????y"?一^?木??外源DNA双链被剪开??crRNA??图1.5?CRISPR/Cas9的干扰阶段??Figl.5?Interference?of?the?CRISPR7Cas9?system?in?bacteria??1.3.5?CRISPR/Cas9系统研究进展??2012年,Jiang?W等人_将CR1SPR/Cas9系统中crRNA和tracrRNA两个非编??码RNA改造成一个RNA,即单导向RNA?(Single-guide?RNA,?sgRNA),它能够指导??Cas9蛋白对特定的DNA序列进行靶向断裂,为CRISPR/Ca

【参考文献】:
期刊论文
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博士论文
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[2]利用CRISPR/Cas9进行基因编辑[D]. 沈彬.南京大学 2014
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硕士论文
[1]山羊CRISPR/Cas9基因编辑系统优化的研究[D]. 黄玉.西北农林科技大学 2018
[2]寡核苷酸重组工程和CRISPR-Cas9联合运用于大肠杆菌基因组编辑[D]. 孙尖.南京师范大学 2018
[3]小球藻CRISPR/Cas9基因编辑流程的建立和优化[D]. 潘文欢.华南理工大学 2016
[4]广西巴马长寿地区不同年龄人群肠道菌群分析[D]. 郭飞翔.扬州大学 2015
[5]大肠杆菌pheA和tyrA基因敲除菌的构建[D]. 蒋婕.吉林大学 2013



本文编号:2908826

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