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新疆哈萨克羊TLR8基因突变与绵羊肺腺瘤病毒易感性关系研究

发布时间:2017-08-08 16:41

  本文关键词:新疆哈萨克羊TLR8基因突变与绵羊肺腺瘤病毒易感性关系研究


  更多相关文章: TLR8基因 绵羊肺腺瘤病 多态性 易感性


【摘要】:Toll样受体(TLRs)是一种模式识别受体(pattern recognize receptor,PRR),由14个TLR成员组合而成,在先天性以及适应性免疫中扮演着重要的角色。现今已知TLR2,TLR3,TLR4和TLR7,TLR8,TLR9可引发抗病毒防御机制。绵羊肺腺瘤病(ovine pulmonary adenomatosis,OPA)是由绵羊肺腺瘤反转录病毒(Jaagsiekte sheep retrovirus,JSRV)引起的一种慢性、接触传染性肺脏肿瘤性疾病,严重影响着全世界养羊业的发展。目前,Toll样受体和其它免疫应答基因的多态性已经被发现与疾病抵抗力和易感性紧密相关。本研究使用PCR-SSCP技术对新疆哈萨克羊TLR8基因多态性进行了分析,选取3只突变以及3只未突变的哈萨克羊进行绵羊肺腺瘤病毒感染实验,并且对其早期感染的炎性细胞及免疫细胞因子的水平进行了检测,在攻毒5个月后进行病理剖检观察和组织学观察,进一步探讨哈萨克羊TLR8基因突变与绵羊肺腺瘤病毒的易感性关系,为绵羊抗病选育提供理论支持。1.新疆哈萨克羊TLR8基因多态性分析采用PCR-SSCP方法对其突变进行了检测。发现P1、P5、P6三对引物所扩增的片段存在多态性,检测到4个突变位点,分别为G170A、G1307A、T1604C和A1628G,其中,G170A和G1307A为同义突变,T1604C和A1628G为错义突变,对应的氨基酸改变分别是Leu496Pro和Gln504Arg。对基因型频率和等位基因频率进行了计算,Hardy-Weinberg平衡检测结果为非平衡状态。2.哈萨克羊TLR8基因SNP突变对绵羊肺腺瘤病毒侵染后细胞因子影响利用患病羊肺脏组织制备绵羊肺腺瘤病毒悬液,进行绵羊肺腺瘤病感染实验,然后检测血液各项指标的变化,并用ELISA方法检测其感染早期炎性因子的水平。结果表明,制备病毒悬液经电镜观察,病毒直径约为80-100nm之间,绵羊肺腺瘤病毒接种后,每隔3小时测定的呼吸、脉搏等生理指标均未出现异常。血常规检测结果显示突变组与对照组绵羊的白细胞、淋巴细胞等炎性细胞都处于升高趋势,但组间差异并不显著。ELISA结果显示,突变组血清中γ-IFN、IL1-β及TNF-α水平均低于对照组,且组间差异显著。而突变组中TLR8和My D88的含量高于对照组,但组间差异不显著。本实验选取突变羊实施感染实验,通过对感染早期几个细胞因子水平的检测,发现TLR8基因突变的绵羊在接种病毒后炎性细胞因子水平低于未突变组,推测可能是由于TLR8基因SNP突变阻碍了机体免疫应答,以致于抗病毒、抗感染免疫受阻,从而导致病毒侵染机体后免疫调节减弱。3.人工感染绵羊肺腺瘤病后的病理学观察在感染绵羊肺腺瘤病毒5个月后,将突变组和对照组的实验羊解剖,观察其肺脏的病变情况,取肺病变组织制成切片在光学显微镜下进行病理学观察。对比攻毒后突变组和对照组的病理损伤程度。结果发现突变组绵羊的肺脏质地变实,有许多灰白色结节,形似肿瘤灶,并出现增生融合的肿块。而对照组绵羊的肺叶中仅出现了少量疑似肿瘤灶的结节,肺脏损伤程度低于突变组的绵羊。病理切片观察发现,突变组绵羊肺脏组织有大量形状不规则的腺瘤病灶,而对照组仅有少量支气管腔内出现腺瘤灶,多数肺泡仍保持原有的结构。综上所述,TLR8突变组的绵羊感染绵羊肺腺瘤病毒的病理损伤程度高于对照组绵羊,哈萨克羊TLR8基因突变对绵羊肺腺瘤病毒的易感性更强。
【关键词】:TLR8基因 绵羊肺腺瘤病 多态性 易感性
【学位授予单位】:石河子大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:S858.26
【目录】:
  • 中文摘要5-7
  • Abstract7-11
  • 第一章 文献综述11-19
  • 1.绵羊肺腺瘤病11-14
  • 1.1. 绵羊肺腺瘤病概述11
  • 1.2 绵羊肺腺瘤病的发现11
  • 1.3 绵羊肺腺瘤病的流行病学11-12
  • 1.3.1 易感动物12
  • 1.3.2 传染源及传播途径12
  • 1.4 绵羊肺腺瘤病的临床症状及病理变化12-13
  • 1.4.1 临床症状12-13
  • 1.4.2 病理组织学观察13
  • 1.5 绵羊肺腺瘤的诊断13-14
  • 1.5.1 病原鉴定14
  • 1.6 综合防治14
  • 2. Toll样受体14-17
  • 2.1. Toll样受体家族概述14-15
  • 2.2. Toll样受体分子的结构特点15
  • 2.3. Toll样受体的信号转导途径15-16
  • 2.4. Toll样受体的配体16-17
  • 2.5. TLR8的免疫学功能17
  • 3. PCR-SSCP技术17-19
  • 3.1. PCR-SSCP技术概述17
  • 3.2.PCR-SSCP技术的发展及应用前景17-18
  • 3.3 基因突变的研究意义18-19
  • 第二章 实验部分19-42
  • 实验一 新疆哈萨克羊TLR8基因多态性分析19-28
  • 1.材料与方法20-24
  • 1.1 试验材料20-21
  • 1.1.1 动物样品来源20
  • 1.1.2 主要试剂20
  • 1.1.3 试剂的配置20
  • 1.1.4 仪器20-21
  • 1.2 试验方法21-24
  • 1.2.1 引物设计21
  • 1.2.2 引物稀释21
  • 1.2.3 提取基因组DNA21-22
  • 1.2.4 PCR扩增22
  • 1.2.5 PCR-SSCP分析22-23
  • 1.2.6 PCR产物回收23
  • 1.2.7 目的片段与载体的连接转化23
  • 1.2.8 菌落PCR检测23-24
  • 1.2.9 质粒的提取24
  • 1.2.10 PCR产物测序24
  • 1.3 数据统计分析24
  • 2. 结果与分析24-26
  • 2.1 PCR扩增结果24-25
  • 2.2 PCR-SSCP分型结果25
  • 2.3 测序结果25-26
  • 2.4 哈萨克羊TLR8基因的基因型频率、基因频率分析26
  • 3. 讨论26-28
  • 实验二 哈萨克羊TLR8基因SNP突变对绵羊肺腺瘤病毒侵染后细胞因子影响28-35
  • 1. 材料与方法29-30
  • 1.1 实验材料29
  • 1.1.1 实验材料29
  • 1.1.2 主要试剂29
  • 1.1.3 仪器29
  • 1.2 试验方法29-30
  • 1.2.1 绵羊肺腺瘤病毒的制备29
  • 1.2.2 攻毒实验29-30
  • 1.2.3 血常规测定方法30
  • 1.2.4 细胞因子的检测30
  • 2. 结果30-34
  • 2.1 病毒悬液的电镜观察30-31
  • 2.2 血常规检测结果31-33
  • 2.3 细胞因子检测结果33-34
  • 3. 讨论34-35
  • 实验三 人工感染绵羊肺腺瘤病毒的病理学观察35-42
  • 1.材料与方法36-37
  • 1.1 实验材料36
  • 1.1.1 实验材料36
  • 1.1.2 实验仪器与试剂36
  • 1.2 实验方法36-37
  • 1.2.1 剖检观察36
  • 1.2.2 组织病理切片观察36-37
  • 2.结果37-40
  • 2.1 剖检观察37-38
  • 2.2 病理组织学观察38-40
  • 3.讨论40-42
  • 结论42-43
  • 参考文献43-51
  • 致谢51-52
  • 导师评阅表52

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