以Candin为佐剂的人乳头瘤病毒多肽治疗疫苗诱导小鼠的体液免疫应答

发布时间：2020-11-06 15:57

　　 目的研究以Candin为佐剂的人乳头瘤病毒(Human papillomavirus,HPV)多肽治疗疫苗诱导小鼠产生的体液免疫应答。方法分别采用PBS(对照)、佐剂Candin(150μL/只)、HPV16 E7多肽[3个E7多肽片段,50μg/(段·只)]和包含佐剂Candin与HPV16 E7多肽的疫苗对C57BL/6小鼠进行免疫接种实验,在第21天和第42天各加强1次免疫,剂量同第1次免疫。第3次免疫后2周,颈脱位处死小鼠,取血清。以ELISA法检测血清总IgG、IgG1和IgG2a抗体浓度。结果经多肽(P=0.001,P0.001)和疫苗(P=0.001,P=0.008)免疫的小鼠总IgG抗体、IgG1抗体水平均较对照组高,差异有统计学意义。与对照组相比,疫苗(P=0.008)可明显提高小鼠血清中IgG2a抗体水平。结论包含佐剂Candin及HPV16 E7多肽的疫苗能诱导小鼠产生明显的体液免疫应答。
【部分图文】：

浓度为(1.20±0.07)mg/mL;疫苗组IgG1抗体浓度为(7.42±1.87)mg/mL，IgG2a抗体浓度为(1.34±0.18)mg/mL。四组干预对小鼠总IgG1与IgG2a抗体水平的影响差异具有统计学意义(F=12.620，P=0.001;F=4.809，P=0.020)。与对照组相比，多肽组(P＜0.001)与疫苗组(P=0.008)可显著提高IgG1抗体水平(图2A)。疫苗组(P=0.008)可显著提高小鼠血清中IgG2a抗体水平，Candin组小鼠IgG2a抗体水平增加，但差异无统计学意义(图2B)。图1疫苗对小鼠血清中总IgG抗体的影响图2疫苗对小鼠血清中IgG1与IgG2a抗体的影响3讨论3.1研究结果及结论HPV已被确认为CIN、鳞状上皮内瘤变和宫颈癌前病变的致病因子，绝大多数的宫颈癌患者都携带这种病毒DNA，同时它也与其他癌症，包括阴茎、阴道、肛门、口咽和皮肤等部位癌症发生相关［13］。人体的体液免疫系统在清除病毒感染细胞的过程中发挥了重要作用。血清中的中和抗体可以使病变组织减小甚至痊愈，有助于阻断癌前病变发展成宫颈癌［14］。Wang等［15］研究证明HPV特异性IgG单克隆抗体可以对HPV感染起到保护作用。而在宫颈浸润癌患者中，IgG含量及各类T细胞的全面降低导致了HPV感染的持续存在，使病情进一步发展［16］。因此，血清中的HPVIgG抗体可作为判断宫颈病变发生、转归的稳定指标［17］。本实验中，包含佐剂Candin以及HPV16E7多肽疫苗可以显著提高小鼠体内总IgG抗体浓度，提示该疫苗可以诱导小鼠产生明显的体液免疫应答，促进机体中和病毒以及清?

G1抗体浓度为(7.42±1.87)mg/mL，IgG2a抗体浓度为(1.34±0.18)mg/mL。四组干预对小鼠总IgG1与IgG2a抗体水平的影响差异具有统计学意义(F=12.620，P=0.001;F=4.809，P=0.020)。与对照组相比，多肽组(P＜0.001)与疫苗组(P=0.008)可显著提高IgG1抗体水平(图2A)。疫苗组(P=0.008)可显著提高小鼠血清中IgG2a抗体水平，Candin组小鼠IgG2a抗体水平增加，但差异无统计学意义(图2B)。图1疫苗对小鼠血清中总IgG抗体的影响图2疫苗对小鼠血清中IgG1与IgG2a抗体的影响3讨论3.1研究结果及结论HPV已被确认为CIN、鳞状上皮内瘤变和宫颈癌前病变的致病因子，绝大多数的宫颈癌患者都携带这种病毒DNA，同时它也与其他癌症，包括阴茎、阴道、肛门、口咽和皮肤等部位癌症发生相关［13］。人体的体液免疫系统在清除病毒感染细胞的过程中发挥了重要作用。血清中的中和抗体可以使病变组织减小甚至痊愈，有助于阻断癌前病变发展成宫颈癌［14］。Wang等［15］研究证明HPV特异性IgG单克隆抗体可以对HPV感染起到保护作用。而在宫颈浸润癌患者中，IgG含量及各类T细胞的全面降低导致了HPV感染的持续存在，使病情进一步发展［16］。因此，血清中的HPVIgG抗体可作为判断宫颈病变发生、转归的稳定指标［17］。本实验中，包含佐剂Candin以及HPV16E7多肽疫苗可以显著提高小鼠体内总IgG抗体浓度，提示该疫苗可以诱导小鼠产生明显的体液免疫应答，促进机体中和病毒以及清除感染细胞，对于宫颈癌的预防和治疗有重要意?
【参考文献】

相关期刊论文 前2条

1 李世蓉;张三元;刘冬青;韩翠兰;;IgG、INF-γ及CD4~+/CD8~+T细胞对不同宫颈病变高危型HPV感染转归的影响[J];中国妇幼保健;2015年30期

2 包振宇;邹先彪;张云杰;;人乳头瘤病毒感染及其免疫学进展[J];实用皮肤病学杂志;2015年04期

【二级参考文献】

相关期刊论文 前8条

1 田燕;刘玮;;皮肤屏障[J];实用皮肤病学杂志;2013年06期

2 宋文君;王英红;;HPV感染与机体特异性免疫状态的相关性研究进展[J];医学综述;2013年07期

3 冯钟煦;刘剑勇;;树突状细胞的研究进展[J];医学综述;2012年20期

4 陈赛娟;王一煌;;Toll样受体和树突状细胞:免疫激活传感器——2011年诺贝尔生理学或医学奖简介[J];自然杂志;2011年06期

5 吴洁;王以新;;人类白细胞抗原G介导的免疫逃逸与宫颈癌发生关系的研究进展[J];中国医药;2011年03期

6 魏雪敏;隋龙;;HPV感染后宫颈局部免疫环境改变及NO的作用[J];国际妇产科学杂志;2011年01期

7 刘宏图;;人乳头瘤病毒感染与宫颈癌进展的相关性[J];中国实用妇科与产科杂志;2010年05期

8 陈显兵;管小琴;吴小川;杨练;肖明;;HBV、HIV及混合感染者T淋巴细胞水平分析[J];中国公共卫生;2006年05期

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 韩雨桐;连秋婷;张琨;李佳妮;唐婷;王雪莲;;以Candin为佐剂的人乳头瘤病毒多肽治疗疫苗诱导小鼠的体液免疫应答[J];中国微生态学杂志;2019年08期

2 魏兰兰,谷鸿喜,韩立群;16型人乳头瘤病毒疫苗研究进展[J];国外医学.预防.诊断.治疗用生物制品分册;2001年02期

3 杨耀;;去垢剂和磷酸铝对细菌和病毒膜蛋白体液免疫应答的协同作用[J];国外医学.预防.诊断.治疗用生物制品分册;1988年06期

4 王天然;小鼠初次及再次体液免疫应答测定及多抗甲素的作用[J];中国免疫学杂志;1989年01期

5 ;人乳头瘤病毒(HPV)疫苗[J];生殖医学杂志;2005年01期

6 谭德明,刘双虎,李聪智,范学工,燕美玉,孙科柱;丙型肝炎病毒核心基因疫苗诱导小鼠细胞及体液免疫应答[J];基础医学与临床;2000年05期

7 杨筱凤,陈宏伟,郑瑾,司履生,董小平,王一理;人乳头瘤病毒16L1-减毒志贺氏杆菌为载体疫苗的构建及免疫效应初步鉴定[J];病毒学报;2005年03期

8 王文学,邹伯英,肖庚柄,杨会宣,李霖;蓖麻毒素对小鼠初次体液免疫应答的影响[J];第四军医大学学报;1992年02期

9 徐燕萍,湛学军,杨淑华,谢大泽,胡昕;重组(酵母)乙型肝炎疫苗接种母鸡的体液免疫应答[J];中国生物制品学杂志;2002年05期

10 刘朝奇;人乳头瘤病毒16型疫苗的研究[J];湖北三峡学院学报;1997年03期

相关博士学位论文 前4条

1 梁云飞;病毒抗原蛋白的B细胞表位生物学研究[D];第三军医大学;2006年

2 付丁伊;人乳头瘤病毒（HPV）衣壳蛋白L1的体外自组装调控及内在机理研究[D];吉林大学;2018年

3 赵蔚明;低危型人乳头瘤病毒优化密码E7基因的研究[D];山东大学;2004年

4 赵振林;T细胞疫苗诱导移植免疫耐受的实验研究[D];昆明医学院;2003年

相关硕士学位论文 前10条

1 卜文;重组人乳头瘤病毒九价疫苗的安全性和免疫原性研究[D];山东农业大学;2018年

2 耿星涛;人乳头瘤病毒58型晚期蛋白L1在大肠杆菌中的表达及纯化的研究[D];吉林大学;2006年

3 蒋永林;人乳头瘤病毒16型E6蛋白真核表达及对巨噬细胞分泌功能与凋亡的影响[D];南华大学;2006年

4 杜燕华;人乳头瘤病毒液态悬浮芯片基因分型方法的建立及临床应用的初步研究[D];西北大学;2006年

5 李萍;人乳头瘤病毒16型（新疆株）E6基因疫苗免疫小鼠的研究[D];新疆大学;2004年

6 曲宁;人乳头瘤病毒58型L1基因在毕赤酵母中的表达及鉴定[D];吉林大学;2007年

7 朱振营;马传染性贫血病毒弱毒疫苗株和强毒株诱导的特异性体液免疫应答差别[D];中国农业科学院;2009年

8 贾润清;人乳头瘤病毒16型L1蛋白的表达及其免疫效果的研究[D];内蒙古师范大学;2004年

9 刘斌;人乳头瘤病毒6型L1的克隆表达与纯化[D];西北农林科技大学;2009年

10 刘玉雪;人乳头瘤病毒早期E6蛋白的识别检测及晚期L1蛋白的组装调控研究[D];吉林大学;2017年

本文编号：2873343