Saos-2细胞和U2-OS细胞基质小泡比较蛋白质组学研究
发布时间:2017-06-24 10:02
本文关键词:Saos-2细胞和U2-OS细胞基质小泡比较蛋白质组学研究,由笔耕文化传播整理发布。
【摘要】:成骨细胞是骨形成的主要功能细胞,在细胞外基质(extracellular matrix, ECM)的合成、分泌和矿化过程中发挥重要作用,可分泌类骨质包被自身从而转变为骨细胞。除了类骨质外,成骨细胞还可分泌基质小泡(matrix vesicles, MV)。MV主要分布在骨、软骨和牙本质的基质中,有膜包被,富含Ca2+和PO43+,内有细小的钙化结晶,富含多种磷脂和蛋白,在骨矿化过程起始阶段起着重要作用。MV可以调节细胞内外基质中的磷酸盐(Pi)和无机焦磷酸磷酸盐(PPi)的比例,促进矿化物形成,一般被认为是钙化的起始部位。在骨矿化过程中,MV中的钙化结晶释放到成骨细胞分泌的类骨质,形成羟基磷灰石(hydroxyapatite, HA)。HA在软骨或成骨细胞的ECM胶原纤维中的沉积,促进了软骨或骨的矿化。 对MV表面受体、离子通道和转运蛋白参与矿化进程的研究也发现,MV蛋白可调节细胞内外基质中的Pi与PPi比例,结合钙离子,抑制钙化或充当成核因子,提供HA成核位点,对正常骨矿化进程起到重要作用,其异常则可能导致矿化物聚集或矿化不足。MV蛋白突变可能从无机离子的比例、酶的活性及成核位点的形成等多方面影响矿化,产生不同程度的矿化异常,导致异位矿化或矿化不足类疾病,而这些疾病在临床上是广泛存在的。因此,对MV参与矿化机制的研究具有重要的临床意义和生物学意义,从MV水平寻找调节矿化的调控因子,可能为病理性矿化的机制研究和治疗提供理论基础和临床依据。目前认为,MV对钙化的促进至少有两大作用1)MV酶可以调节细胞内外的Pi/PPi比例;2)MV蛋白质和脂质,包括酸性磷脂,可作为HA沉积形成的初始晶核。目前蛋白质组学研究已发现2000多种与矿化相关的MV蛋白。大量研究表明, MV蛋白缺乏可能与许多罕见的骨骼类疾病的病理矿化进程密切相关,然而绝大对数蛋白在矿化中所起的调节作用目前仍不明确。 U2-OS细胞是一种低磷酸酯酶活性、矿化能力缺陷的成骨细胞,而Saos-2细胞是一种具有显著矿化能力的成骨细胞。上述两种细胞均属人骨肉瘤细胞。本实验室分别从矿化诱导的Saos-2细胞和U2-OS细胞的ECM中提取MV,然后进行比较蛋白质组学分析,以期发现差异表达的MV蛋白。 目的:培养矿化能力明显差异的骨肉瘤细胞Saos-2和U2-OS,用矿化诱导培养基诱导培养细胞,提取细胞分泌的基质小泡并进行鉴定。比较蛋白质组学分析MV蛋白,寻找骨矿化相关的差异蛋白,为探索MV在矿化进程中的作用提供新的线索。 方法:用含10mM β-磷酸甘油、50μg/mLVc的DMEM和Mccoy′s5AMedium诱导培养Saos-2和U2-OS细胞。分别提取Saos-2和U2-OS细胞基质小泡,并通过流式细胞术和电镜技术鉴定所提取的MV,对MV蛋白进行比较蛋白质组学分析;使用MAS3.0分析软件对蛋白质组学分析所得的差异蛋白作进一步分析;筛选出的差异蛋白经western-blotting进行再验证。 结果:从Saos-2和U2-OS细胞中均成功提取获得MV。经电镜和流式细胞仪检测,,可观察到本实验室所提取的沉淀直径为50-200nm的小囊泡,并且正常的Saos-2和U2-OS细胞以及矿化诱导7天的U2-OS细胞的提取物中均未发现矿化物结晶,而在矿化诱导7天的Saos-2细胞的提取物中存在包含于囊泡中的矿化物结晶。我们对这两种细胞的MV进行蛋白质组学分析,共发现175种骨矿化相关的差异表达蛋白(表达量比值2),包括89种上调表达蛋白和86种下调表达蛋白(Saos-2/U2-OS)。我们使用MAS3.0在线分析软件对89种上调表达蛋白进行生物信息学分析,发现12例钙结合蛋白,8例参与了骨相关信号转导途径的蛋白。选取蛋白激酶C-α(proteinKinase C α,PKCα)和RAS相关蛋白Ral-A(ras-related protein Ral-A,Rala)两种表达上调的差异蛋白进行western-blotting验证,发现与蛋白质组学分析结果基本一致。 结论:诱导矿化7天的Saos-2和U2-OS细胞呈现明显差异的矿化现象,提取的基质小泡经电镜检测发现矿化诱导7天的Saos-2细胞MV中有矿化结节的存在,而矿化诱导7天的U2-OS细胞MV中则未观察到矿化结节的存在。这个结果从一定程度上表明了,MV为成骨细胞骨矿化提供了成核位点,可能是骨矿化的起始位置。对这两种矿化能力有明显差异的成骨细胞MV进行蛋白质组学分析,筛选与矿化相关的差异蛋白,为探讨MV蛋白在矿化过程中所发挥的作用和初步探索MV在骨矿化过程中的作用机制提供了一定的理论基础和实验依据。
【关键词】:基质小泡 成骨细胞 矿化 蛋白质组学
【学位授予单位】:济南大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2013
【分类号】:R329.2
【目录】:
- 导师简介5
- 课题组成5-8
- 摘要8-11
- Abstract11-14
- 英文缩略词表14-15
- 第一章 前言15-22
- 1.1 基质小泡的定义15-17
- 1.2 基质小泡主要蛋白与矿化形成的关系17-21
- 1.3 总结21-22
- 第二章 SAOS-2 和 U2-OS 细胞培养和基质小泡的提取及鉴定22-29
- 2.1 材料22
- 2.1.1 细胞22
- 2.1.2 主要试剂22
- 2.1.3 主要仪器22
- 2.2 实验方法22-25
- 2.2.1 细胞培养22-23
- 2.2.2 细胞的诱导条件和方法23
- 2.2.3 SAOS-2 和 U2-OS 细胞矿化的茜素红检测23-24
- 2.2.4 基质小泡的提取24
- 2.2.5 基质小泡的电镜鉴定24
- 2.2.6 基质小泡的流式细胞仪鉴定24-25
- 2.3 实验结果25-28
- 2.3.1 SAOS-2 和 U2-OS 细胞矿化诱导的茜素红检测结果25-26
- 2.3.2 基质小泡的提取结果26
- 2.3.3 基质小泡的电镜鉴定结果26-27
- 2.3.4 基质小泡的流式细胞仪鉴定结果27-28
- 2.4 讨论28-29
- 第三章 基质小泡蛋白质组学29-38
- 3.1 材料29
- 3.1.1 主要试剂29
- 3.1.2 主要仪器29
- 3.2 基质小泡蛋白的非标记定量蛋白质组学分析29-31
- 3.2.1 蛋白质的提取和定量29
- 3.2.2 SDS-PAGE 试验29
- 3.2.3 FASP 酶解蛋白29-30
- 3.2.4 MV 蛋白的 LCMS/MS 分析30
- 3.2.5 质谱数据的非标记定量分析30-31
- 3.2.6 MV 蛋白表达谱的生物信息学分析31
- 3.3 差异表达蛋白的筛选31
- 3.4 免疫印迹法验证差异表达蛋白31-33
- 3.4.1 提取总蛋白31
- 3.4.2 蛋白定量31
- 3.4.3 SDS-PAGE 电泳31-32
- 3.4.4 半干法转膜32
- 3.4.5 封闭32
- 3.4.6 杂交一抗32
- 3.4.7 洗膜32-33
- 3.4.8 杂交二抗33
- 3.4.9 洗膜33
- 3.4.10 检测33
- 3.4.11 成像33
- 3.5 结果33-36
- 3.5.1 基质小泡蛋白的质谱分析结果33
- 3.5.2 差异蛋白的生物信息学分析和免疫印迹验证结果33-36
- 3.6 实验讨论36-38
- 参考文献38-41
- 附录41-66
- 文献综述66-77
- 参考文献74-77
- 已发表论文77-78
- 致谢78
【共引文献】
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3 高Z
本文编号:477780
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